울릉도 자생식물인 섬괴불나무(Lonicera morrowii A.Gray) 잎 추출물의 생리활성 Physiological activities of leaf extract of Lonicera morrowii A.Gray, a plant native to Ulleungdo원문보기
본 연구에서는 섬괴불나무 잎으로부터 phenol성 화합물의 생리활성 탐색을 통하여 기능성 소재로 활용 가능성을 살펴보았다. 인체에 무해한 용매인 열수와 ethanol로 추출 했을 때 열수는 3.53 mg/g, 40% ethanol은 2.82 mg/g의 TPC를 나타내었으며, 추출물을 이용하여 항산화 활성, xanthine oxidase (XOase), angiotensin converting enzyme (ACE), α-glucosidase 억제효과 및 항균 활성을 검정하였다. 그 결과 섬괴불나무 잎의 열수와 ethanol 추출물 50-200 ㎍/mL TPC에서 농도의존적으로 DPPH 유리라디칼 소거활성 및 PF가 증가하는 경향을 보였고, 50 ㎍/mL의 저농도에서도 모두 매우 높은 활성을 나타내었다. XOase 저해효과에서는 200 ㎍/mL TPC에서 열수와 ethanol 추출물이 각각 76.35, 99.83%의 높은 저해효과 나타냈으며, ACE 저해효과 또한 200 ㎍/mL TPC에서 열수와 ethanol 추출물 각각 79.06, 87.14%의 저해효과를 확인하였다. α-Glucosidase 저해효과를 측정한 결과 200 ㎍/mL TPC에서 열수와 ethanol 추출물 각각 80.45, 63.58%의 저해효과를 보였다. 생육저해환으로 항균활성을 측정 결과 열수 추출물 200 ㎍/100 μL TPC에서 H. pylori, P. acne균에 대해 각각 11.5, 18.5 mm의 clear zone을 형성 하였고, ethanol 추출물 200 ㎍/100 μL 농도에서는 P. acne균에 대해 10 mm의 clear zone을 형성하였다. 따라서 본 연구를 통하여 섬괴불나무 잎 추출물의 항산화 활성, xanthine oxidase (XOase), angiotensin converting enzyme (ACE), α-glucosidase 억제효과 및 항균 활성이 있다고 판단되었다.
본 연구에서는 섬괴불나무 잎으로부터 phenol성 화합물의 생리활성 탐색을 통하여 기능성 소재로 활용 가능성을 살펴보았다. 인체에 무해한 용매인 열수와 ethanol로 추출 했을 때 열수는 3.53 mg/g, 40% ethanol은 2.82 mg/g의 TPC를 나타내었으며, 추출물을 이용하여 항산화 활성, xanthine oxidase (XOase), angiotensin converting enzyme (ACE), α-glucosidase 억제효과 및 항균 활성을 검정하였다. 그 결과 섬괴불나무 잎의 열수와 ethanol 추출물 50-200 ㎍/mL TPC에서 농도의존적으로 DPPH 유리라디칼 소거활성 및 PF가 증가하는 경향을 보였고, 50 ㎍/mL의 저농도에서도 모두 매우 높은 활성을 나타내었다. XOase 저해효과에서는 200 ㎍/mL TPC에서 열수와 ethanol 추출물이 각각 76.35, 99.83%의 높은 저해효과 나타냈으며, ACE 저해효과 또한 200 ㎍/mL TPC에서 열수와 ethanol 추출물 각각 79.06, 87.14%의 저해효과를 확인하였다. α-Glucosidase 저해효과를 측정한 결과 200 ㎍/mL TPC에서 열수와 ethanol 추출물 각각 80.45, 63.58%의 저해효과를 보였다. 생육저해환으로 항균활성을 측정 결과 열수 추출물 200 ㎍/100 μL TPC에서 H. pylori, P. acne균에 대해 각각 11.5, 18.5 mm의 clear zone을 형성 하였고, ethanol 추출물 200 ㎍/100 μL 농도에서는 P. acne균에 대해 10 mm의 clear zone을 형성하였다. 따라서 본 연구를 통하여 섬괴불나무 잎 추출물의 항산화 활성, xanthine oxidase (XOase), angiotensin converting enzyme (ACE), α-glucosidase 억제효과 및 항균 활성이 있다고 판단되었다.
