[논문]2013-2016년 양식 조피볼락(Sebastes schlegeli)의 해역별 선충(Clavinema mariae) 및 병원체 감염 현황

한현자; 송준영; 조미영; 최혜승; 정승희; 서한길

doi:10.5657/kfas.2020.0432

[국내논문] 2013-2016년 양식 조피볼락(Sebastes schlegeli)의 해역별 선충(Clavinema mariae) 및 병원체 감염 현황
Monitoring of Diseases Including Nematode Clavinema mariae Infections in the Cultured Korean Rockfish Sebastes schlegeli During 2013-2016 원문보기

한국수산과학회지 = Korean journal of fisheries and aquatic sciences, v.53 no.3, 2020년, pp.432 - 442

한현자 (국립수산과학원 전략양식부 병리연구과) , 송준영 (국립수산과학원 내수면양식연구센터) , 조미영 (국립수산과학원 전략양식부 병리연구과) , 최혜승 (국립수산과학원 전략양식부 병리연구과) , 정승희 (국립수산과학원 전략양식부 병리연구과) , 서한길 (국립수산과학원 제주수산연구소)

Abstract ▼ AI-Helper

Diagnostic monitoring in Korean rockfish cages was performed to survey the prevalence of pathogens in cultured Korean rockfish Sebastes schlegeli from May 2013 to July 2016. A total of 1,945 fish samples collected from the western (Cheonsu Bay and Heuksando), southern (Tongyeong and Namhae), and eastern coasts (Pohang) of Korea were tested for parasites, viruses, and bacteria. In this study, 1,264 and 334 fishes were infected with Microcotyle sebastis and Clavinema mariae, respectively. The prevalence rates of C. clavinema in fishes from Cheonsu Bay, Heuksando, and Tongyeong were 35.3%, 3.9% and 1.9%, respectively. No C. clavinema infection was detected in cultured rockfish from Namhae and Pohang. Furthermore, bacteria including Photobacterium damselae (8.9%), Photobacterium piscicola (2.3%), Photobacterium spp. (8.9%), Aeromonas salmonicida (1.8%), Aeromonas spp. (0.9%), Vibrio scophthalmi (1.5%), Vibrio spp. (3.3%), Streptococcus iniae (1.2%), and others (8.0%) were detected in 373 of 1,364 fishes. No virus was detected in any fish investigated in this study.

Keyword

표/그림 (7)

그림 Fig. 1. Sampling site in this study.
표 Table 1. Survey of parasitic infection in this study
그림 Fig. 1. The feeds residues in the (A) stomach and (B) intestine of juvenile Atlantic bluefin tuna Thunnus thynnus fed the EFM75 or SL (% of dry matter).
표 Table 2. Primer information and PCR condition for this study
표 Table 3. Survey of bacterial infection in this study
그림 Fig. 3. Prevalence of parasitic and bacterial infections in Korean rockfsh for years 2013-2016.
표 Table 4. Distribution of single and mixed infection of pathogens in cultured Korean rockfish

AI 본문요약
AI-Helper

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문제 정의

본 연구에서는 2013년부터 2016년까지 국내에서 양식되는 조피볼락의 선충 C. mariae의 해역 별 감염 현황을 집중으로 조사하였으며, 추가적으로 다른 감염성 질병에 대한 조사도 같이 실시하여 국내의 조피볼락 질병 감염 현황에 대한 기초자료를 마련하고자 하였다.
본 연구에서는 국내 해안을 동해, 남해 및 서해로 나눈 뒤, 5개 지역에서 양식되는 조피볼락을 대상으로 선충의 감염을 포함한 병원체의 감염현황을 2013년부터 2016년까지 조사하였으며, 병원체 감염현황에 관한 기초자료를 얻고자 하였다. 조사결과 조피볼락에서 가장 많이 확인된 기생충은 M.

