분리세균에 의한 ochratoxin 생성 Aspergillus spp.의 생장 및 독소생성 저해 Inhibition of growth and toxin production of ochratoxigenic Aspergillus spp. by isolated bacteria원문보기
Ochratoxin A (OTA)는 주로 Aspergillus가 생성하는 진균 독소의 하나로 저장 곡물의 흔한 오염물질로 인간과 가축의 건강을 위협하고 있다. 본 연구의 목적은 분리 세균인 Bacillus subtilis AF13과 Streptomyces shenzhenensis YR226의 OTA 생성 Aspergillus 균주들에 대한 생장과 OTA 생성 저해능 조사이다. OTA 생성 세 균주들의 균사 생장과 포자 형성에 대한 항진균활성은 한천 평판에서 AF13과 YR226 균주와의 공동배양에 의해 조사되었다. AF13과 YR226은 10일 배양 중 진균 집락 직경을 각각 77.58%와 78.48% 감소시켰으며, 두 균주 모두 포자 형성을 99%까지 저해하였다. YR226은 또한 세 진균 균주의 포자 발아도 91% 이상 감소시켰다. Yeast extract sucrose 배지에서 Aspergillus와 AF13 또는 YR226 균주를 동시배양하였을 때 세 종류 진균 모두 균사체 생장과 OTA 생성이 감소하였다. 특히 AF13은 A. alutaceus의 균사체 생장을 완전히 저해하고 OTA 생성은 99% 감소시켰으며, YR226은 균사체 생장과 독소 생성을 99%까지 저해하였다. AF13과 YR226이 생성하는 항진균물질에는 siderophore, chitinase, protease, ${\beta}$-1,3-glucanase와 biosurfactant가 포함된다. 이 결과는 AF13과 YR226이 독소생성 진균으로부터 가치있는 농작물을 보호하는 생물학적 방법으로 이용될 수 있으며, 따라서 농업과 사료산업에서 경제적 피해를 감소시킬 수 있을 것이다.
Ochratoxin A (OTA)는 주로 Aspergillus가 생성하는 진균 독소의 하나로 저장 곡물의 흔한 오염물질로 인간과 가축의 건강을 위협하고 있다. 본 연구의 목적은 분리 세균인 Bacillus subtilis AF13과 Streptomyces shenzhenensis YR226의 OTA 생성 Aspergillus 균주들에 대한 생장과 OTA 생성 저해능 조사이다. OTA 생성 세 균주들의 균사 생장과 포자 형성에 대한 항진균활성은 한천 평판에서 AF13과 YR226 균주와의 공동배양에 의해 조사되었다. AF13과 YR226은 10일 배양 중 진균 집락 직경을 각각 77.58%와 78.48% 감소시켰으며, 두 균주 모두 포자 형성을 99%까지 저해하였다. YR226은 또한 세 진균 균주의 포자 발아도 91% 이상 감소시켰다. Yeast extract sucrose 배지에서 Aspergillus와 AF13 또는 YR226 균주를 동시배양하였을 때 세 종류 진균 모두 균사체 생장과 OTA 생성이 감소하였다. 특히 AF13은 A. alutaceus의 균사체 생장을 완전히 저해하고 OTA 생성은 99% 감소시켰으며, YR226은 균사체 생장과 독소 생성을 99%까지 저해하였다. AF13과 YR226이 생성하는 항진균물질에는 siderophore, chitinase, protease, ${\beta}$-1,3-glucanase와 biosurfactant가 포함된다. 이 결과는 AF13과 YR226이 독소생성 진균으로부터 가치있는 농작물을 보호하는 생물학적 방법으로 이용될 수 있으며, 따라서 농업과 사료산업에서 경제적 피해를 감소시킬 수 있을 것이다.
Ochratoxin A (OTA) that is one of mycotoxins produced mainly by Aspergillus spp. is a common contaminant of stored grains and poses health hazards to human and livestock. The aim of this study is to explore the ability of isolated bacteria Bacillus subtilis AF13 and Streptomyces shenzhenensis YR226 ...