This study was performed to investigate total phenolic contents, anti-oxidant, biological disease-related enzyme inhibitory, and anti-microbial effects of extracts of Lonicera morrowii leaves prepared with water and 40% ethanol. Anti-oxidative activities of the extracts increased in a dose-dependent...
This study was performed to investigate total phenolic contents, anti-oxidant, biological disease-related enzyme inhibitory, and anti-microbial effects of extracts of Lonicera morrowii leaves prepared with water and 40% ethanol. Anti-oxidative activities of the extracts increased in a dose-dependent manner and were very high even at low phenolic concentration. At phenolic concentrations ranging between 50 and 200 ㎍/mL, the water and ethanol extracts inhibited 39.34-76.35 and 47.53-99.83% of xanthine oxidase activity, 30.21-79.06, and 59.40-87.14% of angiotensin converting enzyme activity, and 59.81-80.35 and 36.06-63.58% of α-glucosidase activity, respectively. All inhibitory effect were increased in a dose-dependent manner. In the paper disc agar diffusion assay against seven microbes, L. morrowii extracts had anti-bacteria activities against Helicobacter pylori, Propionibacterium acne but no effect against other bacteria. These results indicate that the extracts from L. morrowii leaves have the possibility to be developed as a physiologically functional source for prevention of adult diseases.
This study was performed to investigate total phenolic contents, anti-oxidant, biological disease-related enzyme inhibitory, and anti-microbial effects of extracts of Lonicera morrowii leaves prepared with water and 40% ethanol. Anti-oxidative activities of the extracts increased in a dose-dependent manner and were very high even at low phenolic concentration. At phenolic concentrations ranging between 50 and 200 ㎍/mL, the water and ethanol extracts inhibited 39.34-76.35 and 47.53-99.83% of xanthine oxidase activity, 30.21-79.06, and 59.40-87.14% of angiotensin converting enzyme activity, and 59.81-80.35 and 36.06-63.58% of α-glucosidase activity, respectively. All inhibitory effect were increased in a dose-dependent manner. In the paper disc agar diffusion assay against seven microbes, L. morrowii extracts had anti-bacteria activities against Helicobacter pylori, Propionibacterium acne but no effect against other bacteria. These results indicate that the extracts from L. morrowii leaves have the possibility to be developed as a physiologically functional source for prevention of adult diseases.
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문제 정의
따라서 본 연구는 새로운 기능성 식품 개발을 위한 생리활성자원의 발굴을 목적으로 자원의 효율적인 이용을 위해 인동과 식물인 섬괴불나무 잎 추출물의 항산화 활성, xanthine oxidase (XOase), angiotensin converting enzyme (ACE), α-glucosidase 억제효과 및 항균 활성을 검정하여 기능성 식품소재로의 활용 가능성과 신규 기능성 작물을 자원화 하기 위한 기초 자료를 제공하고자 하였다.
Phenolic compounds는 식물의 줄기, 잎, 뿌리, 과일, 꽃과 씨앗등의 다양한 부위에 함유되어 있어 식물의 종류와 부위에 따라 페놀성 화합물의 성분과 함량이 차이가 있다[22, 23]. 따라서 본연구에서는 식품산업에 사용 가능한 용매인 물과 에탄올을 사용하여 섬괴불나무 잎을 추출하였고, 추출용매의 극성에 따른 TPC를 확인하기 위해 에탄올 농도별로 TPC를 확인하였다. 또한 추출용매로 선정한 물과 에탄올의 추출 수율을 비교하기 위해 메탄올, 아세톤, 부탄올을 사용하여 TPC를 비교하였다.