제안 방법

실험어의 세균 검사를 위하여 신장과 비장 조직을 무균적으로 적출한 뒤 1.5% NaCl이 포함된 brain heart infusion agar(BHIA; Gibco, Waltham, MA, USA) 평판배지에 도말 후 25°C 항온배양기에 배양하였다.
),2013년 5월부터 2016년 7월까지 국내의 조피볼락 가두리 양식장을 대상으로 총 33회 걸쳐 총1,945마리를 샘플링 하였다(Table 1). 가두리 양식장에서 샘플링한 조피볼락은 냉장상태로 실험실로 운반하여 질병검사를 실시하였다.
실험어의 기생충 검사는 아가미와 체표를 대상으로 실시하였으며, 슬라이드글라스와 광학현미경을 사용하여 검경하였다. 또한 조피볼락에 감염된 C.
실험어의 기생충 검사는 아가미와 체표를 대상으로 실시하였으며, 슬라이드글라스와 광학현미경을 사용하여 검경하였다. 또한 조피볼락에 감염된 C. mariae충의 감염 강도를 확인하기위하여 해부용 가위와 핀셋을 사용하여 지느러미, 아가미뚜껑,비공 주변 등에 감염된 모든 선충을 적출하였으며, 어류 한 마리당 C. mariae충의 감염 개체 수를 측정하였다(Fig. 2.)
5% NaCl이 포함된 brain heart infusion agar(BHIA; Gibco, Waltham, MA, USA) 평판배지에 도말 후 25°C 항온배양기에 배양하였다. 배양된 세균은 순수분리 후 high pure template preparation kit (Roche, Basel, Schweiz)를 사용하여 genomic DNA를 추출하였다. 이후 emerald taq (Takara,Shiga, Japan)을 사용하여 종 동정을 위한 16S rRNA 유전자에 대한 PCR을 수행하였으며, primer set 및 PCR 조건은 Table 2에 표기하였다.
배양된 세균은 순수분리 후 high pure template preparation kit (Roche, Basel, Schweiz)를 사용하여 genomic DNA를 추출하였다. 이후 emerald taq (Takara,Shiga, Japan)을 사용하여 종 동정을 위한 16S rRNA 유전자에 대한 PCR을 수행하였으며, primer set 및 PCR 조건은 Table 2에 표기하였다. 증폭된 PCR product는 1.
이후 emerald taq (Takara,Shiga, Japan)을 사용하여 종 동정을 위한 16S rRNA 유전자에 대한 PCR을 수행하였으며, primer set 및 PCR 조건은 Table 2에 표기하였다. 증폭된 PCR product는 1.5% agarose gel (Bioneer, Daejeon, Korea) 상에서 전기영동으로 band를 확인한 뒤, Solgent sequencing service를 통해 염기서열을 확인하였다. 염기서열의 분석은 Mega ver.
바이러스 검사를 위하여 조피볼락의 신장과 비장 조직을 적출하여 마쇄한 뒤 상법과 동일하게 DNA를 추출하였으며, RNA추출은 easy-spin total RNA extraction kit (Intron, Seongnam,Korea)를 사용하였다. 이후 SuperScriptTM II reverse transcriptase (Invitrogen, Waltham, MA, USA)를 사용하여 cDNA를 합성하였으며, PCR을 수행하였다.
바이러스 검사를 위하여 조피볼락의 신장과 비장 조직을 적출하여 마쇄한 뒤 상법과 동일하게 DNA를 추출하였으며, RNA추출은 easy-spin total RNA extraction kit (Intron, Seongnam,Korea)를 사용하였다. 이후 SuperScriptTM II reverse transcriptase (Invitrogen, Waltham, MA, USA)를 사용하여 cDNA를 합성하였으며, PCR을 수행하였다. 조피볼락에서 감염보고는 없지만, 해산 가두리어종에 주로 검출되는 바이러스인 red sea bream irido virus (RSIV), viral hemorrhagic septicaemia virus(VHSV), nervous necrosis virus (NNV), marine birnavirus(MBV), hirame rhabdovirus (HRV)의 검출 가능성을 조사하였다.
이후 SuperScriptTM II reverse transcriptase (Invitrogen, Waltham, MA, USA)를 사용하여 cDNA를 합성하였으며, PCR을 수행하였다. 조피볼락에서 감염보고는 없지만, 해산 가두리어종에 주로 검출되는 바이러스인 red sea bream irido virus (RSIV), viral hemorrhagic septicaemia virus(VHSV), nervous necrosis virus (NNV), marine birnavirus(MBV), hirame rhabdovirus (HRV)의 검출 가능성을 조사하였다. PCR primer 및 조건은 Table 2에 표기하였으며, PCR product는 동일한 방법을 사용하여 전기영동상에서 band를 확인하였다.

