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보리발효추출물로부터 분리한 다당의 대식세포 활성화 및 신호 전달
Polysaccharide isolated from fermented barley extract activates macrophages via the MAPK and NF-κB pathways 원문보기

한국식품과학회지 = Korean journal of food science and technology, v.50 no.5, 2018년, pp.555 - 563  

김한울 (경기대학교 식품생물공학과) ,  지희숙 ((주)일화 식품바이오연구센터) ,  신광순 (경기대학교 식품생물공학과)

초록
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보리는 높은 비율로 식이섬유를 함유하고 있어, 일반적으로 영양학적으로는 전곡 형태로의 섭취가 추천되고 있지만, 조직감과 소화율을 고려하여 발효물 형태의 소비가 바람직한 것으로 판단되고 있다. 본 연구는 효소당화 후, 효모 및 유산균 발효를 거쳐 조제한 보리발효물로부터 조다당 BF-CP를 분리하고, 대식세포에 대한 면역증강 효과 및 세포 내 신호전달을 규명하여 기능성 소재로의 이용방안을 모색하기 위해 계획되었다. BF-CP 획분의 일반화학적 특성을 분석한 결과 70.7% 글루코스 11.4% 자일로스 및 9.0% 아라비노스를 포함하여 91.1%의 중성당으로 이루어진 중성다당이었다. BF-CP는 RAW 264.7 대식세포주에서 농도의존적으로 IL-6, $TNF-{\alpha}$와 같은 사이토카인 및 NO의 생산능을 유도하는 등 높은 대식세포 활성능을 나타냈다. 또한 qPCR 분석을 통해, BF-CP 획분을 대식세포주에 처리하였을 때, 처리 농도에 비례하여 IL-6, $TNF-{\alpha}$ 및 iNOS의 mRNA 유전자 발현을 증가시킴을 확인할 수 있었다. 한편 Western blot을 활용한 신호전달 단백질 추적실험에서 BF-CP 획분을 대식세포주에 처리하였을 때, JNK, ERK 및 p38과 같은 MAPK 경로와 $NF-{\kappa}B$ 경로의 관련 단백질을 인산화시킴이 확인되었으며 그 활성은 BF-CP 농도에 의존적이었다. 이상의 결과로부터 보리발효물 유래 다당 BF-CP는 MAPK와 $NF-{\kappa}B$ 경로를 통해 대식세포를 활성화시키며, 이를 통하여 NO, IL-6$TNF-{\alpha}$와 같은 면역활성화 관련 물질의 생산을 높은 비율로 유도시킨다는 것을 최종 확인할 수 있었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Barley has nutritional benefits due to its high dietary fiber content; therefore, the intake of whole barley grains is recommended. However, barley is often consumed in the fermented form because of the improved texture and digestibility. The present study was designed to elucidate the intracellular...

주제어

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AI 본문요약
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문제 정의