제안 방법
측정하였다. 50mM sodium succinate buffer (pH 4.2)에 ρ-nitrophenol-α-D-glucopyranoside를 용해시켜 1mg/mL 농도로기질을 제조하였으며, 기질용액 1mL와 효소액 0.1mL를 혼합하여 샘플군은 섬괴불나무 잎 추출물 0.1mL, 대조군은 증류수 0.1mL를 각각 넣고 37oC에서 30분간 반응시킨 후 발색시약인 1N NaOH 0.1mL를 첨가하였다. 효소반응에 의해 생성된 ρ- nitrophenole 표준곡선을 통해 계산하였다.
coli 배양에는 nutrient medium을 사용하였으며, agar plate상으로 37oC의 BOD incubator에서 24-48시간 동안배양하였다[18, 19]. Disc method에 의한 항균활성 검색은 최적배지 agar plate에 준비한 균 배양액 100μL를 분주하여 멸균유리봉으로 도말하고 멸균된 지름 8mm 크기의 disc paper를올려놓고 0.45μm membrane filter로 제균한 섬괴불나무 잎 추출물 100μL에 TPC 농도를 50, 100, 150 및 200μg로 분주하였다. 대조구로는 멸균수 100μL를 흡수시켜 24시간 동안 배양하여, disc 주위의 clear zone 생성 유무와 직경을 측정함으로써항균활성을 계산하였다[20].
Jo와 Cho의 방법[3]에 준하여 β-carotene의 산화 억제력에 따라 지용성 항산화 활성을 나타내는 PF는 evaporator용 수기에 β-carotene과 chloroform을 각각 1mg당 5mL 비율로 제조하여 1mL를 넣고 40-50oC water bath를 통해 용액을 증류시킨 다음, 각각의 linoleic acid와 tween 40을 20, 184μL씩 분주하여 β-carotene을 재용해한다. Emulsion 용액을 제조하기 위해 50mL의 H2O2를 넣어주고, 섬괴불나무 잎 추출물 100 μL 와 emulsion 5mL을 혼합하여 vortex한 후 50oC의 water bath 에서 30분간 반응시켜 470nm의 파장에서 흡광도를 측정하였다.
25mL를 첨가하여 시약 반응을 정지시킨 뒤 3mL의 ethyl acetate를 첨가하였다. Ethyl acetate 층으로부터 용매를 증류시킨 잔사에 2mL의 증류수를첨가하여 추출된 hippuric acid를 흡광도 280nm에서 측정하여표준곡선을 통해 계산하였다.
18804를 사용하였다. S. mutans와 C. albicans의 배양을위한 액체배지로는 brain heart infusion 및 YM broth를 각각사용하였으며, E. coli 및 epidermidis의 액체배지로는 nutrient broth를 사용하였고, S. aureus의 액체배지로는 tryptic soy broth를 사용하였다. 고체배지는 상기 액체배지에 agar를 첨가하여 본 실험에 사용하였다.
45μm membrane filter로 제균한 섬괴불나무 잎 추출물 100μL에 TPC 농도를 50, 100, 150 및 200μg로 분주하였다. 대조구로는 멸균수 100μL를 흡수시켜 24시간 동안 배양하여, disc 주위의 clear zone 생성 유무와 직경을 측정함으로써항균활성을 계산하였다[20].
3mL를 넣었다. 대조군은 추출물 대신 증류수를 0.3mL 첨가하여 37oC에서 5 분간 시약 반응을 시킨 후 종료시약인 20% trichloroacetic acid 를 1mL 가한 후 원심분리하여 단백질을 제거하고 흡광도 292 nm에서 측정하여 생성된 uric acid량을 표준곡선을 통해 계산하였다.
82mg/g의 TPC를 나타내어 다른 추출 용매의 TPC 와 비교하였을 때 상대적으로 낮지 않은 TPC를 나타내었다. 따라서 열수와 40% ethanol 추출물을 이용하여 섬괴불나무 잎 추출물의 DPPH radical 소거능과 PF를 측정하였다.
따라서 본연구에서는 식품산업에 사용 가능한 용매인 물과 에탄올을 사용하여 섬괴불나무 잎을 추출하였고, 추출용매의 극성에 따른 TPC를 확인하기 위해 에탄올 농도별로 TPC를 확인하였다. 또한 추출용매로 선정한 물과 에탄올의 추출 수율을 비교하기 위해 메탄올, 아세톤, 부탄올을 사용하여 TPC를 비교하였다. 용매별 추출물의 TPC를 확인한 결과 Fig.
