[논문]누에와 육계 복합 추출물의 in vivo 면역증진 기능성 연구

김경조; 박해진; 김일규; 김민주; 신미래; 노성수

doi:10.6116/kjh.2018.33.4.19.

누에와 육계 복합 추출물의 in vivo 면역증진 기능성 연구
Evaluation on Immunopotentiation Activities of Combined Extract of Silkworm and Cinnamomum cassia in vivo 원문보기

大韓本草學會誌 = The Korea journal of herbology, v.33 no.4, 2018년, pp.19 - 26

김경조 (대구한의대학교 한의과대학 본초약리학교실) , 박해진 (대구한의대학교 산학협력단 코스메디컬센터) , 김일규 (대구한의대학교 한의과대학 본초약리학교실) , 김민주 (대구한의대학교 한의과대학 본초약리학교실) , 신미래 (대구한의대학교 한의과대학 본초약리학교실) , 노성수 (대구한의대학교 한의과대학 본초약리학교실)

Abstract ▼ AI-Helper

Objectives : The aim of this study was to investigate the immunopotentiating activity of combine extract that Silkworm and Cinnamomum cassia. Recently, acute epidemic diseases such as cold and viral respiratory diseases have been emerging. So, interested in immunity enhancement has been increasing, and research on natural products to promote immunity activity has been actively conducted. Methods : To confirm the immunopotentiating activity effect, Silkworm (SW), Cinnamomum cassia (CC), and SWCC combined extracts were treated 14 days at 300 mg/kg/day. The changes of glutamic oxalacetic transaminase (GOT), glutamic pyruvate transaminase (GPT) in serum were analyzed after experiment. The changes in the total spleen cell number were measured. Immune cells in spleen were analyzed using fluorescence activated cell sorter (FACS). also, analyzed the expression of cytokines in spleen. Results : Total number of cells in the spleen and FACS analysis of T lymphocytes activated in the spleen showed that the SWCC combined treated group had much higher frequency of active cells than both single groups. The ratio of CD4+CD8+, CD4+CD69+ and CD4+CD25+ T cells in spleen, SWCC is higher than other groups except Nor in CD4+, CD4+CD69+, CD4+CD25+ T cells. The results of this study suggest that SWCC can help immune function via IL-2, IL-10, IL-12, IFN-${\gamma}$ cytokine production, increased T lymphocytes and splenocyte proliferation. Conclusion : Therefore, these results suggested that the SWCC combined extracts administration increase stronger immunity enhancement than when SW and CC adminstration.

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

실험동물의 혈액 내 간 기능 검사, 비장 내 총 세포 수와 면역세포 수를 측정하였다. 또한, 비장 내 활성 T 림프구의 활성 빈도를 형광 유세포 염색법을 통하여 측정하였고, 비장 세포 배양액 내의 사이토카인 발현량을 분석하여유의성 있는 결과를 얻었기에 이를 보고하고자 하는 바이다.
. 본 연구는 이전 연구에서 면역 활성 증진 효과가 뛰어나다고 알려진 10가지 소재의 마우스 비장세포 증식능을 평가하여 얻은 in vitro 실험 결과를 바탕으로¹⁹⁾ 마우스 동물모델에서 누에와 육계 추출물의 단일, 복합 투여 시 면역 활성 증진 효과의 변화를 알아보고자 실험을 진행하였다. 실험동물의 혈액 내 간 기능 검사, 비장 내 총 세포 수와 면역세포 수를 측정하였다.
본 연구에서는 누에, 육계 단일 추출물과 복합 추출물을 경구투여 비교하였고, 실험동물의 면역 활성 증진 효과를 확인하여다음과 같은 결론을 얻었다.
최근 고령화, 산업화 등으로 인해 면역 관련 질환이 증가하는 추세로 면역 활성 증진에 대한 관심이상승되고 있으며, 면역 질환의 치료 및 예방의학의 한계점으로 인해 식품소재의 연구가 활발하게 진행되는 추세이다. 이에 본 연구자는 고단백 식품소재로 사용되고 있는 누에와 항암,항염증 등 면역 질환의 치료제로 많은 연구가 진행되고 있는 육계를 이용하여 마우스 동물모델에서의 단일, 복합 투여를 통해 면역 활성 증진에 대한 효과를 확인하였다.

