[논문]국내 다소비 식품의 biotin 함량 모니터링

권지현; 천원영; 이상훈; 최용민; 김영화

doi:10.7318/kjfc/2020.35.3.278

국내 다소비 식품의 biotin 함량 모니터링
Monitoring of Biotin Content in Frequently Consumed Foods in Korea 원문보기

韓國食生活文化學會誌 = Journal of the Korean Society of Food Culture, v.35 no.3, 2020년, pp.278 - 284

권지현 (경성대학교 식품응용공학부) , 천원영 (경성대학교 식품응용공학부) , 이상훈 (농촌진흥청 국립농업과학원 농식품자원부) , 최용민 (농촌진흥청 국립농업과학원 농식품자원부) , 김영화 (경성대학교 식품응용공학부)

Abstract ▼ AI-Helper

In this study, biotin (vitamin B7) contents of frequently consumed foods in Korea were determined by using immunoaffinity column in conjunction with high-performance liquid chromatography (HPLC). The biotin contents of 24 foods of plant origin and 27 foods of animal origin were selected. The highest biotin contents in frequently consumed foods of plant origin were found in red beans (Huinguseul; 11.475 ㎍/100 g). On the other hand, biotin was not detected in any varieties of sorghum. For frequently consumed foods of animal origin, salted pollack roe (7.486 ㎍/100 g) showed the highest biotin content. However, beef and fish contained less biotin. All biotin analyses were conducted under analytical quality control. The limits of detection and limits of quantification of biotin were 0.007 and 0.023 ㎍/100 g, respectively, and the accuracy/recovery percentage was 95.35-105.02%. The precision values were 4.041% (repeatability) and 3.835% (reproducibility). Taken together, our data provide reliable data on the biotin contents of frequently consumed foods in Korea.

주제어

표/그림 (9)

표 Contents of biotin in foods from plant origin
그림 HPLC chromatogram of biotin standard (A) and SRM 1845a (B).
그림 Biotin standard curve.
표 Contents of biotin in foods from animal origin
표 Limit of detection and quantitation of biotin analyze using immunoaffinity-HPLC method
그림 The quality control chart of immunoaffinity column/HPLC analysis for biotin.
표 Accuracy of immunoaffinity-HPLC assay for biotin contents analysis
표 Spike test recovery of immunoaffinity-HPLC assay for biotin
표 Precision for biotin contents for infant/adult nutritional formula

AI 본문요약
AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

뿐만 아니라, 전 세계적으로 미국 농무성의 영양소 데이터베이스나 일본 문부과학성의 식품 성분 데이터베이스에서 갖춘 biotin 함량 정보는 제 한적이며, 우리나라에서 섭취되는 식품의 biotin 함량에 관한 정보 또한 미비한 실정이다. 따라서 본 연구에서는 우리나라에서 섭취되는 다소비 식품을 대상으로 biotin의 함량을 알아보았으며, 아울러 biotin 분석에 사용된 분석법의 검증을 통해 신뢰성이 확보된 데이터를 얻고자 하였다.
또한 본 연구에서는 biotin 분석법의 정밀성을 평가하기 위해 조제분유를 이용하여 반복성과 재현성을 평가하였다. Biotin 분석에 대한 반복성과 재현성의 RSD%는 각각 4.
Biotin은 모든 생명체의 세포에 존재하며 탄수화물, 지방, 및 아미노산 대사에 중요하고 다양한 생리활성이 있는 것으로 보고되어 있다. 본 연구에서는 immunoaffinity column을 이용하여 우리나라에서 다소비되는 식품 51종에 함유된 biotin 함량을 알아보았다. 다소비 식품의 biotin의 함량을 분석한 결과 식물성 식품군에서는 건조 호박(8.