섬괴불나무의 잎은 울릉도에서 자생하는 것을 채취하여 원 기재문과 참고문헌[9-12]을 이용하여 동정하였으며, 잎을 제외한 이물질을 제거한 후, 45oC dry oven에서 건조하였다. 건조한 시료는 분쇄기를 이용하여 40mesh로 분쇄하여 사용하였다.
건조한 시료는 분쇄기를 이용하여 40mesh로 분쇄하여 사용하였다. 열수 추출물의 제조는 시료 1g에 증류수 200mL를 넣고 가열하여 액이 100mL이 되었을 때 냉각하였으며, 용매 추출에서는 1g 의 시료에 10-100% 에탄올 용액, 메탄올, 아세톤, 부탄올을 각각 100mL씩 가하여 homogeniger로 20, 000rpm에서 1분간 균질화하였다. 추출물 모두 12시간 이상 교반 추출하고 추출액은 whatman No.
열수 추출물의 제조는 시료 1g에 증류수 200mL를 넣고 가열하여 액이 100mL이 되었을 때 냉각하였으며, 용매 추출에서는 1g 의 시료에 10-100% 에탄올 용액, 메탄올, 아세톤, 부탄올을 각각 100mL씩 가하여 homogeniger로 20, 000rpm에서 1분간 균질화하였다. 추출물 모두 12시간 이상 교반 추출하고 추출액은 whatman No. 1 filter paper로 여과한 후 섬괴불나무 잎 추출물의 total phenolic contents (TPC)를 측정하였으며, TPC를 조절하기 위해 rotary vacuum evaporator (Eyela NE, Tokyo, Japan)로 농축하여 항산화, 생리활성 효소 억제 효과, 항균효과측정에 사용하였다.
섬괴불나무 잎 추출물 1mL에 60μM DPPH 3mL를 첨가하고 mixing 한 후 실온에서 15분 동안 시약 반응을 시켰다. 측정은 흡광도를 사용하여 517nm의 파장에서 측정하였으며, 추출물의 흡광도와 대조구의 흡광도 차이를 이용하여 계산하였다. Jo와 Cho의 방법[3]에 준하여 β-carotene의 산화 억제력에 따라 지용성 항산화 활성을 나타내는 PF는 evaporator용 수기에 β-carotene과 chloroform을 각각 1mg당 5mL 비율로 제조하여 1mL를 넣고 40-50oC water bath를 통해 용액을 증류시킨 다음, 각각의 linoleic acid와 tween 40을 20, 184μL씩 분주하여 β-carotene을 재용해한다.
1mL를 첨가하였다. 효소반응에 의해 생성된 ρ- nitrophenole 표준곡선을 통해 계산하였다.
대상 데이터
실험에 사용한 균주는 피부상재균으로 세균각막염과 안검결막염 등의 원인균인 Staphylococcus epidermidis의 표준균주 ATCC 12228, Staphylococcus aureus의 표준균주 ATCC 12600, 여드름 원인균 Propionibacterium acne의 표준균주 ATCC 11828, 위, 십이지장궤양의 원인균인 Helicobacter pylori의 표준균주 ATCC 43504, 병원성 대장균인 Escherichia coli의 표준균주 ATCC 9637, 충치원인균인 Streptococcus mutans의 표준균주 ATCC 700610, 구강 내 세균인 Candida albicans의 표준균주 ATCC 18804를 사용하였다. S.
데이터처리
모든 실험결과는 평균±표준편차(mean±standard deviation) 로표현하였다. 통계 분석은 최소 6개의 기술 복제물에 대한 실험을 위해 SPSS 25 (Statistical Package for Social Science, Chicago, IL, USA)의 Duncan’s multiple range test one way ANOVA를 사용하여 수행되었다.
통계 분석은 최소 6개의 기술 복제물에 대한 실험을 위해 SPSS 25 (Statistical Package for Social Science, Chicago, IL, USA)의 Duncan’s multiple range test one way ANOVA를 사용하여 수행되었다. p<0.