대상 데이터

국내의 조피볼락 주요 양식 산지 5개 지역(천수만, 흑산도, 통영, 남해, 포항)을 대상으로 질병 조사를 실시하였으며(Fig. 1.),2013년 5월부터 2016년 7월까지 국내의 조피볼락 가두리 양식장을 대상으로 총 33회 걸쳐 총1,945마리를 샘플링 하였다(Table 1). 가두리 양식장에서 샘플링한 조피볼락은 냉장상태로 실험실로 운반하여 질병검사를 실시하였다.
서해안 천수만 지역에서는 2013년 5월부터 2016년 4월까지 총 15회의 모니터링을 실시하였는데, 매회 1-6개의 양식장에서 30-119마리의 조피볼락을 대상으로 하였다. 총 검사 개체 수는 895마리였으며, 이 중 617마리에서 M.
9%의 감염률을 각각 나타내었다. 남해안 통영지역에서는 2014년 2월부터 2016년 6월까지 총 7회의 모니터링을 실시하였는데, 매회 1-3개의 양식장에서 30-150마리의 조피볼락을 대상으로 하였다. 총 검사 개체수는 573 마리였으며,이 중 430마리에서 M.
3%의 감염률을 각각 나타내었다. 흑산도 지역에서는 2014년 10월부터 2016년 6월까지 총 4회의 모니터링을 1개 양식장에서 실시하였는데, 매회 36-67마리의 조피볼락을 대상으로 하였다. 총 검사 개체수는 179마리였으며, 이 중 119 마리에서 M.
mariae 모두 확인되지 않았다. 동해안 포항 지역에서는 2015년3월부터 2016년 7월까지 1개 지역에서 총 5회의 모니터링을 실시하였는데, 매회 5-63마리의 조피볼락을 대상으로 하였다. 총검사 개체수는 228마리였으며, 이 중 98마리에서 M.

이론/모형

5% agarose gel (Bioneer, Daejeon, Korea) 상에서 전기영동으로 band를 확인한 뒤, Solgent sequencing service를 통해 염기서열을 확인하였다. 염기서열의 분석은 Mega ver. 6 (Tamura et al., 2013) 과 national center for biotechnology information (NCBI)에서 제공하는 basic local alignment search tool (BLAST)을 사용하여 수행하였다(Altschul et al., 1990).

