[국내논문]광주광역시동물보호소 입양 대상 유기견의 호흡기 질병 실태 조사 A survey of respiratory pathogens in dogs for adoption in Gwangju metropolitan city animal shelter, South Korea원문보기
Canine infectious respiratory disease (CIRD), also known as infectious tracheobronchitis or kennel cough occurs in a multiple-dog environment such as a shelter. In this study, we were collected 300 of nasal swab samples from dogs and 145 of environmental samples from a shelter to investigate respira...
Canine infectious respiratory disease (CIRD), also known as infectious tracheobronchitis or kennel cough occurs in a multiple-dog environment such as a shelter. In this study, we were collected 300 of nasal swab samples from dogs and 145 of environmental samples from a shelter to investigate respiratory pathogens of dogs in the Gwangju metropolitan city animal shelter from February to October, 2019. Bacteria cultures for isolation of Bordetella (B.) bronchiseptica and polymerase chain reaction (PCR) tests were performed for detection of eleven canine respiratory pathogens, namely Mycoplasma (M.) cynos, canine distemper virus (CDV), canine influenza virus (CIV), canine parainfluenza virus (CPIV), canine respiratory coronavirus (CRCoV), alpha-coronavirus (CCoV), canine pneumovirus (CnPnV), canine hepacivirus (CHeV), canine adenovirus type 2 (CAdV-2), canine herpesvirus-1 (CHV-1) and canine bocavirus (CBoV). Among 300 nasal swab samples, 148 samples (49.3%) were positive for at least one pathogens. CHV-1 was the most common pathogen, found in 95/300 (31.7%) samples. Subsequently, M. cynos (22.0%), B. bronchiseptica (2.3%), CPIV (2.0%), CBoV (1.7%), CCoV (0.7%) were detected. The detection rates of M. cynos and CHV-1 according to the duration of stay in the shelter were statistically significant. Among environmental samples, M. cynos, CCoV, CBoV and CHV-1 were detected in 45/145 (31.0%). These results indicated the need for disease control and prevention systems in the shelter.
Canine infectious respiratory disease (CIRD), also known as infectious tracheobronchitis or kennel cough occurs in a multiple-dog environment such as a shelter. In this study, we were collected 300 of nasal swab samples from dogs and 145 of environmental samples from a shelter to investigate respiratory pathogens of dogs in the Gwangju metropolitan city animal shelter from February to October, 2019. Bacteria cultures for isolation of Bordetella (B.) bronchiseptica and polymerase chain reaction (PCR) tests were performed for detection of eleven canine respiratory pathogens, namely Mycoplasma (M.) cynos, canine distemper virus (CDV), canine influenza virus (CIV), canine parainfluenza virus (CPIV), canine respiratory coronavirus (CRCoV), alpha-coronavirus (CCoV), canine pneumovirus (CnPnV), canine hepacivirus (CHeV), canine adenovirus type 2 (CAdV-2), canine herpesvirus-1 (CHV-1) and canine bocavirus (CBoV). Among 300 nasal swab samples, 148 samples (49.3%) were positive for at least one pathogens. CHV-1 was the most common pathogen, found in 95/300 (31.7%) samples. Subsequently, M. cynos (22.0%), B. bronchiseptica (2.3%), CPIV (2.0%), CBoV (1.7%), CCoV (0.7%) were detected. The detection rates of M. cynos and CHV-1 according to the duration of stay in the shelter were statistically significant. Among environmental samples, M. cynos, CCoV, CBoV and CHV-1 were detected in 45/145 (31.0%). These results indicated the need for disease control and prevention systems in the shelter.
* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.
문제 정의
이번 호흡기 질병 실태 조사기간동안 광주동물보호소에 유기견이 입소하면 면역 크로마토그래피 키트를 이용하여 parvovirus, coronavirus 및 심장사상충 검사를 하고 있으며, 호흡기 질환이 있는 개체에 대해서는 대증치료를 실시하고 있다. 따라서 이번 조사는 건강한 반려동물이 시민에게 새 가족으로 입양될 수 있는 호흡기 정밀검사 체계를 마련하고 질병 예방을 위한 보호소의 환경 개선책을 제시하고자 광주동물보호소 내 유기견의 호흡기 질환에 대한 원인체를 세균배양과 분자생물학적 진단 방법을 통해서 조사하였다.
제안 방법
PCR 조건은 pre-denaturation 95°C 5분 과정을 1 cycle 수행한 후, PCR 단계는 denaturation 94°C, 30초, annealing은 Table 1과 같은 온도에서 30초 그리고 extension 72°C, 45초 과정을 35 cycle 반복하였으며, 최종 extention은 72°C, 7분 과정을 1 cycle 반복하여 실험하였다.