이론/모형
Blois의 방법[14]에 준하여 라디칼의 생성 여부에 따라 보라색으로 변하는 라디칼 변화 활성 중 DPPH radical 소거능을 측정하였다. 섬괴불나무 잎 추출물 1mL에 60μM DPPH 3mL를 첨가하고 mixing 한 후 실온에서 15분 동안 시약 반응을 시켰다.
Cushman과 Cheung의 방법[16]에 준하여 ACE 저해 효과를 측정하였다. 샘플군은 0.
추출물에 함유된 TPC를 측정하기 위해 Folin과 Denis [13]의방법에 준하여 섬괴불나무 잎 추출물 1mL, 동량의 95% 에탄올 1mL와 5mL의 증류수를 첨가한 후 2N 농도의 Folin- ciocalteu reagent를 1N 농도로 희석하여 0.5mL를 첨가하였다. 발색시약인 Na2CO3 1mL를 섞어주고 암실에서 1시간 이내로반응시켰다.
성능/효과
00%의 저해효과를 나타내었다고보고하였다. ACE 저해인자로 인식되어지는 성분으로써 peptide 와 그 유도체들 그리고 catechin, polyphenol 성분들이라는 보고 [34]를 바탕으로 섬괴불나무 잎은 ACE 저해효과가 매우 우수하다고 판단되었다.
pylori 균은 최초로 만성 위염 환자의 위점막 생검조직에서 배양되었고 이후 급성 및 만성 위염, 소화불량, 흡수장애증, 저산증, 위궤양, 십이지장 궤양, 위암 등 각종 소화기질환의 주요 원인인자로 국내 정상 성인의 약 60-75% 정도 감염률을 보이며 서구의 여러 나라에 비해 매우 높은 보균율을보이고 있다[40]. 따라서 위궤양과 십이지장 궤양 원인 균인 H. pylori에 대한 항균 효과를 측정한 결과 오직 열수 추출물 200 μg/100μL 농도에서 11.5mm의 생육저해환을 나타내었다. Lee 등[41]이 보고한 약용식물 열수 추출물의 H.
섬괴불나무 잎 추출물의 DPPH radical 소거능과 PF 측정 결과 Table 1에서와 같이 열수와 ethanol 추출물 모두 농도가 증가함에 따라 DPPH radical 소거능이 유의하게 증가하였으며, 측정농도 중 50μg/mL의 낮은 TPC에서 열수와 ethanol 추출물에서 각각 85.11, 84.95%로 나타내어 positive control로 사용한 BHT 보다 높은 소거능을 나타내었다. Ko와 Yang[24]이 보고한 청미래 덩굴 잎의 열수 추출물이 1,000, 2,000 및 3, 000μg/mL 농도에서 각각 33.
[28]. 섬괴불나무 잎 추출물의 XOase 저해효과를 측정한 결과 Fig. 2A에서와 같이 섬괴불나무 잎의 열수와 ethanol 추출물 모두 농도 의존적으로 저해효과가 증가하였으며, 50-150μg/mL TPC에서는 positive control로 사용한 allopurinol과 유사한 효과를 나타내었으나 200μg/mL TPC에서는 76.35, 99.83 및 70.37%로 allopurinol보다 높은 저해효과를 나타내었다. Seo와 Kim이 보고[29]한 쇠무릎 잎의 열수와 ethanol 추출물은 100 μg/mL 농도에서 각각 약 40, 20%의 저해효과를 나타냈으며, Kwon 등 [5]이 보고한 비단풀의 물과 ethanol 추출물은 100 μg/mL 농도에서 각각 37.
ACE 저해제는 angiotensin I을 angiotensin II로바꾸는 효소에 작용하여 angiotensin II 및 aldosterone의 생산을감소시키고, 혈관확장제인 bradykinin을 증가시키고 신장 혈관을 확장시켜 sodium의 배설을 촉진시켜 혈압을 낮추어 줄 수있으며 이로 인해 심혈관 질환 및 뇌혈관질환 등을 치료하는데사용될 수 있다[30, 31]. 섬괴불나무 잎의 ACE 저해효과를 측정한 결과 Fig. 2B에서와 같이 열수와 ethanol 추출물 모두 농도의존적으로 저해효과가 유의적으로 증가하는 경향을 보였으며, 200μg/mL TPC에서 각각 79.06, 87.14%로 매우 높은 저해효과를 나타내었다. Lee 등[32]은 꾸지뽕나무의 줄기, 잎, 열매를 25mL/g으로 열수와 ethanol 추출 했을 때 저해효과가 34.