Ochratoxin A (OTA) that is one of mycotoxins produced mainly by Aspergillus spp. is a common contaminant of stored grains and poses health hazards to human and livestock. The aim of this study is to explore the ability of isolated bacteria Bacillus subtilis AF13 and Streptomyces shenzhenensis YR226 to inhibit growth and OTA production of 3 ochratoxigenic Aspergillus strains. The antifungal activity against mycelial growth and sporulation of Aspergillus strains was examined by coculture with AF13 and YR226 on potato dextrose agar plate. AF13 and YR226 reduced 77.58 and 78.48% of fungal colony radius, respectively, and both strains inhibited fungal sporulation up to 99% in 10 days of incubation. YR226 also reduced more than 91% of spore germination of 3 fungal strains. When Aspergillus strains were cocultured with AF13 or YR226 in yeast extract sucrose medium, mycelial growth and OTA production decreased in all three fungal strains. In particular, AF13 completely inhibited the mycelial growth of A. alutaceus and inhibited its OTA production by 99%, and YR226 also reduced mycelial growth and toxin production up to 99%, respectively. Antimicrobial substances produced by AF13 and YR226 included siderophore, chitinase, protease, ${\beta}$-1,3-glucanase and biosurfactant. These results suggest that AF13 and YR226 can be used in a biological method to prevent valuable crops against mycotoxigenic fungi, and therefore decrease economic damage in agriculture and feed industry.
Ochratoxin A (OTA) that is one of mycotoxins produced mainly by Aspergillus spp. is a common contaminant of stored grains and poses health hazards to human and livestock. The aim of this study is to explore the ability of isolated bacteria Bacillus subtilis AF13 and Streptomyces shenzhenensis YR226 to inhibit growth and OTA production of 3 ochratoxigenic Aspergillus strains. The antifungal activity against mycelial growth and sporulation of Aspergillus strains was examined by coculture with AF13 and YR226 on potato dextrose agar plate. AF13 and YR226 reduced 77.58 and 78.48% of fungal colony radius, respectively, and both strains inhibited fungal sporulation up to 99% in 10 days of incubation. YR226 also reduced more than 91% of spore germination of 3 fungal strains. When Aspergillus strains were cocultured with AF13 or YR226 in yeast extract sucrose medium, mycelial growth and OTA production decreased in all three fungal strains. In particular, AF13 completely inhibited the mycelial growth of A. alutaceus and inhibited its OTA production by 99%, and YR226 also reduced mycelial growth and toxin production up to 99%, respectively. Antimicrobial substances produced by AF13 and YR226 included siderophore, chitinase, protease, ${\beta}$-1,3-glucanase and biosurfactant. These results suggest that AF13 and YR226 can be used in a biological method to prevent valuable crops against mycotoxigenic fungi, and therefore decrease economic damage in agriculture and feed industry.
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문제 정의
Ochratoxin A (OTA)는 주로 Aspergillus가 생성하는 진균 독소의 하나로 저장 곡물의 흔한 오염물질로 인간과 가축의 건강을 위협하고 있다. 본 연구의 목적은 분리 세균인 Bacillus subtilis AF13과 Streptomyces shenzhenensis YR226의 OTA 생성 Aspergillus 균주들에 대한 생장과 OTA 생성 저해능 조사이다. OTA 생성 세균주들의 균사 생장과 포자 형성에 대한 항진균활성은 한천평판에서 AF13과 YR226 균주와의 공동배양에 의해 조사되었다.
제안 방법
β-1,3-Glucanase: Peptone-bouillon-yeast agar (Difco Lab.)에 균 주를 획선 배양 후 형성된 집락 주변 투명대를 통해 β-1,3- glucanase의 생성을 판단하였으며 이를 토대로 정량실험을 실시하였다.
, 2004). 2% skim milk agar에 AF13과 YR226을 획선 도말한 후 배양 24시간 만에 AF13 주변에 투명환이 관찰되어 protease 활성을 확인한 후 AF13의 protease 생성을 측정하였는데, 배양 72시간에 4.1 U로 가장 높았다(Fig. 2A). 이는 Xylella fastidiousa의 활성과 유사하며 (Maria Fedatto et al.