RNA 바이러스로부터 first-strand cDNA 합성과 PCR을 수행을 위한 one-step RT-PCR에 MaximeTM RT-PCR premix kit (iNtRON biotechnology, Korea)를 사용하였으며, RT-PCR 조성은 primer (10pmole/μL) 각 1 μL, template RNA 2 μL을 넣어 증류수로 총 20 μL가 되게 조정하였다.
RNA 바이러스의 nested PCR과 DNA 바이러스 및 M. cynos 검출을 위한 PCR 조성은 MaximeTM PCR premix kit (i-StarTaq) (iNtRON biotechnology, Korea)을 사용하여 primer (10 pmole/μL) 각 1 μL, template DNA 2 μL을 넣어 증류수로 총 20 μL가 되게 조정하여 실험하였다.
Reverse transcription step은 45°C, 30분 반응한 후에 RTase inactivation step을 95°C, 5분 과정을 1 cycle 수행하였으며, PCR 단계는 denaturation 94°C, 30초, annealing은 Table 1과 같은 온도에서 30초 그리고 extension은 72°C, 45초 과정을 40 cycle 반복하였다.
, Italy)를 이용하여 채취하였다. 그리고 유기견이 보호소로 입소한 날부터 검체를 채취한 날까지 보호소 내에서 거주한 기간을 계산하여 그 기간에 호흡기 병원체 검출률을 조사하였다. 보호소 건물 내ㆍ외 바닥과 케이지의 환경시설에 상재하는 호흡기 병원체 조사를 위해서 실내ㆍ외 3개 구획에 대해 21개 장소를 선정하여 멸균 면봉 5개를 이용하여 바닥과 케이지를 문질러서 50 mL conical tube에 채취하였다.
미생물 동정은 Vitek II system (bioMérieux, France)과 MALDI-TOF MS 기술을 이용한 Bruker MicroflexTM LT (Bruker Daltonics, Germany)을 이용하여 최종 동정하였다.
비즙과 환경 시료에서 B. bronchiseptica을 분리하기 위해서 검체를 채취한 수송배지와 면봉을 5% 면양 혈액한천배지(Synergy Innovation Co., Korea)에 도말하여 5% CO2 배양기(Sanyo Electric Biomedical Co.,Japan)에서 18∼24시간 배양한 다음, 단독집락을 순수배양하기 위해서 tryptic soy agar (Oxoid, UK) 또는 5% 면양 혈액한천배지에 계대하였다.
원심관은 실온에서 10분간 2,000×g로 원심분리한 후 상층액 150 μL을 취하여 Viral DNA/RNA extraction kit (iNtRON Biotechnology Inc., Korea)을 사용하여 제조사의 지시에 따라 유전자를 추출하였다.
유전자 증폭은 ProFlex PCR system (Applied biosystems, USA)를 사용하였고, 1.2% agarose gel (Young Sciences, Inc., Korea)에 SYBR (Invitrogen, USA)를 10,000배 희석하여 첨가하여 실온에서 응고시킨 후 각 well PCR 산물과 100 bp DNA ladder (Invitrogen, USA)을 5 μL씩 각각 분주하여 Mupid-ex (Takara, Japan)에서 20분 동안 전기영동하였다.
개 전염성 호흡기 질환은 복잡하고 다양한 요인에 의해서 발생하며, 모든 질병마다 관련된 병원체가 동일하지 않을 수 있다. 이번 조사는 광주동물보호소 내 유기견과 환경시설을 대상으로 호흡기 병원체를 조사한 것으로 진료 수의사가 보호소에 입소한 유기견을 진료할 때 호흡기 증상의 유무와 상관없이 비즙을 채취하였다. 보호소 건물 내 바닥, 야외 시설의 바닥과 케이지 등에서 환경시료를 6회에 걸쳐 반복 채취함으로써 다양한 시점에 대한 호흡기 병원체의 분포를 조사하였고, 유기견이 보호소 입소 후 검체를 채취한 시점까지의 보호기간에 따른 병원체 감염 정도의 정보를 얻을 수 있었다.
CIRD는 개 전염성 기관기관지염 또는 kennel cough로 불리며, 주로 보호소와 같은 집단으로 거주하는 환경에서 전염성 높은 복합 호흡기 질환이다. 이번 조사는 광주동물보호소 내 유기견의 호흡기 병원체 조사를 위해서 2019년 2월부터 10월까지 유기견 300마리의 비즙과 보호소 바닥, 케이지 등 환경시료 145건을 채취하여 세균배양 및 11개 병원체 즉, M. cynos, CDV, CIV, CPIV, CRCoV, CCoV, CnPnV, CHeV, CAdV-2, CHV-1, CBoV에 대한 유전자 검사를 하였다. 유기견 300마리의 비즙시료 300건 중에서 호흡기 병원체 6종이 148건(49.