또한 추출용매로 선정한 물과 에탄올의 추출 수율을 비교하기 위해 메탄올, 아세톤, 부탄올을 사용하여 TPC를 비교하였다. 용매별 추출물의 TPC를 확인한 결과 Fig. 1A에서와 같이 열수, 에탄올, 메탄올, 아세톤 및 부탄올 추출물에서 각각 3.59, 2.61, 2.64, 1.67 및 3.54mg/g의 TPC를 나타내어 열수 추출물에서 가장 높은 TPC를 나타내었으며, 에탄올 추출물은 아세톤 추출물보다는 높은 TPC를 나타내었으며, 메탄올, 부탄올 추출물과 비교하였을 때 낮은 TPC를 나타내었지만, Fig. 1B에서와 같이 에탄올 농도별 추출물의 TPC를 측정한 결과, 40% 에탄올 추출물에서 2.82mg/g의 TPC를 나타내어 다른 추출 용매의 TPC 와 비교하였을 때 상대적으로 낮지 않은 TPC를 나타내었다. 따라서 열수와 40% ethanol 추출물을 이용하여 섬괴불나무 잎 추출물의 DPPH radical 소거능과 PF를 측정하였다.
그 중 대표적인 acarbose는 이당류의 분해효소를 가역적으로 억제하고 탄수화물의 흡수를 지연시켜, 식후 혈당을 감소시킴으로써 인슐린 비의존성 당뇨병의 개선에 효과적이다[35]. 위와 같이 기능성을 가진 소재를 탐색하기 위해 α-glucosidase 저해 효과를 측정한 결과 Fig. 2C에서와 같이 섬괴불나무 잎의 열수와 ethanol 추출물은 농도 의존적으로 저해효과가 증가하는 경향을 나타냈으며, 200μg/mL TPC에서 각각 80.35, 63.58%의 저해 효과를 나타내었다. Choi와 Jung [36]은 모링가 잎 5, 000μg/mL 농도에서 열수와 ethanol 추출물은 각각 45.
acne는 지방분해효소와 화학주성인자를 분비하여 자유지방산을 만들며 백혈구를 모낭주위에 모이게 하여 모낭 벽에 자극을 주어 파괴하여 모낭 내용물이 진피내로 유출되고 염증반응이 일으킨다[37]. 이러한 여드름 원인 균인 P. acne 에 대한 항균효과를 측정 결과, 섬괴불나무 잎 열수 추출물의 100, 150 및 200μg/100μL 농도에서 각각 13, 14 및 18.5 mm의 생육저해환을 나타내었으며, 40% ethanol 추출물은 150, 200μg/100μL 농도에서 각각 9, 10mm의 생육저해환을 나타내었다. Jang 등 [38]은 니아울리 잎 2500μg/disc 농도에서 열수와 50% ethanol 추출물의 항균활성 측정 결과 두 추출물 모두 p.
그 외의 미생물에서는 생육저해효과가 나타나지 않았으며, 추출물 간의 저해효과 차이는 추출 시 사용한 용매, 용매의농도, 및 온도에 따라 추출된 phenolic compounds의 profile 차이에 의한 것으로 예측되어 추가적인 후속연구가 필요하다고 판단되었다[43]. 이상의 결과로 섬괴불나무 잎은 위, 십이지장 균과 여드름의 원인 균에 대한 우수한 항균 활성을 나타내어 기능성 소재로서 개발 가능성을 확인하였다.