  • 따라서 본 연구에서는 효소 및 미생물을 이용해 3단 발효시킨 보리발효추출물을 이용하여 다당을 분리, 정제하고, 선천면역계에서 중요한 역할을 하고 있는 대식세포의 활성화에 대해 검토함으로써 보리의 소비를 증진시킬 수 있는 새로운 방법을 모색하고자 하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
대식세포에 있는 패턴인식수용체의 종류는? 이들의 활성화 산물은 최종적으로 핵 내로 이행되어 면역활성화와 관련된 유전자의 전사를 활성화시키고, 결국 사이토카인의 생산 등으로 이어지게 된다(Cargnello와 Roux, 2011; Tanoue와 Nishida, 2003). 특히 식물 유래의 활성물질들이 대식세포의 활성화를 일으키기 위해서는 세포표면에 발현되어 있는 toll-like receptor 4 (TLR4), dectin-1,CD14, scavenger receptor (SR), mannose receptor (MR), complement receptor 3 (CR3) (Rice 등, 2002; Shao 등, 2004; Taylor 등, 2002)와 같은 PRR 수용체(Gordon, 2002)에 결합되어야 하는데 많은 세균, 곰팡이 및 식물 유래 다당들이 이들을 경유하여면역증진 활성을 보이며 특별한 부작용도 나타내지 않는 것으로 보고되어 있다. 그 예로써 버섯 유래의 면역활성 다당 베타글루칸(β-glucan) (Smiderle 등, 2013; Tada 등, 2009)과 식물 유래 펙틴 다당(Lee 등, 2014; Park 등, 2016)들은 강력한 면역증진 활성을 나타내고 이들을 통하여 항암활성까지 보이는 것으로 알려져 있다.
대식세포란? 대식세포는 선천면역 반응에서 가장 중요한 역할을 수행하는 면역세포로, 이들이 활성화되면 탐식작용과 활성산소종(reactive oxygen species, ROS) 및 산화질소(II) (nitric oxide, NO)의 생산 등을 증가시켜 외부에서 침입한 병원체 및 이물을 제거한다(Forman과 Torres, 2002; MacMicking 등, 1997). 탐식작용에 의해 세포 내로 들어온 병원체는 대부분 분해되지만, 분해가 어려운 펩타이드 단편은 세포표면에 존재하는 주요 조직 적합성 복합체(major histocompatibility complex, MHC)와 결합하여 항원을 제시하고,이들을 T-cell이 인지하여 세포의 증식과 분화를 유도하게 된다(Aderem과 Underhill, 1999; Valitutti 등, 1995).
최근 밝혀진 보리의 효능은? 보리는 백미와 함께 우리나라의 대표적인 주식이었으나 국민의 식량 소비 구조가 변화되면서 소비량이 크게 줄고 있는 추세에 있다. 그러나 최근 혈중 콜레스테롤 감소, 심장 질환 예방과 같은 성인병에 우수한 효과가 있다고 알려진 베타글루칸이 다량함유되어 있다고 보고되면서, 보리의 건강 기능성은 재평가되고 있다(Izydorczyk와 Dexter, 2008; Kim 등, 2002; Oh와 Lee,1996). 또한, 베타글루칸은 대식세포, 자연살해세포(natural killer cell), T 세포와 같은 면역세포를 활성화시켜 암세포의 증식과 재발을 억제 할 수 있다고 보고되어 있다(Di Renzo 등, 1991;Roubroeks 등, 2000).
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참고문헌 (59)

  1. Aderem A, Underhill DM. Mechanisms of phagocytosis in macrophages. Annu. Rev. Immunol. 17: 593-623 (1999) 

  2. Ando I, Tsukumo Y, Wakabayashi T, Akashi S, Miyake K, Kataoka T, Nagai K. Safflower polysaccharides activate the transcription factor NF- ${\kappa}B$ via Toll-like receptor 4 and induce cytokine production by macrophages. Int. Immunopharmacol. 2: 1155-1162 (2002) 

  3. Belardelli F. Role of interferons and other cytokines in the regulation of the immune response. Apmis 103: 161-179 (1995) 

  4. Beutler B. Endotoxin, toll-like receptor 4, and the afferent limb of innate immunity. Curr. Opin. Microbiol. 3: 23-28 (2000) 

  5. Beutler B. Innate immunity: an overview. Mol. Immunol.40: 845-859 (2004) 

  6. Blumenkrantz N, Asboe-Hansen G. New method for quantitative determination of uronic acids. Anal. Biochem. 54: 484-489 (1973) 

  7. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. 72: 248-254 (1976) 

  8. Cargnello M, Roux PP. Activation and function of the MAPKs and their substrates, the MAPK-activated protein kinases. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 75: 50-83 (2011) 

  9. Cebra JJ, Shroff KE. Peyer's patches as inductive sites for IgA commitment. pp. 151-158. In: Handbook of Mucosal Immunology. Academic press, New York, NY, USA. (1994) 