PCR 조건은 pre-denaturation 95°C 5분 과정을 1 cycle 수행한 후, PCR 단계는 denaturation 94°C, 30초, annealing은 Table 1과 같은 온도에서 30초 그리고 extension 72°C, 45초 과정을 35 cycle 반복하였으며, 최종 extention은 72°C, 7분 과정을 1 cycle 반복하여 실험하였다. 이번 조사에 사용한 모든 primer는 Bioneer (Korea)에 의뢰하여 제작하였다.
대상 데이터
2019년 2월부터 10월까지 광주동물보호소에서 채취한 비즙 검체는 2월 10건, 3월 23건 4월 18건, 5월 30건, 6월 37건, 7월 57건, 8월 22건, 9월 57건 그리고 10월 46건으로 모두 300건을 Table 2와 같이 채취하였다. B.
검체는 냉장 상태로 실험실로 운반하여 12시간 이내에 세균 분리ㆍ동정과 바이러스 유전자 검사에 사용하였다. 이번 유전자 검사항목은 모두 11개 병원체로 세균은 M.
광주동물보호소 내 유기견의 호흡기 병원체 조사를 위해서 2019년 2월부터 10월까지 보호소 진료 수의사가 진료 중에 300마리의 비즙을 수송배지(COPAN diagnostic Inc., Italy)를 이용하여 채취하였다. 그리고 유기견이 보호소로 입소한 날부터 검체를 채취한 날까지 보호소 내에서 거주한 기간을 계산하여 그 기간에 호흡기 병원체 검출률을 조사하였다.
광주동물보호소에서 환경시료는 2019년 4월부터 10월까지 총 6회에 걸쳐 145건을 채취하였고, 4월 19건, 6월 22건, 7월, 8월, 9월 및 10월에는 각각 26건씩을 Table 8과 같이 채취하였다. 환경시료에는 M.
그리고 유기견이 보호소로 입소한 날부터 검체를 채취한 날까지 보호소 내에서 거주한 기간을 계산하여 그 기간에 호흡기 병원체 검출률을 조사하였다. 보호소 건물 내ㆍ외 바닥과 케이지의 환경시설에 상재하는 호흡기 병원체 조사를 위해서 실내ㆍ외 3개 구획에 대해 21개 장소를 선정하여 멸균 면봉 5개를 이용하여 바닥과 케이지를 문질러서 50 mL conical tube에 채취하였다. 환경시료는 4월부터 10월까지 총 6회에 걸쳐 145건을 채취하였다.
성별에 따른 수컷은 110건, 암컷 138건, 중성화된 수컷 52건을 채취하였다(Table 5). CHV-1의 검출률은 수컷 40.
, Korea)에 SYBR (Invitrogen, USA)를 10,000배 희석하여 첨가하여 실온에서 응고시킨 후 각 well PCR 산물과 100 bp DNA ladder (Invitrogen, USA)을 5 μL씩 각각 분주하여 Mupid-ex (Takara, Japan)에서 20분 동안 전기영동하였다. 화상분석시스템은 ImageQuant LAS 4000 (GE Healthcare Bio-Sciences AB, Japan)을 이용하여 312 nm에서 촬영하였다.
보호소 건물 내ㆍ외 바닥과 케이지의 환경시설에 상재하는 호흡기 병원체 조사를 위해서 실내ㆍ외 3개 구획에 대해 21개 장소를 선정하여 멸균 면봉 5개를 이용하여 바닥과 케이지를 문질러서 50 mL conical tube에 채취하였다. 환경시료는 4월부터 10월까지 총 6회에 걸쳐 145건을 채취하였다.
성능/효과
2019년 2월부터 10월까지 광주동물보호소에서 채취한 비즙 검체는 2월 10건, 3월 23건 4월 18건, 5월 30건, 6월 37건, 7월 57건, 8월 22건, 9월 57건 그리고 10월 46건으로 모두 300건을 Table 2와 같이 채취하였다. B. bronchiseptica는 8월부터 10월에 채취한 시료에서 모두 7건(2.3%)이 검출되었으며(P=0.117), M. cynos는 모두 66건(22.0%)이 검출되었고, 이중 3월 73.9%, 4월 50.0% 그리고 6월 45.9% 순으로 검출되었다(P<0.001). CBoV는 4월과 6월에 각각 11.