제안 방법

Biotin 분석은 5000 Hitachi Chromaster serise(Hitachi, Tokyo, Japan)를 이용했으며, 분석용 컬럼은 C18 column (150×4.6 mm×2.6 µm, Phenomenex, Torrance, CA, USA) 을 사용하였다.
Biotin 분석을 위한 방법으로는 Association of official analytical chemists (AOAC 2016)의 방법을 변형하여 실시 하였다. 농촌진흥청으로부터 제공받은 시료 5g을 conical tube에 칭량한 후 25 mL의 추출용매(0.
15 M sodium phosphate buffer를 이용하여 총 부피가 50 mL가 되게 하였 다. Biotin 추출액은 3500 rpm에서 15분간 원심분리한 후 whatman No. 2 여과지(GE Healthcare, Amersham Place, UK)를 이용하여 여과하였고, immunoaffinity column (EasiExtract biotin, r-Biopharm, Glasgow, UK)을 이용하여 biotin을 농축하였고, 이를 HPLC/UVD 분석에 사용하였다.
본 연구에서는 biotin 분석법을 검증하기 위해 표준곡선, 검출한계 및 정량한계, 회수율을 구하였다. Biotin의 특이성은 biotin의 표준물질과 SRM 1845a에서 얻은 크로마토그램을 비교하여 다른 물질의 간섭없이 단일 peak가 분리되는것을 확인하였다[Figure 1].
본 연구 결과 충분한 biotin의 섭취를 위해서는 육류와 수산물 식품보다는 곡류 및 두류의 섭취가 유리하며, 여러 식품과 어울려 함께 섭취해야 할 것으로 판단된다. 본 연구에서 사용된 biotin 분석법의 특이성, 직선성, 정확성, 정밀성, LOD 및 LOQ는 모든 지표가 분석법 검증 가이드라인에 부합하였다. 또한 내부 분석품질관리를 통해 biotin 분석 결과의 신뢰성을 확보할 수 있었다.
본 연구에서는 biotin 분석법을 검증하기 위해 표준곡선, 검출한계 및 정량한계, 회수율을 구하였다. Biotin의 특이성은 biotin의 표준물질과 SRM 1845a에서 얻은 크로마토그램을 비교하여 다른 물질의 간섭없이 단일 peak가 분리되는것을 확인하였다[Figure 1].
본 연구에서는 biotin 분석에 대한 내부 품질관리를 위하여 조제 분유에 함유된 biotin을 10회 이상 반복 분석한 후 관리 상·하한선(UCL 및 LCL)과 조치 상·하한선(UAL 및 LAL)을 설정하여 QC chart를 작성하였다[Figure 3].
1% phosphoric acid (용매A), 100% acetonitrile (용매B) 및 80% acetonitrile (용매C)을 사용하여 gradient elution 방식으로 분석하였다. 분석 조건은 0분 90% A용매: 10% B용매, 18분 90% A용매: 10% B용매, 21분 100% C용매, 26.5분 100% C용매, 29분 90% A용매: 10% B용매, 32분 90% A용매: 10% B용매로 조절하였고, 유속은 0.6 mL/min으로 하였다.
본 연구에서 사용된 biotin 분석법은 AOAC 분석법 검증 가이드라인(2016)에 따라 수행되었다. 분석법 검증은 특이성, 직선성, 정확성, 정밀성, 검출한계(LOD, limits of detection) 와 정량한계(LOQ, limits of quantification)를 평가하였다. 표준곡선의 직선성은 표준용액을 7가지 농도로 제조하여 평가하였으며, 정확성은 표준참고물질을 분석하여 NIST에서 제공한 인증값과 비교하여 회수율(%)을 구하였다.
이동상은 0.1% phosphoric acid (용매A), 100% acetonitrile (용매B) 및 80% acetonitrile (용매C)을 사용하여 gradient elution 방식으로 분석하였다.
표준곡선의 직선성은 표준용액을 7가지 농도로 제조하여 평가하였으며, 정확성은 표준참고물질을 분석하여 NIST에서 제공한 인증값과 비교하여 회수율(%)을 구하였다. 정밀성 검증은 QC 시료를 사용하여 1일 5회 분석하여 반복성 (repeatability)을 평가하였으며, 5일 동안 1회씩 분석하여 재 현성(reproducibility)을 평가하였다. LOD와 LOQ는 biotin 표준품의 peak로부터 얻어지는 signal-to-noise (S/N)의 평균 값과 표준편차를 이용하여 구했다.
분석법 검증은 특이성, 직선성, 정확성, 정밀성, 검출한계(LOD, limits of detection) 와 정량한계(LOQ, limits of quantification)를 평가하였다. 표준곡선의 직선성은 표준용액을 7가지 농도로 제조하여 평가하였으며, 정확성은 표준참고물질을 분석하여 NIST에서 제공한 인증값과 비교하여 회수율(%)을 구하였다. 정밀성 검증은 QC 시료를 사용하여 1일 5회 분석하여 반복성 (repeatability)을 평가하였으며, 5일 동안 1회씩 분석하여 재 현성(reproducibility)을 평가하였다.