제안 방법

세포로 조정한 후 4℃에서 면역 형광염색을 실시하였다. flow cytometry의 Cell Quest 프로그램을 이용하여 CD4+,CD8+, CD4+CD69+, CD4+CD25+, 그리고 CD69+B220+의 활성세포 빈도(%)를 분석하였다.
본 실험에 사용한 누에, 육계는 옴니허브 (대구, 한국)에서구입하였고, 대구한의대학교 한의과대학 본초학교실에서 생약규격집에 맞추어 관능 검사하였고, 약전규격에 합격한 것만을정선하여 실험에 사용하였다. 각 시료 100 g을 한일분쇄기(FM-700SS, 한국)로 분쇄하여 환류추출기 (heating Mantle,MS-DM609/20L)에 넣고 100℃ 에서 증류수를 1 ℓ가하여 120분 추출하였다. 그 후 감압추출장치 (N-1200A, EYELA.
각 시료 100 g을 한일분쇄기(FM-700SS, 한국)로 분쇄하여 환류추출기 (heating Mantle,MS-DM609/20L)에 넣고 100℃ 에서 증류수를 1 ℓ가하여 120분 추출하였다. 그 후 감압추출장치 (N-1200A, EYELA. CO. LTD, Japan)를 이용하여 농축하였고, 동결건조기 (PF10/ALPHA 1-2LD, Germany)를 통하여 완전 건조시켜 추출물을 얻었다. 누에의 수율은 27.
동물 사육실의 조건은 conventional system으로 온도 22±2℃, 습도 50±5% 명암주기 (light : dark cycle)는 12시간 주기로 조절 하였다.
면역 활성 증진 평가를 위해 8주령의 수컷 마우스에 누에 및 육계 단일, 복합 추출물을 300 ㎎/㎏/day로 14일간 경구투여한 뒤 얻은 혈청 및 비장조직을 분석하여 간 독성 정도와 면역 활성 증진 효과를 평가하였다. 혈액생화학적 효소이며, 간 손상지표로 알려져 있는 GOT와 GPT를 측정한 결과, GOT의 경우 정상군에 비하여 RG, SW, CC 단독 투여군과 SWCC 복합 투여군 모두 유의하게 증가하였다.
면역 활성 증진 효과를 확인하기 위해 분리한 비장 조직에서 세포를 분리한 뒤 비장 내 총 세포수와, 비장 내 T 세포와 B세포의 수를 측정하였다. 비장은 면역력을 관장하는 주요기관으로 혈액으로부터 항원을 수집하여 T 세포와 B 세포를 성숙시키며, 림프구의 분화가 일어난다²⁴⁾.
실험군은 정상군 (control), 홍삼 추출물을 100 ㎎/㎏/day로 투여한 양성대조군 (RG), 누에 추출물을 300 ㎎/㎏/day로 투여한 군 (SW), 육계 추출물을 300 ㎎/㎏/day로 투여한 군(CC), 누에 육계 추출물을 300 ㎎/㎏/day로 혼합하여 투여한 복합투여 군 (SWCC)으로 각 군별로 7마리씩 5군으로 나눈 뒤 1주일간 적응시킨 후 실험에 사용하였다. 모든 쥐는 일정한 시간에 1회/1일 체중을 측정하였으며, 정상군을 제외한 실험군은 추출물을 14일간 경구 투여하였다. 실험종료당일 마취 후 심장에서 혈액을 채취하여 30분 이내에 4,000 rpm, 4℃에서 10분간 원심 분리하여 혈청을 분리하여 -80℃ 냉동고에 보관하였고, 실험동물의 비장 조직은 혈액 채취 후 즉시 적출하여세포 수를 측정하였다.
배양상층액내의 IFN-γ(BioSource, USA),IL-2 (BioSource, U.S.A.), IL-4, IL-10 (R&D system,U.S.A.)의 수준 측정은 TMB 기질을 100 ㎕씩 분주하고 암소에서 30 분간 방치한 후 100 ㎕의 stop 용액을 처리한 후 ELISA leader 450 ㎚에서 흡광도를 측정하였고, enzymelinked immuno-sorbent assay를 이용하였다.
분리한 비장세포를 2 회 1%의 FBS가 함유된 PBS (FACSbuffer)로 세척한 후 cell strainer (FALCON)에 통과시켜 세포 이외의 불순물을 제거한 뒤, 각각의 시험관에 비장 세포를 5×105 세포로 조정한 후 4℃에서 면역 형광염색을 실시하였다.
분리한 비장조직에서 세포를 분리한 뒤 비장 내 총 세포 수와, 비장 내 T 세포와 B 세포의 수를 측정하였다. 비장 내 총 세포 수 측정 결과, 양성대조군 (8.
실험군은 정상군 (control), 홍삼 추출물을 100 ㎎/㎏/day로 투여한 양성대조군 (RG), 누에 추출물을 300 ㎎/㎏/day로 투여한 군 (SW), 육계 추출물을 300 ㎎/㎏/day로 투여한 군(CC), 누에 육계 추출물을 300 ㎎/㎏/day로 혼합하여 투여한 복합투여 군 (SWCC)으로 각 군별로 7마리씩 5군으로 나눈 뒤 1주일간 적응시킨 후 실험에 사용하였다. 모든 쥐는 일정한 시간에 1회/1일 체중을 측정하였으며, 정상군을 제외한 실험군은 추출물을 14일간 경구 투여하였다.
본 연구는 이전 연구에서 면역 활성 증진 효과가 뛰어나다고 알려진 10가지 소재의 마우스 비장세포 증식능을 평가하여 얻은 in vitro 실험 결과를 바탕으로¹⁹⁾ 마우스 동물모델에서 누에와 육계 추출물의 단일, 복합 투여 시 면역 활성 증진 효과의 변화를 알아보고자 실험을 진행하였다. 실험동물의 혈액 내 간 기능 검사, 비장 내 총 세포 수와 면역세포 수를 측정하였다. 또한, 비장 내 활성 T 림프구의 활성 빈도를 형광 유세포 염색법을 통하여 측정하였고, 비장 세포 배양액 내의 사이토카인 발현량을 분석하여유의성 있는 결과를 얻었기에 이를 보고하고자 하는 바이다.
모든 쥐는 일정한 시간에 1회/1일 체중을 측정하였으며, 정상군을 제외한 실험군은 추출물을 14일간 경구 투여하였다. 실험종료당일 마취 후 심장에서 혈액을 채취하여 30분 이내에 4,000 rpm, 4℃에서 10분간 원심 분리하여 혈청을 분리하여 -80℃ 냉동고에 보관하였고, 실험동물의 비장 조직은 혈액 채취 후 즉시 적출하여세포 수를 측정하였다.
분리한 비장 조직에서 100mesh로 세포를 분리하였고, D-PBS를 이용하여 1700 rpm에서 5분간 원심분리 하여 2회세척한 후 cell strainer (FALCON)에 통과시켜 세포 이외의 분해되지 않은 조직이나 불순물을 제거하였다. 이들 세포들을 ACK 용액 (8.3g NH₄Cl, 1g KHCO₃, in 1L of demineralizedwater + 0.1mM EDTA)을 실온에서 5분 동안 처리하여 적혈구를 용해시키고, 다시 D-PBS로 2회 세척한 후 0.04%trypan blue로 염색한 후 세포 수를 측정하였다.
혈액에서 분리한 혈청을 이용하여 간 손상 지표인 GOT 및 GPT를 측정 하였다. GOT 측정 결과, 양성대조군 (85.