성능/효과

0 g)이었다. 기생충감염을 조사한 결과, 조피볼락의 70.3%(1,368/1,945)가 기생충에 감염되어 있는 것으로 확인되었다(Table 1). 세균 및 바이러스 검사는 일부인 1,364마리를 대상으로 실시하였는데, 세균은 27.
3%(1,368/1,945)가 기생충에 감염되어 있는 것으로 확인되었다(Table 1). 세균 및 바이러스 검사는 일부인 1,364마리를 대상으로 실시하였는데, 세균은 27.3% (373/1,364)의 감염률을 나타내었으며(Table 3), 해산어류에 감염되는 주요 바이러스 5종은 검출되지 않았다.
서해안 천수만 지역에서는 2013년 5월부터 2016년 4월까지 총 15회의 모니터링을 실시하였는데, 매회 1-6개의 양식장에서 30-119마리의 조피볼락을 대상으로 하였다. 총 검사 개체 수는 895마리였으며, 이 중 617마리에서 M. sebastis가 확인되어 68.9%의 감염률을, 316마리에서 C. mariae가 확인되어 35.3%의 감염률을 각각 나타내었다. 흑산도 지역에서는 2014년 10월부터 2016년 6월까지 총 4회의 모니터링을 1개 양식장에서 실시하였는데, 매회 36-67마리의 조피볼락을 대상으로 하였다.
흑산도 지역에서는 2014년 10월부터 2016년 6월까지 총 4회의 모니터링을 1개 양식장에서 실시하였는데, 매회 36-67마리의 조피볼락을 대상으로 하였다. 총 검사 개체수는 179마리였으며, 이 중 119 마리에서 M.sebastis가 확인되어 66.5%의 감염률을, 7마리에서 C. mariae가 확인되어 3.9%의 감염률을 각각 나타내었다. 남해안 통영지역에서는 2014년 2월부터 2016년 6월까지 총 7회의 모니터링을 실시하였는데, 매회 1-3개의 양식장에서 30-150마리의 조피볼락을 대상으로 하였다.
남해안 통영지역에서는 2014년 2월부터 2016년 6월까지 총 7회의 모니터링을 실시하였는데, 매회 1-3개의 양식장에서 30-150마리의 조피볼락을 대상으로 하였다. 총 검사 개체수는 573 마리였으며,이 중 430마리에서 M. sebastis 가 확인되어 75.0%의 감염률을, 11마리에서 C. mariae가 확인되어 1.9%의 감염률을 각각 나타내었다. 남해 지역에서는 2015년 1개 양식장에서 30, 40마리씩 총 70마리의 모니터링을 실시하였는데, M.
동해안 포항 지역에서는 2015년3월부터 2016년 7월까지 1개 지역에서 총 5회의 모니터링을 실시하였는데, 매회 5-63마리의 조피볼락을 대상으로 하였다. 총검사 개체수는 228마리였으며, 이 중 98마리에서 M. sebastis가 확인되어 43.0% 감염률을 나타내었으며, C. mariae는 확인되지 않았다.
6%에서 확인되었다. 남해 지역에서는 조피볼락 40마리 중 1마리에서 P. damselae가 확인되었으며(2.5%), 동해안 포항 지역에서는 조피볼락 125마리 중 16마리에서 세균이 확인되어 12.8%의 감염률을 나타내었다. P.
조피볼락에 가장 많이 감염되는 병원체는 M. sebastis로써1,945마리 중 1,264마리에서 확인되어 65.0%의 감염률을 나타내었으며, C. mariae는 334마리에서 확인되어 17.2%를 나타내었다. 세균에서는P.
spp.가 1,364마리 중 122마리에서 확인되어 가장 높은 감염률을 나타내었으며(8.9%), 다음으로 P. damselae가 121마리에서 확인되어 8.9%의 감염률을 나타내었다. 그 이외에는 V.
월별 병원체의 감염률을 조사한 결과, 기생충은 5월에 91.1%로 최고 감염률을, 10월에 57.6%로 최저 감염률을 나타내었으며, 연중 고르게 높은 감염률을 나타내었다(평균 70.3%). 세균은 8월에 93.
3%). 세균은 8월에 93.9%로 최고 감염률을, 2월에 9.1%로 최저 감염률을 나타내었으며, 기생충에 비해 낮은 감염률을 나타내었으나(평균 27.3%), 수온이 높은 여름철(7-10월)에는 57.5%의 높은 감염률을 나타내었다(Fig. 3.).