  10. Chihara G. Recent progress in immunopharmacology and therapeutic effects of polysaccharides. Dev. Biol. Stand. 77: 191-197 (1992) 

  11. Cho CW, Han CJ, Rhee YK, Lee YC, Shin KS, Hong HD. Immunostimulatory effects of polysaccharides isolated from Makgeolli (traditional Korean rice wine). Molecules 19: 5266-5277 (2014) 

  12. Di Renzo L, Yefeno E, Klein E. The function of human NK cells is enhanced by ${\beta}$ -glucan, a ligand of CR3 (CD11b/CD18). Eur. J. Immunol. 21: 1755-1758 (1991) 

  13. Dubois, M, Gilles KA, Hamilton JK, Rebers PT, Smith F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal. Chem. 28: 350-356 (1956) 

  14. Forman HJ, Torres M. Reactive oxygen species and cell signaling: respiratory burst in macrophage signaling. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 166 (supplement_1): S4-S8 (2002) 

  15. Gordon S. Pattern recognition receptors: Doubling up for the innate immune response. Cell 111: 927-930 (2002) 

  16. Hamilton TA, Adams DO. Molecular mechanisms of signal transduction in macrophages. Immunol. Today 8: 151-158 (1987) 

  17. Han SB, Yoon YD, Ahn HJ, Lee HS, Lee CW, Yoon WK, Park SK, Kim HM. Toll-like receptor-mediated activation of B cells and macrophages by polysaccharide isolated from cell culture of Acanthopanax senticosus. Int. Immunopharmacol. 3: 1301-1312 (2003) 

  18. Honda S, Akao E, Suzuki S, Okuda M, Kakehi K, Nakamuraa J. High-performance liquid chromatography of reducing carbohydrates as strongly ultraviolet-absorbing and electrochemically sensitive 1-phenyl-3-methyl5-pyrazolone derivatives. Anal. Biochem. 180: 351-357 (1989) 

  19. Hwang YC, Shin KS. Characterization of immuno-stimulating polysaccharides isolated from Korean persimmon vinegar. Korean J. Food Sci. Technol. 40: 220-227 (2008) 

  20. Iwasaki A, Medzhitov R. Regulation of adaptive immunity by the innate immune system. Science 327: 291-295 (2010) 

  21. Izydorczyk MS, Dexter JE. Barley ${\beta}$ -glucans and arabinoxylans: Molecular structure, physicochemical properties, and uses in food products-a Review. Food Res. Int. 41: 850-868 (2008) 

  22. James SP, Zeitz M. Human gastrointestinal Mucosal T cells. pp. 275-285. In: Handbook of Mucosal Immunology. Academic press, New York, NY, USA. (1994) 

  23. Karkhanis YD, Zeltner JY, Jackson JJ, Carlo DJ. A new and improved microassay to determine 2-keto-3-deoxyoctonate in lipopolysaccharide of Gram-negative bacteria. Anal. Biochem. 85: 595-601 (1978) 

  24. Kawai T, Akira S. The role of pattern-recognition receptors in innate immunity: update on Toll-like receptors. Nat. Immunol. 11: 373 (2010) 

  25. Kim SR, Seog HM, Choi HD, Park YK. Cholesterol lowering effects in rat liver fed barley and ${\beta}$ -glucan enriched barley fraction with cholesterol. Korean J. Food Sci. Technol. 34: 319-324 (2002) 

  26. Kroncke KD, Fehsel K, Kolb-Bachofen V. Inducible nitric oxide synthase in human diseases. Clin. Exp. Immunol. 113: 147-156 (1998) 

  27. Kuno T, Hirose Y, Hata K, Kato K, Qiang SH, Kitaori N. Preventive effect of fermented brown rice and rice bran on N-nitrosomethylbenzylamine-induced esophageal tumorigenesis in rats. Int. J. Oncol. 25: 1809-1815 (2004) 

