최소 단어 이상 선택하여야 합니다.
최대 10 단어까지만 선택 가능합니다.
다음과 같은 기능을 한번의 로그인으로 사용 할 수 있습니다.
NTIS 바로가기Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.54 no.2, 2018년, pp.126 - 135
The characteristics of enzyme and gene for mannanase B had been reported from Cellulosimicrobium sp. YB-43 producing some kind of mannanase. A gene coding for the enzyme, named mannanase C (ManC), was expected to be located downstream of the manB gene. The manC gene was cloned by polymerase chain re...
핵심어 | 질문 | 논문에서 추출한 답변 |
---|---|---|
Mannanase의 구조적 특징은 무엇인가? | Mannanase는 cellulase나 xylanase와 유사하게 활성영역으로만 구성되거나 또는 추가적으로 탄수화물 결합영역(cellulose binding domain; CBM), S-layer-homologous (SLH)이나 fibronectin(FN) 영역을 포함하고 있다(Kumagai et al., 2011; Takasuka etal. | |
HtManC의 활성이 SDS에 의해 증가된 까닭으로 추정되는 것은 무엇인가? | 2배 활성이 증가하여 HtManC 보다 높은 증가율을 보였다(Ferreira and Filho, 2004). 한편 SDS는 단백질 형태를 변화시켜 대부분의 효소에서 활성을 감소시키는 효과를 보이지만, 일부의 효소는 일정한 농도의 SDS가 존재해도 단백질의 2차 구조가 변화하지 않고 외부 표면에 결합된 SDS에 의해 단백질 형태에 제한적으로 미세한 변화가 일어남으로써 효소 활성이 증가하는 것으로 밝혀졌다(Moore and Flurkey, 1990). HtManC의 활성이 SDS에 의해 증가된 것도 이러한 현상과 관련이 있을 것으로 추정된다. | |
Mannanase는 어떤 효소인가? | Mannanase는 β-mannan, glucomannan, galactomannan과galactoglucomannan으로 분류된 mannan 다당류를 구성하는 mannose 잔기간 β-1,4-mannosyl 결합을 무작위적으로 분해하는 효소로 β-mannosidase, α-galactosidase, β-glucosidase 및 acetyl mannan esterase와 함께 mannan의 분해에 관여하며 이들 효소 중 가장 주된 역할을 한다. 미생물뿐 아니라 동물과 식물에서도 생산되는 것으로 알려진 mannanase는 섬유물질의 가수분해에 관여하는 효소 중 cellulase와 xylanase에 비해 뒤 늦게 관심을 받았으며 1990년대 이후부터 그 특성이 다양한 미생물 유래의 효소를 중심으로 본격적인 연구가 이루어졌다. |
Arcand, N., Kluepfel, D., Paradis, F.W., Morosoli, R., and Shareck, F. 1993. $\beta$ -Mannanase of Streptomyces lividans 66: cloning and DNA sequence of the manA gene and characterization of the enzyme. Biochem. J. 290, 857-863.
Dhawan, S. and Kaur, J. 2007. Microbial mannanases: an overview of production and applications. Crit. Res. Biotechnol. 27, 197-216.
Ferreira, H.M. and Filho, E.X.F. 2004. Purification and characterization of a $\beta$ -mannanase from Trichoderma harzianum strain T4. Carbohydr. Polym. 57, 23-29.
Hilge, M., Gloor, S.M., Rypniewski, W., Sauer, O., Heightman, T.D., Zimmermann, W., Winterhalter, K., and Piontek, K. 1998. High-resolution native and complex structures of thermostable $\beta$ -mannanase from Thermomonospora fusca - substrate specificity in glycosyl hydrolase family 5. Structure 6, 1433-1444.
Kim, D.Y., Ham, S.J., Lee, H.J., Cho, H.Y., Kim, J.H., Kim, Y.J., Shin, D.H., Rhee, Y.H., Son, K.H., and Park, H.Y. 2011a. Cloning and characterization of a modular GH5 $\beta$ -1,4-mannanase with high specific activity from the fibrolytic bacterium Cellulosimicrobium sp. strain HY-13. Bioresour. Technol. 102, 9185-9192.
Kim, D.Y., Ham, S.J., Lee, H.J., Kim, Y.J., Shin, D.H., Rhee, Y.H., Son, K.H., and Park, H.Y. 2011b. A highly active endo- $\beta$ -1,4-mannanase produced by Cellulosimicrobium sp. strain HY-13, a hemicellulolytic bacterium in the gut of Eisenia fetida. Enzyme Microb. Technol. 48, 365-370.
Kumagai, Y., Kawakami, K., Mukaihara, T., Kimura, M., and Hatanaka, T. 2012. The structural analysis and the role of calcium binding site for thermal stability in mannanase. Biochimie 94, 2783-2790.
Kumagai, Y., Kawakami, K., Uraji, M., and Hatanaka, T. 2013a. Binding of bivalent ions to actinomycete mannanase is accompanied by conformational change and is a key factor in its thermal stability. Biochim. Biophys. Acta 1834, 301-307.