800 µl의 15% YES 배지가 담긴 1.5 ml 미세원심분리관에 진균 포자 현탁액(106 spores/ml) 100 µl와 세균 현탁액 (107 CFU/ml) 100 µl를 첨가하였으며, 대조구는 세균 현탁액 대신 0.85% NaCl 용액을 100 µl 첨가하여 수행하였다.
, 2011), 또한 chitinase를 생산하는 미생물은 OTA 생성 진균의 생장도 억제할 수 있다. AF13과 YR226 균주를 colloidal chitin 첨가 배지에서 7일 배양 시 집락 주변에 투명한 환이 생성되어 두 균주의 chitinase 생산을 확인하였다. 이후 24시간 주기로 효소 활성을 측정한 결과, AF13 균주는 배양 72시간째에 1.
AF13과YR226 균주의 sidero-phore 생성을 측정하였는데 두 균주 모두 배양 48시간 후 각각 35.4와 96.7 µM의최대생산을보였다(Fig. 1A).
Agar spot assay: 항진균능의 유무를 조사하기 위해 수행된 agar spot assay는 Sangmanee와 Hongpattarakere (2014)의 방법을 수정하여 수행하였다. 선 배양한 세균 균주의 배양액은 분광광도계(Shimadzu UV-1700)을 이용하여 OD600을 1.
Chitinase: 균주의 chitinase 생성능은 colloidal chitin을 탄소 원으로 첨가한 배지에 균주를 획선 배양하여(7일) 집락 근처 투명대 형성 유무로 정성분석하였다. 정량분석은 basal salt 배 지에 균주를 배양하여 회수한 상등액 500 µl에 1% colloidal chitin이 첨가된 인산나트륨 완충액(50 mM, pH 7) 500 µl를 혼합하여 반응시켜(1 h, 37°C) DNS 용액을 첨가한 뒤생성된 산물인 N-acetylglucosamine의 농도를 OD575로 측정하였다(Nagpure and Gupta, 2013).
OTA 분해능이 있는 71개의 토양 분리 균주를 대상으로 한국 미생물 보존센터(Korea Culture Center of Microoganisms)에서 분양받은 OTA 생성 진균(Aspergillus awamori KCCM 32316, Aspergillus fresenii KCCM 60465 및 Aspergillus alutaceus KCCM 60421)에 대한 항진균능을 조사하였다. 그 중 진균 생장 억제능이 가장 높은 두 균주를 선별하였는데 이들은 이미 OTA 생분해능이 높다고 보고된 Bacillus subtilis AF13과 Streptomyces shenzhenensis YR226이었으며(Choi and Song, 2019), 이 두 균주를 대상으로 여러 항진균활성을 조사하였다.
Protease 활성조사를 위해 24시간 마다 균주 배양 상등액을 회수하여 1% gellatin이 함유된 인산칼륨완충액(50 mM, pH 6.8) 과 반응(1 h, 30°C) 후 15% trichloroacetic acid 용액으로 반응을 중지시켰다.
Protease: 균주를 2% skim milk agar (Difco Lab.)에 획선 배양하여 집락 주변 투명대로 protease 생산 여부를 판단하였다. Protease 활성조사를 위해 24시간 마다 균주 배양 상등액을 회수하여 1% gellatin이 함유된 인산칼륨완충액(50 mM, pH 6.
Siderophore: Chrome azurol S (CAS) agar 배지에 well을 뚫어 균주 배양 상등액 70 µl를 넣은 후 배양하여(30°C, 암 조건, 48시간) 투명 혹은 노란색 환의 형성 유무로 siderophore 생성을 조사하였다(Schwyn and Neilands, 1987).
계면활성물질: 균주 배양 상등액의 계면활성을 조사하기 위해 원유에 배양 상등액을 떨어뜨려 원유가 넓게 퍼지는지 관찰하였고(Rodrigues et al., 2006), 배양 상등액의 표면장력은 표면장력계(Model 514-B2, Itoh Seisakuso)를 이용하여 LB 배지와 비교하였다. 균주가 생산하는 계면활성물질의 잔기를 조사하기 위해 배양 상등액의 pH를 2.