조사시기별 병원체의 단독 및 혼합감염 양상을 분석한 결과(Table 4), 기생충 단독감염이 913마리로 가장 많았으며, 그 다음으로 기생충과 세균의 혼합감염(292마리), 기생충과 기생충의 혼합감염(163마리), 세균 단독감염(47마리), 세균 혼합감염(34마리)의 순으로 나타났다. 결과를 종합해보면 병원체 감염 중 세균 또는 기생충의 단독감염 비율이 66.
조사시기별 병원체의 단독 및 혼합감염 양상을 분석한 결과(Table 4), 기생충 단독감염이 913마리로 가장 많았으며, 그 다음으로 기생충과 세균의 혼합감염(292마리), 기생충과 기생충의 혼합감염(163마리), 세균 단독감염(47마리), 세균 혼합감염(34마리)의 순으로 나타났다. 결과를 종합해보면 병원체 감염 중 세균 또는 기생충의 단독감염 비율이 66.3%, 2종 이상 병원체의 혼합감염이 33.7%로서 단독감염 비율이 높게 나타났다. 월별로 비교해보면 수온이 상대적으로 높았던 8월과 9월에 단독감염보다 혼합감염 빈도가 높은 것으로 나타났으며, 이외의 시기에는 단독감염의 빈도가 높은 것으로 나타났다.
7%로서 단독감염 비율이 높게 나타났다. 월별로 비교해보면 수온이 상대적으로 높았던 8월과 9월에 단독감염보다 혼합감염 빈도가 높은 것으로 나타났으며, 이외의 시기에는 단독감염의 빈도가 높은 것으로 나타났다.
본 연구에서는 국내 해안을 동해, 남해 및 서해로 나눈 뒤, 5개 지역에서 양식되는 조피볼락을 대상으로 선충의 감염을 포함한 병원체의 감염현황을 2013년부터 2016년까지 조사하였으며, 병원체 감염현황에 관한 기초자료를 얻고자 하였다. 조사결과 조피볼락에서 가장 많이 확인된 기생충은 M. sebastis로서 1,264마리에서 확인되어 65.0%의 감염률을 나타냈으며,C. mariae는 334마리에서 확인되어 17.
9%)의 순으로 확인되었다. 연구 결과에는 작성하지 않았으나 2014년의 흑산도 지역에서 양식하던 조피볼락(n=13) 아가미에서 epitheliocystis 감염증의 임상증상을 확인하였으며, 세균을 분리하지는 못하였으나 국내에서도 세포 내 기생하는 세균으로 알려진 epitheliocystis의 원인체가 존재할 가능성이 시사되었다. Jung et al.
1%)에 비하여 압도적으로 높게 확인되었다. 본 연구에서도 단독감염이 66.3%으로서, 혼합감염(33.7%)에 비하여 높게 나타났으나,수 년 사이에 혼합감염의 비율이 20% 가량 높아졌음을 확인할 수 있었다.
(2010)은 2006년 2월부터 2008년 10월까지 남해안 3개 지역에서 양식 조피볼락의 병원체 감염조사를 실시하였는데, 아가미흡충은 조사시기와 상관없이 연중 감염이 확인되었으며 비교적 저수온기에 감염률이 높다고 보고하였다. 본연구결과에서도 아가미흡충의 감염이 연중 확인되었고, 특히 12월에 81.6%의 감염률을 나타내는 등 저수온기에 상대적으로 감염률이 높아 매우 유사한 결과를 나타내었다. 일반적으로 아가미흡충은 고수온기인 여름보다 겨울철의 감염률이 높은 것으로 알려져 있으며, 저수온기에 감염된 기생충이 수온의 상승에 따라 어체에 생리적 스트레스를 가하여 고수온기 2차 감염 및 폐사 발생에 영향을 끼칠 수 있다고 한다(Choi et al.
9%의 감염률을 나타내었다고 보고하였다. 본 연구결과에서는 평균 65.0%의 감염률을 나타내었으며, 가장 낮은 감염률을 나타낸 8월에도 39.4%의 감염률이 확인되었기에 이들의 조사결과와는 다르게 나타났다. Choi et al.
0%의 기생충 감염률을 나타내었다. 본 연구에서도 아가미흡충을 우점종으로 하여 높은 기생충 감염률을 연중 확인하였으나, 감염률에서 약 30% 정도의 차이를 보여 이전과는 다소 다른 감염현황을 확인하였다. 일반적으로 아가미흡충의 구제를 위하여 프라지콴텔(praziqutntel)을 유효성분으로 하는 구충제가 개발되어 있으며, 경구투여 및약욕법으로 아가미흡충의 치료가 가능하다(Jung et al.