  28. Lasek W, Feleszko W, Golab J, Stoklosa T, Marczak M, Dabrowska A, Malejczyk M, Jakobisiak M. Antitumor effects of the combination immunotherapy with interleukin-12 and tumor necrosis factor alpha in mice. Cancer Immunol. Immunother. 45: 100-108 (1997) 

  29. Lee EH, Park HR, Shin MS, Cho SY, Choi HJ, Shin KS. Antitumor metastasis activity of pectic polysaccharide purified from the peels of Korean citrus hallabong. Carbohydr. Polym. 111: 72-79 (2014) 

  30. Lee DY, Shin MS, Shin KS. Characterization of macrophage-activating polysaccharide isolated from fermented brown rice. J. Med. Food 19: 1147-1154 (2016) 

  31. Lee CH, Youn Y, Song GS, Kim YS. Immunostimulatory effects of traditional doenjang. J. Korean Soc. Food Sci. Nutr. 40: 1227-1234 (2011) 

  32. Lewis TS, Paul SS, Natalie GA. Signal transduction through MAP kinase cascades. Adv. Cancer Res. 74: 49-114 (1998) 

  33. Liacini A, Sylvester J, Li WQ, Zafarullah M. Inhibition of interleukin-1-stimulated MAP kinases, activating protein-1 (AP-1) and nuclear factor kappa B (NF- ${\kappa}B$ ) transcription factors down-regulates matrix metalloproteinase gene expression in articular chondrocytes. Matrix Biol. 21: 251-262 (2002) 

  34. MacMicking J, Xie QW, Nathan C. Nitric oxide and macrophage function. Annu. Rev. Immunol. 15: 323-350 (1997) 

  35. Martensson O, Maite DC, Ana I, Olle H. Effects of fermented, ropy, non-dairy, oat-based products on serum lipids and the faecal excretion of cholesterol and short chain fatty acids in germfree and conventional rats. Nutr. Res. 22: 1461-1473 (2002) 

  36. Oh HJ, Lee SR. Physiological function in vitro of ${\beta}$ -glucan isolated from barley. Korean J. Food Sci. Technol. 28: 689-695 (1996) 

  37. Park KY. Increased health functionality of fermented foods. Food Ind. Nutr. 17: 1-8 (2012) 

  38. Park HM, Hong JH. Immune-Enhancing Effects of Polysaccharides Isolated from Phellinus linteus Mycelium on Mori ramulus. J. Korean Soc. Food Sci. Nutr. 46: 26-33 (2017) 

  39. Park HR, Lee MS, Jo SY, Won HJ, Lee HS, Lee H, Shin KS. Immuno-stimulating activities of polysaccharides isolated from commercial soy sauce and traditional Korean soy sauce. Korean J. Food Sci. Technol. 44: 228-234 (2012) 

  40. Park JY, Shin MS, Kim SN, Kim HY, Kim KH, Shin KS, Kang KS. Polysaccharides from Korean Citrus hallabong peels inhibit angiogenesis and breast cancer cell migration. Int. J. Biol. Macromol. 85: 522-529 (2016) 

  41. Paulsen B. Plant polysaccharides with immunostimulatory activities. Curr. Org. Chem. 5: 939-950 (2001) 

  42. Pennini ME, Perkins DJ, Salazar AM, Lipsky M, Vogel SN. Complete dependence on IRAK4 kinase activity in TLR2, but not TLR4, signaling pathways underlies decreased cytokine production and increased susceptibility to Streptococcus pneumoniae infection in IRAK4 kinase-inactive mice. J. Immunol. 1201644 (2012) 

  43. Rice PJ, Kelley JL, Kogan G, Ensley HE, Kalbfleisch JH, Browder IW, Williams DL. Human monocyte scavenger receptors are pattern recognition receptors for ( $1{\rightarrow}3$ )- ${\beta}$ -D-glucans. J. Leukocyte Biol. 72: 140-146 (2002) 