성별에 따른 수컷은 110건, 암컷 138건, 중성화된 수컷 52건을 채취하였다(Table 5). CHV-1의 검출률은 수컷 40.0%, 암컷 25.4%, 중성화된 수컷 30.8%로 수컷에서 병원체 검출률이 더 높았으며(P=0.048), 성별에 따른 그 외 병원체 검출률의 차이는 통계학적으로 유의성이 없었다.
3%)에서 검출되었다. CHV-1이 95건(31.7%)으로 가장 많이 검출되었고, 다음으로 M. cynos 66건(22.0%), B. bronchiseptica 7건(2.3%), CPIV 6건(2.0%), CBoV 5건(1.7%), CCoV 2건(0.7%)순으로 검출되었다. 호흡기 병원체가 단독으로 검출된 시료는 116건(38.
3%)으로 조사되었지만, 통계학적으로 유의성은 없었다. CPIV 검출 6건 중 단독감염과 중복감염은 각각 3건이었고, 성별에 따른 감염 건수도 각각 3건씩으로 확인되었다. 보호기간에 따른 CPIV 검출률은 7일 이내에 7.
M. cynos는 7월과 9월에 각각 3.8%와 11.5%로 모두 4건(2.8%)이 검출되었으며(P=0.107), 건물 내ㆍ외 및 케이지 환경시료에서 확인되었다(Table 9). CCoV는 4월에만 3건(15.
M. cynos는 보호기간이 7<∼≤14일 35.7%, 14<∼≤21일 33.9%, 21<∼≤30일 31.3%에서 가장 많이 검출되었으며, 7일 이하와 90일 초과에서는 각각 5.3%와 3.1%로 검출률이 낮게 나타났다(P=0.000).
0%)의 중복으로 감염되었다. 검체 300건 중에서 M. cynos는 66건(22.0%)이 검출되었고, 2종과 3종 복합감염은 27건(9.0%)으로 CPIV와 2건(0.7%), CBoV와 1건(0.3%),CHV-1과 23건(7.7%)과 각각 중복으로 감염되었으며, 3종 감염은 CCoV와 CHV-1 1건(0.3%)이었다. CHV-1은 94건(31.
검체를 채취한 모든 연령대에서 M. cynos와 CHV-1이 검출되었고, CBoV는 3년 이상의 유기견에서 5건이 검출되었지만, 검체를 채취한 나이에 따른 호흡기 병원체의 검출률도 통계학적으로 유의성은 없었다(Table 6).
7%이었다. 검체채취 월에 따른 검출률은 8월 100%, 3월 65.2%, 9월 56.1%로 매우 높게 나타났으며, 성별에 따른 감염 건수는 수컷 40.0%, 암컷 25.4% 및 중성화된 수컷 30.8%로 나타나 수컷이 암컷보다 검출률이 높았다(P=0.048). 보호기간에 따른 CHV-1 검출률은 7일 이내에 42.
결론적으로 이번 조사를 통해서 광주동물보호소에 입소하는 유기견의 질병분포와 입소 후 병원체에 감염되는 시기를 파악할 수 있었으며, 보호시설의 바닥과 케이지 등 환경 내에서 병원체가 확인됨으로써 철저한 소독과 위생관리가 매우 중요함을 인식할 수 있었다. 이 결과를 동물보호소 관리자와 수의사에게 제공하여 질병 예방과 확산방지를 위한 개체 및 군집관리와 위생적인 보호시설의 운영관리 정책수립에 매우 중요한 자료로 활용되기를 기대한다.
7%)이었다. 단독으로 검출된 시료 116건 중에서 CHV-1이 66건(22.0%)으로 가장 많이 검출되었으며, 다음으로 M. cynos 39건(13.0%), B. bronchiseptica와 CBoV 각각 4건(1.3%), 그리고 CPIV 3건(1.0%)순으로 검출되었다. CCoV는 단독감염 건수는 없었다.
CPIV 검출 6건 중 단독감염과 중복감염은 각각 3건이었고, 성별에 따른 감염 건수도 각각 3건씩으로 확인되었다. 보호기간에 따른 CPIV 검출률은 7일 이내에 7.9%, 14일 이내 2.9% 그리고 21일 이내 1.8%로 확인되었고, 그 이상의 기간에서는 검출되지 않았으며, 환경시료에서는 검출되지 않았다. 일본에서 급성 호흡기 질환에 걸린 개에서 CPIV는 7.