어류에 직접적인 폐사를 일으키지는 않으나 고수온기에는 세균감염 등의 2차피해를 유발하여 폐사의 간접적 원인이 되기도 한다. 본 조사에서 선충이 가장 많이 확인된 천수만 지역에서는 2013년 8월 조사 당시 87.9%의 높은 선충 감염률을 나타내었으나 10월에는 감염이 확인되지 않았다. 이후 2014년 1월에 70%의 높은 감염률을 나타낸 이후 5월까지 50% 이상의 감염률을 나타내었으나, 7월과 9월에 각각 12.
8%의 낮은 감염률을 나타내었다. 이후 12월부터 2015년도 6월까지 지속적인 감염이 확인되었으나 9월에는 감염이 확인되지 않았으며, 이후 조사에서는 매번 감염이 확인되었다. 가을(9-10월)을 제외한 조사기간 중 조피볼락 1마리에서 분리된 선충의 감염개체수는 0-306개체였으며, 가을에는 0-1개체가 분리되어 감염의 정도와 감염률이 매우 낮음을 확인하였다.
이후 12월부터 2015년도 6월까지 지속적인 감염이 확인되었으나 9월에는 감염이 확인되지 않았으며, 이후 조사에서는 매번 감염이 확인되었다. 가을(9-10월)을 제외한 조사기간 중 조피볼락 1마리에서 분리된 선충의 감염개체수는 0-306개체였으며, 가을에는 0-1개체가 분리되어 감염의 정도와 감염률이 매우 낮음을 확인하였다. 이와 같은 패턴은 선충의 생활사로 견주어 볼 때, 여름철 고수온기에 선충이 자충을 방출한 뒤 숙주에서 빠져나가는 것으로 보여진다.
(2014)은 어류에 기생하는 일반적인 선충의 생활사로 추정해 볼 때, 8-10월이 어체에서 빠져 나가는 선충이 중간숙주 등에 감염되는 기간이라는 가능성을 제시하였다. 본 연구결과 선충은 1년 주기의 생활사를 가지며, 매년 고수온기 또는 고수온기 이후에 선충이 조피볼락으로부터 빠져나가는 것으로 추정되었다. 이로 인해 가을에는 선충의 감염이 없거나 그 감염률이 매우 낮았고, 저수온기가 되면서 재감염이 이루어지는 것으로 생각되었다.
본 연구결과 선충은 1년 주기의 생활사를 가지며, 매년 고수온기 또는 고수온기 이후에 선충이 조피볼락으로부터 빠져나가는 것으로 추정되었다. 이로 인해 가을에는 선충의 감염이 없거나 그 감염률이 매우 낮았고, 저수온기가 되면서 재감염이 이루어지는 것으로 생각되었다. 흑산도 지역에서는 2015년 4월과 6월 조사에서 각각 7.
5%(n=5)의 낮은 선충 감염률을 나타내었으며, 이외의 조사에서는 선충의 감염이 확인되지 않았다. 통영지역에서 선충 감염이 확인된 양식장의 경우 충남 천수만에서 양식중인 1년산 조피볼락 중간육성어를 구입하여 사육한 것으로 확인되었다. 선충 감염이 확인된 양식장을 지속적으로 조사한 결과, 다음 해에 선충의 재감염이 이루어지지 않는 것으로 확인되었다.
통영지역에서 선충 감염이 확인된 양식장의 경우 충남 천수만에서 양식중인 1년산 조피볼락 중간육성어를 구입하여 사육한 것으로 확인되었다. 선충 감염이 확인된 양식장을 지속적으로 조사한 결과, 다음 해에 선충의 재감염이 이루어지지 않는 것으로 확인되었다. 통영과 천수만의 선충 감염 양상이 다르게 나타나는 원인은 천수만 특유의 지리적 요인에 있다고 생각된다.
, 2012). 본 연구에서는 연쇄구균이 2013년 10월, 천수만 지역에서 30.3%가 분리되었던 것을 제외하면 대부분 분리되지 않았기에 기존의 보고들과는 다른 결과를 나타내었다. 연쇄구균의 감염은 해수 중에 균이 대량으로 증식하는 경우 어체에 존재하는 상처표면을 통해서 이루어지기도 하지만, 생사료에 존재하는 연쇄구균이 소화관을 통해서 체내로 들어가 감염이 발생하기도 한다(Minami,1979; Nagatsugawa, 1983).