1으로 진균 균사체를 걸러냈다. 균사체의 건조 중량은 흄 후드에서 질량 변화가 없을 때까지 건조시킨 후 측정하여 균사 생장 저해를 정량하였다.
, 2006), 배양 상등액의 표면장력은 표면장력계(Model 514-B2, Itoh Seisakuso)를 이용하여 LB 배지와 비교하였다. 균주가 생산하는 계면활성물질의 잔기를 조사하기 위해 배양 상등액의 pH를 2.0으로 보정하여 동량의 ethyl acetate로 추출하고 감압증발하여 농축시켰다. 농축 시료를 thin layer chromatography plate (silica gel 60, 70~230 mesh; Merck)에 점적하여 이동상(chloroform : methanol : glacial acetic acid = 65 : 15 : 2, v/v)으로 전개 후 ninhydrin과 bromothymol blue 시약으로 각각 단백질과 지방 잔기를 조사하였고(Sharma and Saharan, 2014), 당잔기는이동상(chloroform : methanol : water = 65 : 15 : 2, v/v)으로 전개 후 orcinol 시약으로 염색하여 물질의 성질을 판단하였다(Nayak et al.
균주를 선 배양한 액체배지를 원심분리(1,900× g, 30분, 4°C; UNION 5KR, Hanil Science)하여 회수 후, 0.85% NaCl에 재현탁하여 이용하였다.
0으로 보정하여 동량의 ethyl acetate로 추출하고 감압증발하여 농축시켰다. 농축 시료를 thin layer chromatography plate (silica gel 60, 70~230 mesh; Merck)에 점적하여 이동상(chloroform : methanol : glacial acetic acid = 65 : 15 : 2, v/v)으로 전개 후 ninhydrin과 bromothymol blue 시약으로 각각 단백질과 지방 잔기를 조사하였고(Sharma and Saharan, 2014), 당잔기는이동상(chloroform : methanol : water = 65 : 15 : 2, v/v)으로 전개 후 orcinol 시약으로 염색하여 물질의 성질을 판단하였다(Nayak et al., 2009).
대조구는 세균 없이 동일한 조건으로 수행하였고, 모든 평판 배지는 25°C에서 10일 동안 배양하며 진균 집락의 반경을 24시간마다 측정하여 진균 생장 저해를 조사하였다.
대조구는 세균 없이 동일한 조건으로 수행하였고, 모든 평판 배지는 25°C에서 10일 동안 배양하며 진균 집락의 반경을 24시간마다 측정하여 진균 생장 저해를 조사하였다. 또한 이 배지에서 자라난 진균의 포자를 15 ml의 Tween 80 (0.05%, v/v) 용액으로 회수하고 Neubauer chamber를 이용하여 계수하여 포자 생성 저해를 정량하였다.
액체배지에서 진균 생장과 독소 농도 변화: 액체배지에서 진균 생장과 독소 농도 변화에 대한 선별 균주의 효과는 El-Gendy와 Marth (1981)의 방법을 수정하여 조사하였고, 독소 분석은 Xiong 등(2017)의 방법을 수정하여 평가하였다. 멸균된 15% YES 배지 45 ml에 세 진균 균주의 포자 현탁액(106 spores/ml) 1%와 세균 배양액(107 CFU/ml) 10%를 동시에 접종하였으며 대조구는 포자 현탁액만 접종하였다. 모든 실험구는 30°C에서 5일간 배양(200 rpm, 암조건)하였으며, 24시간 주기로 복식 시료로부터 Whatman 여과지 No.
모든 실험구는 25°C에서 24시간 동안 배양 후 포자 발아 정도를 광학 현미경(×400)으로 관찰하였다.
모든 실험구는 25°C에서 24시간 동안 배양 후 포자 발아 정도를 광학 현미경(×400)으로 관찰하였다. 발아관의 길이가 포자의 지름과 같거나 길 때, 발아한 것으로 간주하였고, 각 실험구 당 무작위로 포자 100개를 관찰하여 포자 발아율을 계산하였다.
분석에 이용한 이동상은 물/아세토나이트릴/초산(99:99:2, v/v)이며, column oven의 온도는 30°C, 시료 주입량은 20 µl, 유속은 1 ml/min으로 하여 형광 검출기(FLD; Agilent Technologies, 1260 Infinity, 333 nm excitation, 460 nm emission)을 이용하여 15분간 분석하였다.