이번 조사는 광주동물보호소 내 유기견과 환경시설을 대상으로 호흡기 병원체를 조사한 것으로 진료 수의사가 보호소에 입소한 유기견을 진료할 때 호흡기 증상의 유무와 상관없이 비즙을 채취하였다. 보호소 건물 내 바닥, 야외 시설의 바닥과 케이지 등에서 환경시료를 6회에 걸쳐 반복 채취함으로써 다양한 시점에 대한 호흡기 병원체의 분포를 조사하였고, 유기견이 보호소 입소 후 검체를 채취한 시점까지의 보호기간에 따른 병원체 감염 정도의 정보를 얻을 수 있었다.
7%)이었다. 보호소에 입소한 기간에 따른 M. cynos의 검출률은 7일에서 30일 사이에 높았으며, CHV-1은 7일 이내에 그리고 21일에서 60일 사이에 높았고, 통계학적으로 유의성이 있었다. 환경시료 145건 중에서 M.
시료를 채취한 월별 질병의 검출률, 병원체별 중복감염, 성별과 나이에 따른 검출률, 환경시료 채취 월별 검출률 및 보호기간과 호흡기질병 병원체 분석결과에 따라 카이제곱(χ2) 또는 Fisher의 정확 검정으로 통계학적 유의성을 검사하였으며, P값이 0.05 미만인 경우 통계학적으로 유의한 것으로 판단하였다.
cynos, CDV, CIV, CPIV, CRCoV, CCoV, CnPnV, CHeV, CAdV-2, CHV-1, CBoV에 대한 유전자 검사를 하였다. 유기견 300마리의 비즙시료 300건 중에서 호흡기 병원체 6종이 148건(49.3%)에서 검출되었다. CHV-1이 95건(31.
유기견 비즙 시료 총 300건 중에서 호흡기 병원체 6종이 148건(49.3%)에서 검출되었으며, CHV-1이 95건(31.7%)으로 가장 많이 검출되었고, 다음으로 M.cynos 66건(22.0%), B. bronchiseptica 7건(2.3%), CPIV6건(2.0%), CBoV 5건(1.7%), CCoV 2건(0.7%) 순으로 검출되었다(Table 3). 호흡기 병원체가 단독으로 검출된 시료는 116건(38.
이번 검사에서 호흡기 병원체가 검출되지 않은 시료는 모두 152건(50.7%)이었으며, 6개 병원체 즉, CD, CIV, CRCoV, CnPnV, CHeV 및 CAdV-2는 검출되지않았다.
이번 연구에서 B. bronchiseptica는 세균배양을 통해서 검출률을 조사하였으며, 8월∼10월에 채취한 7건(2.3%)의 유기견 비즙에서만 검출되었다.
검체는 냉장 상태로 실험실로 운반하여 12시간 이내에 세균 분리ㆍ동정과 바이러스 유전자 검사에 사용하였다. 이번 유전자 검사항목은 모두 11개 병원체로 세균은 M. cynos이며, RNA 바이러스는 CIV, CPIV, CDV, CRCoV, alpha-coronavirus (CCoV), CnPnV 및 canine hepacivirus (CHeV)이며, DNA 바이러스는 CAdV-2, CHV-1, canine bocavirus (CBoV)이다.
이번 조사 결과도 이들 보고와 유사한 경향을 보였는데, 입소 기간에 따른 M. cynos의 검출률은 7<∼≤14일에 35.7%, 14<∼≤21일에 33.9%, 21<∼≤30일에 31.3% 그리고 30일 이상부터는 뚜렷하게 감소하였다.
Lau 등(2012)은 CBoV가 호흡기 질환보다는 전신감염을 일으킨다고 제안하였다. 이번 조사에서 CBoV는 4월과 6월에 채취한 유기견의 호흡기 시료에서 5건(1.7%)이 모두 3세 이상의 개에서 검출되었으며, 이 중 4건은 단독감염이었고, 1건은 M. cynos와 혼합감염이었고, 수컷 1건, 암컷 4건에서 검출되었다. 보호소 입소 후 7<∼≤14일에 4건(5.
따라서 다른 바이러스와 세균 감염으로 인한 스트레스로 인해 CIRD 질병 감염중에 CHV-1이 재활성화되어 심각한 임상 증상이 있는 개에서 더 자주 발견될 수 있다. 이번 조사에서 CHV-1은 95건(31.7%)이 검출되었고 이중 단독감염 22.0%, 중복감염 9.7%이었다. 검체채취 월에 따른 검출률은 8월 100%, 3월 65.