이들의 보고에서 검출된 주요 세균들과 본 연구에서 검출된 주요 세균들과는 그 양상이 유사한 것으로 확인되었다. 본 연구에서 가장 많이 검출된 세균인 P. damselae는 damselfish, Chromis punctipinnis에서 최초로 보고되었으며(Love etal., 1981), 이후 brown shark, Carcharhinus plumbeus (Colwell and Grimes, 1984; Grimes et al., 1984), leatherback turtles, Dermochelys coriacea (Obendorf et al., 1987), bottlenosedolphins, Tursiops truncates (Fujioka et al., 1988), yellow tail,Seriola quinqueradiata (Sakata et al., 1989), seabream, Sparus aurata (Vera et al., 1991), turbot, Scophthalmus maximus(Fouz et al., 1991) 및 barramundi, Lates calcarifer (Renault etal., 1994)에 감염이 확인되었고, 국내에서는 동해안의 양식 olive flounder, Paralichthys olivaceus에서 최초로 감염이 확인되었다(Kwon et al., 2005). P.
damselae는 다른 Vibrio 속 세균에 비하여 높은 감염률을 나타내었으며, 특히 고수온기에 감염률이 높았다고 보고하였다. 본 연구에서도 Photobacterium 속 세균의 감염률이 Vibrio 속 세균을 포함한 다른 속의 세균들보다 상대적으로 높았으며, 대부분이 고수온기에 검출되어 세균성 질병의 감염양상은 매우 유사함을 확인하였다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	조피볼락의 특징은?	조피볼락(Sebastes schlegeli)은 한국 각 해안과 일본 북해도 이남, 중국 북부 연안 등의 북서태평양 지역에 주로 서식하는 난태생 어종이다. 국내에서는 조피볼락의 인공 종묘 생산기술이 1980년대 중반에 확립되었으며, 1990년대 이후 조피볼락에 대한 해상가두리 양식이 본격화되면서 조피볼락의 양식생산량이 급증하였다(Choi et al.
	조피볼락은 양식 과정에서 어떤 질병에 감염되는가?	2%를 차지하고 있으며, 넙치에 이어 국내에서 두 번째로 많이 양식되고 있는 품종이다(KOSIS, 2019). 조피볼락은 양식 과정에서 다양한 질병이 감염되는데, 그 중에서도 Flexibacter, Streptococcus, Vibrio 속의 세균 감염과, lymphocystis 바이러스성 질병도 보고되어 있다(Cho et al., 2008; Choi et al.
	조피볼락의 양식 생산량은 어느정도인가?	, 2010). 조피 볼락은 2018년 기준으로 22,686톤을 생산하여 양식 생산량의 약 28.2%를 차지하고 있으며, 넙치에 이어 국내에서 두 번째로 많이 양식되고 있는 품종이다(KOSIS, 2019). 조피볼락은 양식 과정에서 다양한 질병이 감염되는데, 그 중에서도 Flexibacter, Streptococcus, Vibrio 속의 세균 감염과, lymphocystis 바이러스성 질병도 보고되어 있다(Cho et al.

참고문헌 (50)

Altschul SF, Gish W, Miller W, Myers EW and Lipman DJ. 1990. Basic local alignment search tool. J Mol Biol 215, 403-410. https://doi.org/10.1016/S0022-2836(05)80360-2.

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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