Kumagai, Y., Kawakami, K., Uraji, M., and Hatanaka, T. 2013b. Effect of the binding of bivalent ion to the calcium-binding site responsible for the thermal stability of actinomycete mannanase: Potential use in production of functional mannooligosaccharides. J. Mol. Cataly. B: Enzym. 94, 63-68.
Kumagai, Y., Usuki, H., Yamamoto, Y., Yamasato, A., Arima, J., Mukaihara, T., and Hatanaka, T. 2011. Characterization of calcium ion sensitive region for $\beta$ -mannanase from Streptomyces thermolilacinus. Biochim. Biophys. Acta 1814, 1127-1133.
Moore, B.M. and Flurkey, W.H. 1990. Sodium dodecyl sulfate activation of a plant polyphenoloxidase. Effect of sodium dodecyl sulfate on enzymatic and physical characteristics of purified broad bean polyphenoloxidase. J. Biol. Chem. 265, 4982-4988.
Oda, M., Inaba, S., Kamiya, N., Bekker, G.J., and Mikami, B. 2018. Structural and thermodynamic characterization of endo-1,3- $\beta$ -glucanase: Insights into the substrate recognition mechanism. Biochim. Biophys. Acta 1866, 415-425.
Pradeep, G.C., Cho, S.S., Choi, Y.H., Choi, Y.S., Jee, J.P., Seong, C.N., and Yoo, J.C. 2016. An extremely alkaline mannanase from Streptomyces sp. CS428 hydrolyzes galactomannan producing series of mannooligosaccharides. World J. Microbiol. Biotechnol. 32, 84.
Schumann, P., Weiss, N., and Stackebrandt, E. 2001. Reclassification of Cellulomonas cellulans (Stackebrandt and Keddie 1986) as Cellulosimicrobium cellulans gen. nov., comb. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 51, 1007-1010.
Shi, P., Yuan, T., Zhao, J., Huang, H., Luo, H., Meng, K., Wang, Y., and Yao, B. 2011. Genetic and biochemical characterization of a protease-resistant mesophilic $\beta$ -mannanase from Streptomyces sp. S27. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 38, 451-458.
Srivastava, P.K. and Kapoor, M. 2017. Production, properties, and applications of endo- $\beta$ -mannanases. Biotechnol. Adv. 35, 1-19.
Stoll, D., Stalbrand, H., and Warren, R.A. 1999. Mannan-degrading enzymes from Cellulomonas fimi. Appl. Environ. Microbiol. 65, 2598-2605.
Takasuka, T.E., Acheson, J.F., Bianchetti, C.M., Prom, B.M., Bergeman, L.F., Book, A.J., Currie, C.R., and Fox, B.G. 2014. Biochemical properties and atomic resolution structure of a proteolytically processed beta-mannanase from cellulolytic Streptomyces sp. SirexAA-E. PLoS One 9, e94166.
Tjalsma, H. and van Dijl, J.M. 2005. Proteomics-based consensus prediction of protein retention in a bacterial membrane. Proteomics 5, 4472-4482.
Vijayalaxmi, S., Prakash, P., Jayalakshmi, S.K., Mulimani, V.H., and Sreeramulu, K. 2013. Production of extremely alkaliphilic, halotolerent, detergent, and thermostable mannanase by the free and immobilized cells of Bacillus halodurans PPKS-2. Purification and characterization. Appl. Biochem. Biotechnol. 171, 382-395.
Walia, A., Mehta, P., Guleria, S., and Shirkot, C.K. 2015. Modification in the properties of paper by using cellulase-free xylanase produced from alkalophilic Cellulosimicrobium cellulans CKMX1 in biobleaching of wheat straw pulp. Can. J. Microbiol. 61, 671-681.
Yoo, H.Y., Pradeep, G.C., Lee, S.K., Park, D.H., Cho, S.S., Choi, Y.H., Yoo, J.C., and Kim, S.W. 2015. Understanding $\beta$ -mannanase from Streptomyces sp. CS147 and its potential application in lignocellulose based biorefining. Biotechnol. J. 10, 1894-1902.
Zhang, J.X., Chen, Z.T., Meng, X.L., Mu, G.Y., Hu, W.B., Zhao, J., and Nie, G.X. 2017. Gene cloning, expression, and characterization of a novel $\beta$ -mannanase from the endophyte Paenibacillus sp. CH-3. Biotechnol. Appl. Biochem. 64, 471-481.
해당 논문의 주제분야에서 활용도가 높은 상위 5개 콘텐츠를 보여줍니다.
더보기 버튼을 클릭하시면 더 많은 관련자료를 살펴볼 수 있습니다.
*원문 PDF 파일 및 링크정보가 존재하지 않을 경우 KISTI DDS 시스템에서 제공하는 원문복사서비스를 사용할 수 있습니다.
출판사/학술단체 등이 한시적으로 특별한 프로모션 또는 일정기간 경과 후 접근을 허용하여, 출판사/학술단체 등의 사이트에서 이용 가능한 논문
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.