9%로 보고하였다(Na 등, 2013). 이번 조사에서 CPIV의 유기견에서 검출률은 2.0%이었고, 6월과 7월에 각각 1건(2.7%)과 3건(5.3%), 10월에 2건(4.3%)으로 조사되었지만, 통계학적으로 유의성은 없었다. CPIV 검출 6건 중 단독감염과 중복감염은 각각 3건이었고, 성별에 따른 감염 건수도 각각 3건씩으로 확인되었다.
1%)이 다른 병원체와 혼합감염으로 확인되었다. 이번 조사에서 M. cynos 양성건수 중 CHV-1와 중복감염은 24건으로 36.4%로 나타났다. CIRD는 다양한 병원체에 의한 복합적인 질병으로 이들 병원체가 동시에 존재할 경우 질병의 심각성이 더욱 증가하게 된다.
1%) 순이며, 2015년 82,100마리에서 2017년 102,593마리로 증가하였다고 보도하였다(농림축산식품부, 2018). 이번 조사에서 광주동물보호소에 입소하는 유기견은 2015년 1,300두에서 2018년 1,780두로 증가하였고, 2017년 입양실적은 741마리(41.6%)로 확인되었다.
대부분의 CIRD를 검사하는 연구에서 상부호흡기도에서 정상 세균총으로 있는 mycoplasma를 가능성 있는 원인체로서 포함하고 있지 않다(Chalker 등, 2004). 이번 조사에서 유기견의 M. cynos 검출률은 22.0%로CHV-1 다음으로 높았으며, 3월, 4월 그리고 6월에 채취한 시료에서 각각 73.9%, 50.0% 그리고 45.9%로 계절적 영향이 있었으며, 이들 양성시료 중 59.1%에서 단독으로 검출되었다. 그 외 성별이나 나이에 따른 검출률의 차이는 통계학적으로 유의성은 없었다.
8%로 보고하였다(Mochizuki 등, 2008; An 등, 2010; Schulz 등, 2014). 이번 조사에서는 CRCoV는 유기견의 비즙과 환경시료에는 검출되지 않았다.
이번 조사와 이전 연구결과에 따르면 보호소에 입소한 유기견에 CPIV의 감염은 2∼3주 내에 가장 많이 발생할 것으로 예측된다.
cynos의 검출률은 7일에서 30일 사이에 높았으며, CHV-1은 7일 이내에 그리고 21일에서 60일 사이에 높았고, 통계학적으로 유의성이 있었다. 환경시료 145건 중에서 M. cynos, CCoV, CBoV 및 CHV-1가 검출되었다. 이번 조사는 광주동물보호소에 대한 호흡기 병원체 조사를 통해서 보호소의 운영방법과 환경관리 그리고 수의사의 치료방향 등에 대한 지표를 제시하였고, 보호소 내 유기견의 개전염성 호흡기 질환 상태를 체계적으로 관리하고 검사할 수 있는 정책 수립 자료로 활용할 수 있을 것이다.
광주동물보호소에서 환경시료는 2019년 4월부터 10월까지 총 6회에 걸쳐 145건을 채취하였고, 4월 19건, 6월 22건, 7월, 8월, 9월 및 10월에는 각각 26건씩을 Table 8과 같이 채취하였다. 환경시료에는 M. cynos, CCoV, CBoV 및 CHV-1가 검출되었으며, 양성건수는 45건(31.0%)이고 이중 단독검출 44건(30.3%), 중복검출 1건(0.7%)이었으며, 유기견 비즙 시료에서 검출된 B. bronchiseptica와 CPIV는 환경시료에서 검출되지 않았다. 중복검출된 시료는 6월 실내 보호소 바닥에서 채취한 1건에서 CBoV와 CHV-1이 동시에 검출되었다.
후속연구
결론적으로 이번 조사를 통해서 광주동물보호소에 입소하는 유기견의 질병분포와 입소 후 병원체에 감염되는 시기를 파악할 수 있었으며, 보호시설의 바닥과 케이지 등 환경 내에서 병원체가 확인됨으로써 철저한 소독과 위생관리가 매우 중요함을 인식할 수 있었다. 이 결과를 동물보호소 관리자와 수의사에게 제공하여 질병 예방과 확산방지를 위한 개체 및 군집관리와 위생적인 보호시설의 운영관리 정책수립에 매우 중요한 자료로 활용되기를 기대한다. 한편, 보호소에서 시민에게 유기견으로 분양할 때 동물의 질병상태를 반드시 제공함으로써 입양 후 질병치료에 소요되는 경제적 손실을 최소화할 수 있도록 하며, 건강한 동물이 시민에게 분양될 수 있는 효율적인 질병관리체계가 보호소에도 도입되어야 할 것으로 생각한다.
cynos, CCoV, CBoV 및 CHV-1가 검출되었다. 이번 조사는 광주동물보호소에 대한 호흡기 병원체 조사를 통해서 보호소의 운영방법과 환경관리 그리고 수의사의 치료방향 등에 대한 지표를 제시하였고, 보호소 내 유기견의 개전염성 호흡기 질환 상태를 체계적으로 관리하고 검사할 수 있는 정책 수립 자료로 활용할 수 있을 것이다.