후속연구
Pylori에 대한 저해력이 높은 것으로 판단되었다. 그 외의 미생물에서는 생육저해효과가 나타나지 않았으며, 추출물 간의 저해효과 차이는 추출 시 사용한 용매, 용매의농도, 및 온도에 따라 추출된 phenolic compounds의 profile 차이에 의한 것으로 예측되어 추가적인 후속연구가 필요하다고 판단되었다[43]. 이상의 결과로 섬괴불나무 잎은 위, 십이지장 균과 여드름의 원인 균에 대한 우수한 항균 활성을 나타내어 기능성 소재로서 개발 가능성을 확인하였다.
참고문헌 (43)
Hong JH (2013) Physiological activities of leaf and twig extracts from Lindera obtusiloba blume. Korean J Food Cookery Sci 29: 573-580
Jo BS, Cho YJ (2012) Biological activity of extracts from acanthopanax sessiliflorum fruit. korean J food Preserv 19: 586-593
Lee HS, Kim SH (2010) Safety evaluation of black garlic extract for development of cosmeceutical ingredients: Skin irritation and sensitization studies. J Korean Soc Food Sci Nutr 39: 1213-1219
Joo SY (2013) Antioxidant activities of medicinal plant extracts. J korean Soc food Sci Nutr 42: 512-519
Kwon YR, Lee HR, Hwang SH, Kwon OJ, Youn KS (2016) Antioxidant activities and physiological properties of euphorbia humifusa extracts prepared using different solvents. Korean J food preserv 23: 252-258
Lee JS (1999) A study on the phytochemical constituents of Lonicera insularis nakai. Dissertation, Sang-myung university
Kim MS (2010) Phylogeography of Lonicera insularis Nakai (caprifoliaceae) based on morphological characters and chloroplast DNA sequences. Dissertation, Kyungppok national university
Jeong KS, Kim MS, Lee W, Pak JH (2014) Intraspecific variation and geographic study of Lonicera insularis (Caprifoliaceae) based on chloroplast DNA sequences. Korean J PI Taxon 44: 202-207
Nakai T (1927) Trees and shrubs indigenous in Japan Proper. Tokyo 1: 628-687
Nakai T (1938) A new classification of the genus Lonicera in the Japanese Empire together with the diagnoses of new species and new varieties. The Journal of Japanese Botany 14: 359-375
Lee TB (1979) Illustrated flora of Korea. Hyangmunsa, Seoul
Ohwi J (1984) Flora of Japan. National Science Museum. Tokyo
Folin O, Denis W (1912) On phosphotungastic-phosphomolybdic compounds as color reagents. J Biol chem 12: 239-243
Blios MS (1958) Antioxidant determination by the use of a stable free radical. Nature 181: 1199-1200
Stirpe F, Della-Corte E (1969) The regulation of rat liver xanthine oxidase. J Biol Chem 244: 3855-3863
Cushman DW, Cheung HS (1971) Spectrophotometric assay and properties of the angiotensin-converting enzyme of rabbit lung. Biochemical pharmacol 20: 1637-1648
Tibbot BK, Skadsen RW (1996) Molecular cloning and characterization of a gibberellin inducible, putative alpha-glucosidase gene from barley. plant Mol Biol 30: 229-241
Kim KB, Jo BS, Lee JY, Park KT, An BJ, Lee SH, Cho YJ (2012) Beauty food activities of isolated phenolic compounds from Ulmus pumila. J Appl Biol Chem 55: 207-215
An BJ, Park TS, Lee JY, Hyun SJ, Park GH, Cho YJ, Kim SG (2007) Anti-microbial effect of irradiated green tea polyphenol addition into cosmetic composition. J korean Soc Appl Biol Chem 50: 210-216
Ju IS, Cho YU (2009) Purification and identification of phenol compounds with inhibitory activity on Helicobacter pylori from phododendron mucronulatum Flos. extracts. Kor J Life Sci 19: 1125-1131
Cho JW, An TH, Lee SY, Park KW (2012) Determination of total content of phenolic compounds in chinese matrimony vine°Øs accessions. Korean J Crop Sci 57: 409-417
Koh JH, Hwang MO, Moon JS, Hwang SY, Son JY (2005) Antioxidative and antimicrobial activities of pomegranate seed extracts. Korean J Food Cook Sci 21: 171-179