대상 데이터

본 실험에 사용한 누에, 육계는 옴니허브 (대구, 한국)에서구입하였고, 대구한의대학교 한의과대학 본초학교실에서 생약규격집에 맞추어 관능 검사하였고, 약전규격에 합격한 것만을정선하여 실험에 사용하였다. 각 시료 100 g을 한일분쇄기(FM-700SS, 한국)로 분쇄하여 환류추출기 (heating Mantle,MS-DM609/20L)에 넣고 100℃ 에서 증류수를 1 ℓ가하여 120분 추출하였다.
동물 사육실의 조건은 conventional system으로 온도 22±2℃, 습도 50±5% 명암주기 (light : dark cycle)는 12시간 주기로 조절 하였다. 사료는 고형사료 (Samyang corporation, Seoul, Korea)(조단백질 22.1% 이상, 조지방 8.0% 이하, 조섬유 5.0% 이하, 조회분 8.0% 이하, 칼슘 0.6% 이상, 인 0.4% 이상, 항생제 무첨가)와 물을 충분히 공급하며 1주간 실험실 환경에 적응시킨 후 실험에 사용하였다.
체중 22~27 g 내외의 8주령 Balb/c계 수컷 생쥐 (샘타코 바이오, 오산)를 구입하여 실험에 사용하였다. 동물 사육실의 조건은 conventional system으로 온도 22±2℃, 습도 50±5% 명암주기 (light : dark cycle)는 12시간 주기로 조절 하였다.

데이터처리

각 군의 유의성은 p-value < 0.05수준으로 t-test에 의해 검증하였다.
모든 측정결과는 독립적인 실험에서 도출된 대푯값의 평균과 표준편차로 표시하였으며, SPSS (Version 14.0, Inc, Chicago,IL, USA)를 사용하였다. 각 군의 유의성은 p-value < 0.

이론/모형

심장에서 채혈한 혈액을 4,000 rpm, 10분 동안 원심 분리하여 혈청을 얻었다. 마우스 혈청의 glutamic oxalacetictransaminase (GOT), glutamic pyruvate transaminase(GPT) assay kit (Wako Pure Chemical Industries, Ltd. Osaka, Japan)의 프로토콜에 따라 측정하였다.