  44. Roubroeks JP, Skjak-Braek G, Ryan L, Christensen BE. Molecular Weight Dependency on the Production of the TNF Stimulated by Fractions of rye ( $1{\rightarrow}3$ ),( $1{\rightarrow}4$ )- ${\beta}$ -D-Glucan. Scand. J. Immunol. 52: 584-587 (2000) 

  45. Shao BM, Xu W, Dai H, Tu P, Li Z, Gao XM. A study on the immune receptors for polysaccharides from the roots of Astragalus membranaceus, a Chinese medicinal herb. Biochem. Biophys. Res. Commun. 320: 1103-1111 (2004) 

  46. Shin MS, Lee H, Hong HD, Shin KS. Characterization of immunostimulatory pectic polysaccharide isolated from leaves of Diospyros kaki Thumb. (Persimmon). J. Funct. Foods 26: 319-329 (2016) 

  47. Shin MS, Park SB, Shin KS. Molecular mechanisms of immunomodulatory activity by polysaccharide isolated from the peels of Citrus unshiu. Int. J. Biol. Macromol. 112: 576-583 (2018) 

  48. Singleton V, Rossi JA. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am. J. Enol. Vitic. 16: 144-158 (1965) 

  49. Smiderle FR, Alquini G, Tadra-Sfeir MZ, Iacomini M, Wichers HJ, Van Griensven LJ. Agaricus bisporus and Agaricus brasiliensis ( $1{\rightarrow}6$ )- ${\beta}$ -D-glucans show immunostimulatory activity on human THP-1 derived macrophages. Carbohydr. Polym. 94: 91-99 (2013) 

  50. Starr R, Willson TA, Viney EM, Murray LJ, Rayner JR, Jenkins BJ, Gonda TJ, Alexander WS, Metcalf D, Nicola NA, Hilton DJ. A family of cytokine-inducible inhibitors of signalling. Nature 387: 917-921 (1997) 

  51. Stuehr DJ. Mammalian nitric oxide synthases. Biochim. Biophys. Acta 1411: 217-230 (1999) 

  52. Tada R, Ikeda F, Aoki K, Yoshikawa M, Kato Y, Adachi Y, Tanioka A, Ishibashi K, Tsubaki K, Ohno N. Barley-derived ${\beta}$ -D-glucan induces immunostimulation via a dectin-1-mediated pathway. Immunol. Lett. 123: 144-148 (2009) 

  53. Tanoue T, Nishida E. Molecular recognitions in the MAP kinase cascades. Cell. Signalling 15: 455-462 (2003) 

  54. Taylor PR, Brown GD, Reid DM, Willment JA, Martinez-Pomares L, Gordon S, Wong SY. The b-glucan receptor, dectin-1, is predominantly expressed on the surface of cells of the monocyte/macrophage and neutrophil lineages. J. Immunol. 169: 3876-3882 (2002) 

  55. Valitutti S, Muller S, Cella M, Padovan E, Lanzavecchia A. Serial triggering of many T-cell receptors by a few peptide-MHC complexes. Nature 375: 148 (1995) 

  56. Wang SY, Hsu ML, Hsu HC, Tzeng CH, Lee SS, Shiao MS, Ho CK. The antitumor effect of Ganoderma lucidum is mediated by cytokines released from activated macrophages and T lymphocytes. Int. J. Cancer 70: 699-705 (1997) 

  57. Wasser SP. Medicinal mushrooms as a source of antitumor and immunomodulating polysaccharides. Appl. Microbiol. Biotechnol. 60: 258-274 (2002) 

  58. Yamada H. Chemical and pharmacological studies on efficacy of Japanese and Chinese herbal medicines. Kitasato Arch. Exp. Med. 65: 1-22 (1992) 

  59. Yang SH, Andrew DS, Alan JW. Transcriptional regulation by the MAP kinase signaling cascades. Gene 320: 3-21 (2003) 

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