선 배양한 세균 균주의 배양액은 분광광도계(Shimadzu UV-1700)을 이용하여 OD600을 1.0으로 보정하여(AF13과 YR226 개체수는 각각 7.45 × 107 과 1.57× 105 CFU/ml) 배지 중앙두점에 5 µl씩 점적 후 배양하였으며 (48시간, 37°C), 집락이 형성되지 않은 경우 최대 120시간까지 배양하였다.
포자 발아 억제: 진균 포자의 발아 저해에 대한 선별 균주의 효과를 조사하기 위해 Veras 등(2016)의 방법을 수정하여 수행하였다. 800 µl의 15% YES 배지가 담긴 1.
회전 감압 증발기로 chloroform을 모두 증발시키고(55°C), 70% methanol (v/v)을 첨가하여 재용해 시킨 후, 시린지 필터(Hyundai micro, 0.2 µm, hydrophobic)로 여과하여 high performance liquid chromatography (HPLC; Younglin, YL9100 HPLC System)로 Symmetry C18 column (150 × 4.6 mm) (Waters Co.)을 이용하여 분석하였다.
대상 데이터
본 연구의 목적은 분리 세균인 Bacillus subtilis AF13과 Streptomyces shenzhenensis YR226의 OTA 생성 Aspergillus 균주들에 대한 생장과 OTA 생성 저해능 조사이다. OTA 생성 세균주들의 균사 생장과 포자 형성에 대한 항진균활성은 한천평판에서 AF13과 YR226 균주와의 공동배양에 의해 조사되었다. AF13과 YR226은 10일 배양 중 진균 집락직경을 각각 77.
0%의 상동성을 보였다. 선별 균주의 염기서열은 각각 MN305769와 MN305738 로 GenBank에 등록하였고, 균주는 생물자원센터(KCTC)에 기탁하였다(KCTC18741P 및 KCTC18742P).
데이터처리
0 (IBM SASS statistics 24, USA)를 이용하여 수행하였다. 항진 균능과 분해능에서 대조군과 처리구 사이에 통계적으로 유의 한 차이는 Independent two-sample t-test를 통해 조사하였다. 모든 실험에 대해 p < 0.
이론/모형
진균 생장 및 포자 생성 저해: 독소 생성 진균의 생장 및 포자 생성 저해에 대한 선별 균주의 효과는 Veras 등(2016)의 방법으로 평가하였다. 균주를 선 배양한 액체배지를 원심분리(1,900× g, 30분, 4°C; UNION 5KR, Hanil Science)하여 회수 후, 0.
성능/효과
3종의 진균에 대해 독소 감축이 가장 효과적인 YR226 균주의 경우, 배양 5일 후에 최대 393.71 µg/L의 OTA를 생성하는 A. alutaceus KCCM 60421을 선별 균주와 동시 접종 시, 0.80 µg/L까지 감소시켰다.
진균 생장 및 포자 생성 저해: Agar spot assay에서 OTA 생성 진균에 대한 항진균 활성을 확인한 분리균주에 대해 평판배지에서 진균 생장과 포자 생성 저해 활성을 측정하였다. AF13 균 주는 대조구에 비하여 A. alutaceus KCCM 60421와 A. fresenii KCCM 60465의 균사 생장을 각각 77.58%와 63.19% 저해하였으며, 포자 생성을 각각 87.98%와 99.96% 억제하였다. YR226 균주도 이와 유사하게 두 진균의 균사 생장을 대조구에 비해 각각 78.
처리구의 진균 생장(균사의 건조중량)과 OTA 농도는 대조구에 비하여 크게 억제되었다. AF13 균주는 3종의 진균의 균사 생장을 97% 이상 저해하였으며, OTA 농도는 대조구에 비해 최대 99% 감소시켰다. YR226 균주는 3종의 진균 생장을 73% 이상 억제하였고, 진균 2종의 OTA 생성을 100% 감축시켰다(Table 3).