성능/효과

1. 누에, 육계 복합 추출물의 경구 투여는 혈액에서 GOT,GPT의 수치를 감소시켰다.
2. 누에, 육계 복합 추출물의 경구 투여는 비장조직 내 총 세포수를 유의하게 증가시켰고, 비장 내 CD8+ T 세포와 CD4+CD25+ T 세포 수를 유의하게 증가시켰다.
3. 누에, 육계 복합 추출물의 경구 투여는 비장 세포 배양액 내의 IL-2, IL-10, IL-12, IFN-γ의 발현을 유의하게 증가시켰다.
B220+CD269+B 세포 수는, 양성대조군 (0.82 ± 0.02 ×105)은 정상군 (0.50± 0.07 ×105)에 비하여 유의하게 증가하였고 (p < 0.001), SW 투여군 (0.41 ± 0.01 ×105), 은 감소하였지만, CC 투여군 (0.92 ± 0.12 ×105)과 SWCC 복합투여군 (1.32 ± 0.03× 05)모두 정상군에 비하여 유의하게 증가하였다(p < 0.01) p < 0.001)(Fig. 2F).
B220+CD69+ B 세포 비율 측정 결과, 정상군은 0.8%로 나타났으며, 양성대조군은 1.0%로 정상군에 비해 증가하였으며, SW 투여군은 0.8%, CC 투여군은 1.6%로 나타났고, 특히 SWCC 복합 투여군은 2.8%로 가장 높은 비율로 나타난 것을 확인하였다 (Fig. 3D).
CD4+CD25+ T 세포 비율은, 정상군의 경우 3.0%로 나타났으며, 양성대조군은 2.7%, SW 투여군은 2.5%, CC 투여군은 2.6% 으로 정상군에 비하여 미약하게 감소한 모습을 확인하였다. 그러나 SWCC 투여군은 2.
CD4+CD25+ T 세포 수 측정 결과, 양성대조군(2.70 ± 0.37 ×105) 은 정상군 (1.72 ± 0.05 ×105)에 비하여 유의성 있게 증가하였고 (p < 0.01), SW 투여군 (1.71± 0.19 ×105), CC 투여군 (1.85 ± 0.29 ×105)은 증가하는 경향을 나타냈으며, SWCC 복합투여군 (1.74 ± 0.03 ×105)은 유의성 있게 증가하였다 (p < 0.001)(Fig. 2E).
CD4+CD25+ T 세포는 흉선에서 생성되는 조절 T 세포 (regulatory T cell, Treg)로 자기방어에 특이성을 가지는 세포로 자가면역질환에 있어Treg 세포의 결핍이나 억제 기능의 상실이 관여함이 알려져 있다²⁷⁾. CD4+CD25+ T 세포의 경우 SW, CC 단일 투여군은 정상군에 비해 증가하는 경향을 나타냈고, SWCC 복합 투여군은 유의하게 증가하는 모습을 확인하여 SWCC 복합 투여는Treg 세포의 활성을 자극하는 것으로 사료된다.
CD4+CD69+ T 세포 수는, 양성대조군 (1.78 ±0.54 ×105) 은 정상군 (0.74 ± 0.20 ×105)에 비하여 증가하는 경향을 보였고, SW 투여군 (1.40 ± 0.56 ×105), CC 투여군 (1.40 ± 0.02 ×105)과 SWCC 복합투여군 (2.16 ±0.33 ×105)모두 정상군에 비하여 증가하는 경향을 나타내었다(Fig. 2D).
CD4+CD69+ T 세포의 변화를 분석한 결과, 정상군의 경우 1.3%로 나타났으며, 양성대조군의 경우 2.1%로 증가하는 모습을 확인하였으며, SW 투여군은 2.1%, CC 투여군은 2.0%로 정상군에 비해 증가하였다. 특히 SWCC 복합투여군은 2.
비장 내 총 세포 수는 SW, CC 단독 투여군에서는 정상군에 비해 유의한 차이를 나타내지 않았지만, SWCC 복합투여군에서는 유의하게 증가하는 모습을 확인 하였다. CD4+T 세포의 경우에는 SW, CC 단독 투여군과 SWCC 복합 투여군 모두에서 유의하진 않지만 정상군에 비해 감소하는 경향을 확인할 수 있었다. 그러나 CD8+ T 세포의 경우, SW 단독 투여군은 정상군에 비해 증가하는 경향을 보였으며, CC 투여군은 유의하게 증가하였고, 특히 SWCC 복합 투여군은 가장 유의하게 증가하는 모습을 보였다.
