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동애등에(Ptecticus tenebrifer) 추출물 투여가 흰다리새우 (Litopenaeus vannamei) 치하의 성장과 수질에 미치는 영향
Effect of Ptecticus Tenebrifer Extract on The Growth of Juvenile Litopenaeus Vannamei and Water Quality 원문보기

Journal of environmental science international = 한국환경과학회지, v.28 no.1, 2019년, pp.1 - 6  

김태훈 (주식회사 푸디웜) ,  최인학 (중부대학교 바이오융합학부) ,  정태호 (중부대학교 바이오융합학부)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Ptecticus tenebriferwas incorporated to partially or totally replace the diets of juvenile white shrimp (Litopenaeus vannamei). Experimental groups of shrimp with an average initial body weight of $0.014{\pm}0.001g$ were fed each of the 5 diets formulated to include 0, 25, 50, 75, and 100...

주제어

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문제 정의

  • 따라서 본 연구에서는 흰다리새우(L. vannamei) 치하를 대상으로 동애등에(P. tenebrifer) 추출 분말의 농도별 투여 시 성장촉진, 면역증강, 그리고 수질환경에 미치는 영향을 평가하고 분석하는데 그 목적을 두었다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
새우 양식에서 가장 중요한 요소는? 새우 양식에서 생산비의 50%를 차지하는 것은 사료로서, 영양학적 비용이 가장 중요한 요소이다(Tacon and Metain, 2008). 어분은 특히 새우 사료의 단백질원으로 사용되어 왔으며, 지구온난화와 관련된 어분의 공급 부 족과 가격 상승으로 인해 양식업에서 어분에 대한 의존 도를 줄이고 새로운 단백질원을 찾는 것은 매우 중요한 과제가 되고 있다(Amaya et al.
동애등에 유충은 무엇에서 아주 높은 밀도로 발생하는가? 동애등에(Ptecticus tenebrifer, 파리목 동애등에과) 유충은 커피콩 펄프, 채소, 술지게미 및 생선 내장(생선 가공 부산물)과 같은 유기 폐기물에서도 아주 높은 밀도로 발생하며, 유충을 상업적으로 사용하면 분뇨 및 기타 유기 폐기물과 관련된 여러 환경 문제를 해결할 수 있을 뿐 아니라, 사료원료로서의 영양학적 가치와 경제성이 다른 곤충보다 뛰어난 것으로 알려져 있다(Amaya et al., 2007).
흰다리새우의 생산량에 가장 큰 영향을 끼치는 원인은? 흰다리새우(Litopenaeus vannamei)는 양식업에서 매우 중요한 종 중 하나이며, 흰다리 새우의 생산량에 가장 큰 영향을 끼치는 원인은 흰 반점 바이러스(white spot syndrome virus)에 의한 대량폐사가 대표적으로, 흰다리 새우의 면역증진을 통해 생산성을 증대시키려는 노력은 새우 양식업에서 매우 중요하다. 또한, 새우 양식의 특성상 순환식 여과를 하지 않는 호지에서 키우게 되므로, 수중의 사료 찌꺼기, 대사산물 및 배설물 등에서 유래된 많은 양의 질산, 아질산 및 암모니아와 같은 질소성분은 사육수의 부영양화와 이에 따른 수질악화를 초래하기 때문에 질병과 함께 가장 문제시되고 있다(Gross et al.
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참고문헌 (9)

  1. Amaya, E. A., Davis, D. A., Rouse, D. B., 2007, Replacement of fish meal in practical diets for the Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) reared under pond conditions, Aquacult., 262, 393-401. 

  2. APHA, American Public Health Association, 1985, Standard methods for the examination of water and wastewater. APHA, N. V. 

  3. Bulbul, M., Koshio, S., Ishikawa, M., Yokoyama, S., Kader, Md. A., 2015, Growth performance of juvenile kuruma shrimp, Marsupenaeus japonicus (Bate) fed diets replacing fishmeal with soybean meal, Aquacult. Res., 46, 572-580. 

  4. Diener, S., Zurbrugg, C., Roa-Gutierrez, R., Dang, H. N., Morel, A., Koottatep, T., Tockner, K., 2011, Black soldier fly larvae for organic waste treatment - prospects and constraints, Proceedings of the WasteSafe, 2nd International Conference on Solid Waste Management in Developing Countries, 13-15 February 2011, Khulna, Bangladesh. 

  5. Gross, P. S., Bartlett, T. C., Browdy, C. L., Chapman, R. W., Warr, G. W., 2001, Immune gene discovery by expressed sequence tag analysis of hemocytes and hepatopancreas in the Pacific White Shrimp, Litopenaeus vannamei, and the Atlantic White Shrimp, L. setiferus, Dev. Comp. Immunol., 25, 565-77. 

  6. Newton, G. L., Sheppard, C., Watson, D. W., Burtle, G., Dove, R., 2005, Using the black soldier fly, Hermetia illucens, as a value-added tool for the management of swine manure. Report for Mike Williams, Director of the Animal and Poultry Waste Management Center, North Carolina State University. 

  7. SAS., 2002, SAS/STAT Software for PC, Release 9.1, SAS Institute Inc. Cary, NC, USA. 

  8. Tacon, A. G. J., Metian, M., 2008, Global overview on the use of fish meal and fish oil in industrially compounded aquafeeds: Trends and future prospects, Aquacult., 285, 146-158. 

  9. Vargas-Albores, F., Yepiz-Plascencia, G., 2000, Beta glucan binding protein and its role in shrimp immune response, Aquacult., 191, 13-21. 

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