, 1982). AF13과 YR226 균주의 배양 상등액 모두 원유를 넓게 퍼뜨리는 계면활성을 보였으며, 배양 상등액의 표면장력 측정시 초기의 63.7 mN/m을 AF13 균주는 배양 48시간에 35.3 mN/m로, YR226 균주는 배양 120시간에 37.0 mN/m로 감소시켰다. 이들이 생산하는 계면활성물질의 성질을 TLC로 조사하였는데, TLC 판을 다양한 염색시약으로 염색하였을 때 AF11 배양액은 ninhydrin과 bromothymol 시약에 양성반응을 보였으며 YR226 배양액은 orcinol, ninhydrin 및 bromothymol 시약 모두에 염색되었다.
특히, Nayak 등(2009)의 전개조건으로 TLC 수행 시 YR226 추출물에서 Pseudoxanthomonas sp. PNK-04가 생산하는 monor- hamnolipid의 Rf값과 동일한 결과를 보였으며, 해당 TLC 분 획을 증류수에 녹여 항진균 활성 조사 시 진균 생장 억제효과가 나타났다. 표면 활성이외에, rhamnolipid는 항세균성, 항진 균성 및 항바이러스성을 갖는 것으로 알려져 있다(Stanghellini and Miller, 1997).
Peptone- bouillon-yeast agar를 이용한 β-1,3-glucanase 활성 조사 시 YR226 균주는 투명대가 나타나지 않았고 AF13 집락 주변에는 투명대가 형성되어 AF13 균주만의 β-1,3-glucanase 생산이 확인되었다.
AF13 균주는 3종의 진균의 균사 생장을 97% 이상 저해하였으며, OTA 농도는 대조구에 비해 최대 99% 감소시켰다. YR226 균주는 3종의 진균 생장을 73% 이상 억제하였고, 진균 2종의 OTA 생성을 100% 감축시켰다(Table 3). 3종의 진균에 대해 독소 감축이 가장 효과적인 YR226 균주의 경우, 배양 5일 후에 최대 393.
96% 억제하였다. YR226 균주도 이와 유사하게 두 진균의 균사 생장을 대조구에 비해 각각 78.48%와 75.82%, 포자 생성을 각각 98.69%와 99.96% 감소시켰다(Table 1). 이는 AF13과 동일 종인 Bacillus subtilis CW14 균주가 OTA 생성 진균의 균사 생장을 30.
두 균주는 ㈜코스모진텍에 의뢰하여 얻은 16S rRNA 유전자 염기서열을 미국 NCBI database에 등록된 균주와 비교 시, 각각 Bacillus subtilis DSM10및 Streptomyces shenzhenensis 172115와 99.0%의 상동성을 보였다.
표면 활성이외에, rhamnolipid는 항세균성, 항진 균성 및 항바이러스성을 갖는 것으로 알려져 있다(Stanghellini and Miller, 1997). 또한 blood agar에 세균 균주를 획선 배양하였을 때 AF13 균주에서 용혈 현상이 나타났다(결과 미제시). B.
액체배지에서 진균 생장과 독소 농도 변화: OTA 생성 진균과 선별 균주 AF13과 YR226을 YES 배지에 동시 접종하여 5일 배양 시, 대조구의 균사 건조 중량은 평균 1.023~1.082 g이었으며 생성된 OTA는 A. alutaceus KCCM60421, A. awaori KCCM32316과 A fresenii KCCM60465 배양에서 각각 393.72 ± 2.32, 5.95 ± 0.42와 137.16 ± 0.66 µg/L이었다.
0 mN/m로 감소시켰다. 이들이 생산하는 계면활성물질의 성질을 TLC로 조사하였는데, TLC 판을 다양한 염색시약으로 염색하였을 때 AF11 배양액은 ninhydrin과 bromothymol 시약에 양성반응을 보였으며 YR226 배양액은 orcinol, ninhydrin 및 bromothymol 시약 모두에 염색되었다. 특히, Nayak 등(2009)의 전개조건으로 TLC 수행 시 YR226 추출물에서 Pseudoxanthomonas sp.