7%로 투여군 모두 정상군에 비하여 감소하는 모습을 보였다. CD8+ T 세포 비율은 정상군의 경우 44.39%였으며, 양성대조군은 18.6%, SW 투여군은 23.9%, CC 투여군은 22.9%, SWCC 복합 투여군은 29.1%로 정상군에 비하여 감소하는 경향을 보였다 (Fig. 3A).
GOT 측정 결과, 양성대조군 (85.00 ±19.00 U/L) 은 정상군 (62.00 ± 10.00)에 비하여 유의성 있게 증가하였고 (p<0.05), SW 투여군 (88.00 ± 24.00)과CC 투여군 (81.00 ± 19.00) 또한 유의성 있게 증가하였다(p < 0.05).
IFN-γ의 발현량은 양성대조군 (6084.00 ± 5678.47 pg/㎖)은 정상군 (75.75 ± 36.34)에 비하여 증가하는 경향을 나타냈고, SW 투여군 (5915.05 ± 3921.16)은 정상군에 비하여 유의하게 증가하는 경향을 나타냈다.
1%로 정상군에 비하여 약간 감소하였다. SW 투여군은 21%로 나타났고, CC 투여군은 18.5%로 나타났으며, SWCC 투여군은 19.7%로 투여군 모두 정상군에 비하여 감소하는 모습을 보였다. CD8+ T 세포 비율은 정상군의 경우 44.
CD4+T 세포의 경우에는 SW, CC 단독 투여군과 SWCC 복합 투여군 모두에서 유의하진 않지만 정상군에 비해 감소하는 경향을 확인할 수 있었다. 그러나 CD8+ T 세포의 경우, SW 단독 투여군은 정상군에 비해 증가하는 경향을 보였으며, CC 투여군은 유의하게 증가하였고, 특히 SWCC 복합 투여군은 가장 유의하게 증가하는 모습을 보였다. 이는 약물 투여가 Th 세포 보다 Tc 세포를 활성화 시킨 것으로 사료되며 단독 투여군 보다 복합투여군의 효과가 더 큰 것으로 확인된다.
도움 T 세포 (helper T cell)의 표면에서 대식세포와, T 세포, B 세포를 활성화 시키는 단백질 분자인 CD4+ T 세포 수를 측정한 결과, 양성대조군 (18.44 ± 2.67 ×105)은 정상군 (15.14 ± 3.26 ×105)에 비하여 증가하는 경향을 나타내었고, SW 투여군 (10.58 ± 2.10 ×105), CC 투여군 (11.16 ±4.02 ×105)과 SWCC 복합투여군 (12.58 ± 0.20 ×105)은정상군에 비하여 감소하는 경향을 보였다 (Fig. 2B).
분리한 비장조직에서 면역세포를 분석한 결과, CD4+ T 세포 비율은 정상군의 경우 25.6%로 나타났고, 양성대조군의 경우 22.1%로 정상군에 비하여 약간 감소하였다. SW 투여군은 21%로 나타났고, CC 투여군은 18.
비장 내 총 세포 수 측정 결과, 양성대조군 (8.30 ± 1.00 ×106)은 정상군 (5.85± 0.45 ×106)에 비하여 유의성 있게 증가하였고 (p < 0.01), SW 투여군 (5.05 ± 1.05 ×106)은 감소하였지만, CC 투여군(5.80 ± 1.10 ×106)은 증가하는 경향을 보였으며, SWCC 복합투여군 (6.60 ± 0.50 ×106)은 정상군에 비하여 유의성 있게 증가하였다 (p<0.05)(Fig. 2A).