이 결과를 동물보호소 관리자와 수의사에게 제공하여 질병 예방과 확산방지를 위한 개체 및 군집관리와 위생적인 보호시설의 운영관리 정책수립에 매우 중요한 자료로 활용되기를 기대한다. 한편, 보호소에서 시민에게 유기견으로 분양할 때 동물의 질병상태를 반드시 제공함으로써 입양 후 질병치료에 소요되는 경제적 손실을 최소화할 수 있도록 하며, 건강한 동물이 시민에게 분양될 수 있는 효율적인 질병관리체계가 보호소에도 도입되어야 할 것으로 생각한다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
개에서 호흡기질환의 주요 발생원인은 무엇인가?
전 세계적으로 개에서 호흡기질환의 주요 발생원인인 CIRD와 전통적으로 관련된 병원체는 canine parainfluenza virus (CPIV), canine adenovirus type 2 (CAdV-2), canine distemper virus (CDV), canine herpesvirus (CHV) 및 Bordetella (B.) bronchiseptica를 포함하고 있으며, 이들 병원체는 순차적으로 또는 상승작용하여 질병을 일으킨다(Mitchell 등, 2017; Sowman 등, 2018).
개 전염성 호흡기 질환은 어떤 환경에서 가장 빠르게 퍼질 가능성이 있는가?
개 전염성 호흡기 질환(Canine infectious respiratory disease, CIRD)은 개 전염성 기관기관지염(Infectious canine tracheobronchitis, ICT) 또는 종종 kennel cough로 불리는 개의 기관 또는 기관지 기도의 급성 또는 만성 염증을 특징으로 하는 전염성 높은 여러 가지 병원체에 의한 복합 호흡기 질환이다. 이 질병은 산발적 또는 유행성으로 가정이나 동물병원 내 반려동물에서 발생하기도 하지만 특히, 보호소와 같이 가두어진 집단 환경에 있는 어린 강아지에서 빠르게 퍼질 수 있으며, 몇 주 동안 콧물, 기침, 호흡곤란 및 무기력 등의 증상이 지속될 수 있다(Joffe 등, 2016; Sowman 등, 2018).
개 전염성 호흡기 질환이란 무엇인가?
개 전염성 호흡기 질환(Canine infectious respiratory disease, CIRD)은 개 전염성 기관기관지염(Infectious canine tracheobronchitis, ICT) 또는 종종 kennel cough로 불리는 개의 기관 또는 기관지 기도의 급성 또는 만성 염증을 특징으로 하는 전염성 높은 여러 가지 병원체에 의한 복합 호흡기 질환이다. 이 질병은 산발적 또는 유행성으로 가정이나 동물병원 내 반려동물에서 발생하기도 하지만 특히, 보호소와 같이 가두어진 집단 환경에 있는 어린 강아지에서 빠르게 퍼질 수 있으며, 몇 주 동안 콧물, 기침, 호흡곤란 및 무기력 등의 증상이 지속될 수 있다(Joffe 등, 2016; Sowman 등, 2018).
참고문헌 (36)
농림축산식품부. 2018. '17년 유실.유기동물 10만 마리 구조.보호. http://www.mafra.go.kr/mafra.
문화체육관광부.농촌진흥청. 2018. 2018년 반려동물에 대한 인식 및 양육 현황 조사 보고서. http://www.korea.kr/archive/expDocView.do?docId38280.
An DJ, Jeong W, Yoon SH, Jeoung HY, Kim HJ, Park BK. 2010. Genetic analysis of canine group 2 coronavirus in Korean dogs. Vet Microbiol 141(1-2): 46-52.
Bottinelli M, Rampacci E, Stefanetti V, Marenzoni ML, Malmlov AM, Coletti M, Passamonti F. 2016. Serological and biomolecular survey on canine herpesvirus-1 infection in a dog breeding kennel. J Vet Med Sci 78(5): 797-802.
Burr PD, Campbell ME, Nicolson L, Onions DE. 1996. Detection of canine herpesvirus 1 in a wide range of tissues using the polymerase chain reaction. Vet Microbiol 53(3-4): 227-237.