AF13과 YR226 균주를 colloidal chitin 첨가 배지에서 7일 배양 시 집락 주변에 투명한 환이 생성되어 두 균주의 chitinase 생산을 확인하였다. 이후 24시간 주기로 효소 활성을 측정한 결과, AF13 균주는 배양 72시간째에 1.92 U/ml, YR226 균주는 배양 96시간 후에 2.09 U/ml의 최대 활성을 나타내었다(Fig. 2B). 이는 배양 24시간에 chitinase 최대 활성을 나타낸 Zymomonas sp.
66 µg/L이었다. 처리구의 진균 생장(균사의 건조중량)과 OTA 농도는 대조구에 비하여 크게 억제되었다. AF13 균주는 3종의 진균의 균사 생장을 97% 이상 저해하였으며, OTA 농도는 대조구에 비해 최대 99% 감소시켰다.
Yeast extract sucrose 배지에서 Aspergillus와 AF13 또는 YR226 균주를 동시배양 하였을 때 세 종류 진균 모두 균사체 생장과 OTA 생성이 감소하였다. 특히 AF13은 A. alutaceus의 균사체 생장을 완전히 저해하고 OTA 생성은 99% 감소시켰으며, YR226은 균사체 생장과 독소 생성을 99%까지 저해하였다. AF13과 YR226이 생성하는 항진균물질에는 siderophore, chitinase, protease, β-1,3-glucanase와 biosurfactant가 포함된다.
포자 발아 억제: AF13 균주는 OTA 생성 진균 3종의 포자 발아를 대조구에 비해 45% 이상 감소시켰으며, YR226 균주는 A. fresenii KCCM 60465의 포자 발아를 대조구에 비해 최대 99% 억제하였다(Table 2). AF13 균주보다 YR226 균주가 독소 생성 진균의 포자 발아 저해에 더 효과적이었으며, 이는 Bacillus sp.
후속연구
하지만 Zhu 등(2014)은 항진균성 효모의 OTA 생성 진균에 대한 항진균능이 배지 조건에서는 효과적이었지만, 실제 작물에 적용하였을 때에는 항 진균능이 감소하였다고 보고하였다. 아마 여러 환경 요인이 연관될 수 있을 것으로 추정되며, 따라서 AF13과 YR226 균주도 실제 작물을 대상으로 한 후속연구가 필요하다.
AF13과 YR226이 생성하는 항진균물질에는 siderophore, chitinase, protease, β-1,3-glucanase와 biosurfactant가 포함된다. 이 결과는 AF13과 YR226이 독소생성 진균으로부터 가치있는 농작물을 보호하는 생물학적 방법으로 이용될 수 있으며, 따라서 농업과 사료산업에서 경제적 피해를 감소시킬 수 있을 것이다.
, 2008), AF13 균주도 surfactin의 생산 가능성이 있다. 하지만 AF13과 Y226 균주가 생산하는 정확한 종류의 계면활성물질에 대해서는 추가적인 분석이 필요하다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
Ochratoxin A란?
Ochratoxin A (OTA)는 주로 Aspergillus가 생성하는 진균 독소의 하나로 저장 곡물의 흔한 오염물질로 인간과 가축의 건강을 위협하고 있다. 본 연구의 목적은 분리 세균인 Bacillus subtilis AF13과 Streptomyces shenzhenensis YR226의 OTA 생성 Aspergillus 균주들에 대한 생장과 OTA 생성 저해능 조사이다.
OTA는 동물과 인간에게 어떤 독성을 유발하는가?
, 2002). OTA는 광범위한 오염 분포를 나타 내며, 동물과 인간에게 신장 독성, 기형 유발, 태아 독성, 면역 독성, 유전 독성 및 신경독성을 보이고, 열에 안정적이어서 일 반적인 조리와 가공 후에도 제거되지 않는다(Wangikar et al., 2005).
우리나라에서 정한 식품과 농산물에서 ochratoxin A의 규제 수치는?
, 2005). 이에국제암연구기관(International Agency for Research on Cancer)은 OTA를 발암유발 가능 물질 2군으로 분류하였 으며(IARC, 1993), 우리나라 또한 엄격한 규제 기준을 정하여 식품과 농산물에서 0.5~20 µg/kg 이하로 규제하고 있다(KFDA,2017).
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