MHCⅠ분자는 Tc 세포의 영향을 받아 감염된 세포를 없애는 세포사멸의 역할을 하며, 표면에서 CD8+ 단백질이 표적세포로서 인지된다²⁶⁾. 비장 내 총 세포 수는 SW, CC 단독 투여군에서는 정상군에 비해 유의한 차이를 나타내지 않았지만, SWCC 복합투여군에서는 유의하게 증가하는 모습을 확인 하였다. CD4+T 세포의 경우에는 SW, CC 단독 투여군과 SWCC 복합 투여군 모두에서 유의하진 않지만 정상군에 비해 감소하는 경향을 확인할 수 있었다.
. 비장 세포 배양액 내의 사이토카인 발현량을 분석한 결과 SW, CC 단독 투여군은 정상군에 비해 증가하였고, 특히 SWCC 복합 투여군은 단독 투여군에 비해 증가한 모습을 확인하였다. 이러한 결과를 통해 누에, 육계 복합 투여군은 단독 투여군에 비해 비장 내 면역 관련 세포, 비장 내 세포 활성 빈도, 비장세포배양액 내 세포활성 물질의 활성화 효과가 우수하다는 결과를 얻었으며, 이는 누에, 육계 복합 추출물이 단독 투여군에 비해 높은 면역 활성 증진 효과가 있다고 판단되는 바이다.
비장세포 배양액 내 사이토카인 발현량 분석 결과, IL-2의발현량은 양성대조군 (13208.70 ± 3760.40 ng/㎖)은 정상군 (1874.12 ± 889.03)에 비하여 유의성 있게 증가하였고(p < 0.01), SW 투여군 (12524.10 ± 3953.40)과 CC 투여군 (8547.40 ± 223.91), SWCC 복합투여군 (11524.60 ±2081.52)모두 정상군에 비하여 유의성 있게 증가하였다 (p <0.01)(p < 0.001) Fig. 4A).
세포독성 T 세포 (cytotoxic T cell)의 표면에서 감염된 세포를 없애는 단백질 분자인 CD8+ T 세포 수를 측정한 결과, 양성대조군(15.42 ± 1.41 ×105)은 정상군 (8.01 ± 0.26 ×105)에 비하여 유의성 있게 증가하였고 (p < 0.001), SW 투여군 (12.10± 2.54 ×105)은 증가하는 경향을 보였으며, CC 투여군 (13.20± 1.92 ×105)과 SWCC 복합투여군 (20.18 ± 0.91 ×105)은정상군에 비하여 유의성 있게 증가하였다 (p < 0.01) p < 0.001) Fig. 2C).
비장 세포 배양액 내의 사이토카인 발현량을 분석한 결과 SW, CC 단독 투여군은 정상군에 비해 증가하였고, 특히 SWCC 복합 투여군은 단독 투여군에 비해 증가한 모습을 확인하였다. 이러한 결과를 통해 누에, 육계 복합 투여군은 단독 투여군에 비해 비장 내 면역 관련 세포, 비장 내 세포 활성 빈도, 비장세포배양액 내 세포활성 물질의 활성화 효과가 우수하다는 결과를 얻었으며, 이는 누에, 육계 복합 추출물이 단독 투여군에 비해 높은 면역 활성 증진 효과가 있다고 판단되는 바이다.
면역 활성 증진 평가를 위해 8주령의 수컷 마우스에 누에 및 육계 단일, 복합 추출물을 300 ㎎/㎏/day로 14일간 경구투여한 뒤 얻은 혈청 및 비장조직을 분석하여 간 독성 정도와 면역 활성 증진 효과를 평가하였다. 혈액생화학적 효소이며, 간 손상지표로 알려져 있는 GOT와 GPT를 측정한 결과, GOT의 경우 정상군에 비하여 RG, SW, CC 단독 투여군과 SWCC 복합 투여군 모두 유의하게 증가하였다. 그러나 SWCC 복합 투여군은 단독 투여군에 비하여 감소하는 모습을 나타냈다.
혈청 내 GPT 측정 결과, 양성대조군 (23.00 ± 2.00 U/L)은 정상군 (27.00 ± 4.00)에 비하여 유의성있게 감소하였고(p < 0.05), SW 투여군 (26.00 ± 3.00)과 CC 투여군 (23.00± 5.00) 은 감소하는 경향을 나타냈으며, SWCC 복합투여군(25.00 ± 4.00) 또한 정상군에 비하여 감소하는 경향을 나타내었다 (Fig. 1B).