Kim SM, Cho YS, Sung SK (2001) The antioxidant ability and nitrite scavenging ability of plant extracts. Korean J Food Sci Technol 33: 626-632
Ko MS, Yang JB (2011) Antioxidant and antimicrobial activities of Smilax china leaf extracts. Korean J food preserv 18: 764-772
Kim JH, Lee SY, Park JM, Park JH, Kwon OJ, Lee JY (2014) Antioxidant activity and inhibition activity against α-amylase and α-glucosidase of Juniperus rigida Sieb extracts. Korean J Food Preserv 21: 396-403
Kim KB, Jo BS, Park HJ, Park KT, An BJ, Ahn DH, Kim MU, Chae JW, Cho YJ (2012) Healthy functional food properties of phenolic compounds isolated from Ulmus pumila. Korean J Food Preserv 19: 909-918
Jo BS (2012) The screening of biological activity from Pinus koraiensis Siebold et Zucc. leaf and development to funtionality product. Dissertation, Kyungppok national university
Lee YS, Joo EY, Kim NW (2006) Polyphenol contents and physiological activity of the Lespedeza bicolor extracts. Korean J Food Preserv 13: 616-622
Seo SJ, Kim NW (2014) Antioxidant activities of extracts from leaves and stems, of Achyranthes japonica. J Korean Soc Food Sci Nutr 43: 972-979
Lee KH, Kwon HJ, Chun SS, Kim JH, Cho YJ, Cha WS (2006) Biological activities of extracts from Phellinus linteus. J Korean Soc Appl Biol Chem 49: 298-303
Jeon CP, Lee JB, Choi CS, Kwon GS (2011) Biological activities of ethanol extracts from Monascus-fermented chinese yam. Journal of Life Science 21: 1142-1148
Lee Hj, Do JR, Kwon JH, Kim HK (2011) Physiological activities of extracts from different parts of Cudrania tricuspidata. J Korean Soc Food Sci Nutr 40: 942-948
Cho YJ, Chun SS, Kwon HJ, Kim JH, Yoon Sj, Lee KH (2005) Comparison of physiological activities between not-water and ethanol extracts of bokbunja (Rubus coreanum F.). J Korean Soc Food Sci Nutr 34: 790-796
Jin Q, Park JR, Kim JB, Cha MH (1999) Physiological activity of Zizyphus Jujuba leaf extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr 28: 593-598
Park YH, Lim Sh, Ham HJ, Jeong HN, Lee KJ, Kim KH, Kim SM (2010) Comparison of biological activities of extracts from different parts of seabuckthorn (Hippophae rhamnoides L.) J Korean Soc Food Sci Nutr 39: 975-959
Choi YJ, Jung KI (2016) Anti-diabetic, alcohol-metabolizing, and Hepatoprotective activities of moringa (Moringa oleifera Lam.) leaf extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr 45: 819-827
Choi SM, Kim MJ, Choi YH, Ahn HJ, Yun YP (1998) Screening of the antibacterial activity of natural products against propionibacterium acnes. Yakhak Hoeji 42: 89-94
Jang HN, Park SN (2014) Antimicrobial activity of Niaouli (Melaleuca quinquenervia) leaf extracts against skin flora. J Soc Cosmet Scientists Korea 40: 313-320
Jeong WY (2016) Anti-propionibacterium acnes and anti-inflammatory effect of Aloe ferox miller. Dissertation, Kyung Hee University
Lee HA, Kim OJ (2013) Study on the antimicrobial activities of erbal extracts against Helicobactor pylori. Korean J vet Res 53: 117-123
Lee JJ, Kim SH, Chang BS, Lee JB, Huh CS, Kim TJ, Beak YJ (1999) The antimicrobial activity of medicinal plants extracts against Helicobactor pylori. Korean J Food Sci Technol 31: 764-770
Park YS, Kim YH (2006) The effect of medicinal herb extract on antimicrobial activity against Helicobacter pylori and antioxidant activity. J east Aslan Soc Dietary Life 16: 199-206
Park UY, Chang DS, Cho HR (1992) Antimicrobial effect of Lithospermi radix (Lithospermum erythrorhizon) extract. J Korean Soc Food Nutr 21: 97-100
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