Decaro N, Mari V, Larocca V, Losurdo M, Lanave G, Lucente MS, Corrente M, Catella C, Bo S, Elia G, Torre G, Grandolfo E, Martella V, Buonavoglia C. 2016. Molecular surveillance of traditional and emerging pathogens associated with canine infectious respiratory disease. Vet Microbiol 192: 21-25.
Joffe DJ, Lelewski R, Weese JS, Mcgill-Worsley J, Shankel C, Mendonca S, Sager T, Smith M, Poljak Z. 2016. Factors associated with development of Canine Infectious Respiratory Disease Complex (CIRDC) in dogs in 5 Canadian small animal clinics. Can Vet J 57(1): 46-51.
Lau SKP, Woo PCY, Yeung HC, Teng JLL, Wu Y, Bai R, Fan RYY, Chan KH, Yuen KY. 2012. Identification and characterization of bocaviruses in cats and dogs reveals a novel feline bocavirus and a novel genetic group of canine bocavirus. J Gen Virol. 93(Pt 7): 1573-1582.
Lavan R, Knesl O. 2015. Prevalence of canine infectious respiratory pathogens in asymptomatic dogs presented at US animal shelters. Small Anim Pract 56(9): 572-576.
Li L, Pesavento PA, Leutenegger CM, Estrada M, Coffey LL, Naccache SN, Samayoa E, Chiu C, Qiu J, Wang C, Deng X, Delwart E. 2013. A novel bocavirus in canine liver. Virol J 10:54.
Li L, Pesavento PA, Shan T, Leutenegger CM, Wang C, Delwart E. 2011. Viruses in diarrhoeic dogs include novel kobuviruses and sapoviruses. J Gen Virol 92(pt 11): 2534-2541.
Maboni G, Seguel M, Lorton A, Berghaus R, Sanchez S. 2019. Canine infectious respiratory disease: New insights into the etiology and epidemiology of associated pathogens. PLoS One 14(4): e0215817.
Mitchell JA, Cardwell JM, Leach H, Walker CA, Le Poder S, Decaro N, Rusvai M, Egberink H, Rottier P, Fernandez M, Fragkiadaki E, Shields S, Brownlie J. 2017. European surveillance of emerging pathogens associated with canine infectious respiratory disease. Vet Microbiol 212: 31-38.
Mochizuki M, Yachi A, Ohshima T, Ohuchi A, Ishida T. 2008. Etiologic study of upper respiratory infections of household dogs. J Vet Med Sci 70(6): 563-569.
Myung BY, Yi YK, Paik IY, Chung GM, Lim S, Suh GH, Kang SS, Shin S. 2009. The disease status of stray dogs admitted to an animal shelter in Gwangju, Korea. Korean J Vet Res 49(4): 297-307.
Na HM, Bae SY, Lee YE, Park JS, Park SD, Kim ES, Kim YH. 2013. Prediction survey on the viral disease of companion animals in Gwangju area, Korea. Korean J Vet Serv 36(3): 187-192.
Paul MA, Appel M, Barrett R, Carmichael LE, Childers H, Cotter S, Davidson A, Ford R, Keil D, Lappin M, Schultz RD, Thacker E, Trumpeter JL, Welborn L; American Animal Hospital Association Canine Vaccine Task Force. 2003. Report of the American Animal Hospital Association (AAHA) Canine Vaccine Task Force: executive summary and 2003 canine vaccine guidelines and recommendations. J Am Anim Hosp Assoc 39(2): 119-131.
Piewbang C, Rungsipipat A, Poovorawan Y, Techangamsuwan S. 2016. Development and application of multiplex PCR assays for detection of virus-induced respiratory disease complex in dogs. J Vet Med Sci 78(12):1847-1854.
Pratelli A, Tempesta M, Greco G, Martella V, Buonavoglia C. 1999. Development of a nested PCR assay for the detection of canine coronavirus. J Virol Methods 80(1): 11-15.
Priestnall SL, Mitchell JA, Walker CA, Erles K, Brownlie J. 2014. New and emerging pathogens in canine infectious respiratory disease. Vet Pathol 51(2): 492-504.
Schulz BS, Kurz S, Weber K, Balzer HJ, Hartmann K. 2014. Detection of respiratory viruses and Bordetella bronchiseptica in dogs with acute respiratory tract infections. Vet J 201(3): 365-369.
Song DS, An DJ, Moon HJ, Yeom MJ, Jeong HY, Jeong WS, Park SJ, Kim HK, Han SY, Oh JS, Park BK, Kim JK, Poo H, Webster RG, Jung K, Kang BK. 2011. Interspecies transmission of the canine influenza H3N2 virus to domestic cats in South Korea, 2010. J Gen Virol 92: 2350-2355.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.