후속연구

따라서 누에, 육계 복합 추출물의 경구 투여는 T 세포 및 B 세포를 활성화시켜 단독 투여에 비해 비교적 높은 면역 활성 증진 효과를 나타내었으며, 이는 기능성 식품 소재로 활용될 가능성이 있을 것으로 기대된다.

질의응답

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	면역반응의 과정은?	체내에는 혈액, 비장, 임파절, 흉선 등 여러 기관에 많은 면역세포들이 내포되어 있으며, 대식세포, NK 세포, T 세포, B 세포 등의 세포들이 면역에 관여하고 있다22). 병원균이 침입하면 내재면역에 의해 제거되지 못한 항원이 적응면역을 활성화시켜 T 세포, B 세포에 의하여 면역글로불린 및 사이토카인을 분비하고 병원균을 제거하는 과정을 거치게 된다23). 최근 고령화, 산업화 등으로 인해 면역 관련 질환이 증가하는 추세로 면역 활성 증진에 대한 관심이상승되고 있으며, 면역 질환의 치료 및 예방의학의 한계점으로 인해 식품소재의 연구가 활발하게 진행되는 추세이다.
	면역이란 무엇인가?	면역은 생체의 내부 환경이 체내에 생긴 불필요한 산물, 외부감염물질로부터 침입하여 생긴 미생물 등을 항원으로 인식하고 방어하는 현상이다1). 생체의 방어기전은 크게 태어날 때부터 지니고 있는 선천적 면역 (innate immunity)과, 후천적으로 얻어지는 적응면역 (adaptive immunity)으로 구분된다2).
	생체의 방어기전은 어떻게 구분되는가?	면역은 생체의 내부 환경이 체내에 생긴 불필요한 산물, 외부감염물질로부터 침입하여 생긴 미생물 등을 항원으로 인식하고 방어하는 현상이다1). 생체의 방어기전은 크게 태어날 때부터 지니고 있는 선천적 면역 (innate immunity)과, 후천적으로 얻어지는 적응면역 (adaptive immunity)으로 구분된다2). 선천적 면역반응은 대식세포 (macrophage)나 수지상 세포(natural killer cell; NK)가 관여한다3).

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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