대상 데이터

2018년과 2019년에 수집된 시료는 액체 질소로 냉동한 후 균질기(Robot Coupe Blixer, Robot Coupe USA, Jackson, MS, USA)로 마쇄하여 균질화하였으며, 이를 농촌 진흥청으로부터 제공받아 −20℃에서 냉동 보관하며 사용하였다.
Methanol은 Burdick & Jackson사(Muskegon, MI, USA)에서 구매하여 실험에 사용하였으며, 이동상에 사용되는 o-phosphoric acid는 Merck사(Darmstadt, Germany)에서 구매하여 실험에 사용하였다. Acetonitrile은 Thermo Fisher Scientific (Portsmouth, NH, USA)에서 구입하여 실험에 사 용하였다. 표준참고물질(SRM, standard reference materials) 은 미국 국립 표준 기술소(National institute of standards and technology, NIST)에서 구입하여 사용하였다.
Biotin 표준품, sodium dihydrogen phosphate monohydrate 과 disodium hydrogen phosphate hepta-hydrate은 SigmaAldrich Inc. (St. Louis, MO, USA)에서 구입하여 사용하였 다. Methanol은 Burdick & Jackson사(Muskegon, MI, USA)에서 구매하여 실험에 사용하였으며, 이동상에 사용되는 o-phosphoric acid는 Merck사(Darmstadt, Germany)에서 구매하여 실험에 사용하였다.
Methanol은 Burdick & Jackson사(Muskegon, MI, USA)에서 구매하여 실험에 사용하였으며, 이동상에 사용되는 o-phosphoric acid는 Merck사(Darmstadt, Germany)에서 구매하여 실험에 사용하였다.
표준참고물질(SRM, standard reference materials) 은 미국 국립 표준 기술소(National institute of standards and technology, NIST)에서 구입하여 사용하였다. 내부 분석 품질관리에 사용한 quality control (QC) 시료는 시중에 판매 하는 분유(commercial infant formula, Imperial dream XO, Namyang, Seoul, Korea)를 구입하여 사용하였다.
Biotin 분석을 위한 방법으로는 Association of official analytical chemists (AOAC 2016)의 방법을 변형하여 실시 하였다. 농촌진흥청으로부터 제공받은 시료 5g을 conical tube에 칭량한 후 25 mL의 추출용매(0.15 M sodium phosphate buffer, pH 7.0)를 가하여 121℃에서 25분 동안 autoclave를 실시하였다. 그 후 상온에서 방랭하였고, 0.
본 연구에서 사용된 시료는 2013년에서 2015년에 수행된 국민건강영양조사 결과를 바탕으로 우리나라에서 많이 소비되는 식품을 층화다단추출법에 적용하여 선정되었다(Kim et al. 2020). 2018년과 2019년에 수집된 시료는 액체 질소로 냉동한 후 균질기(Robot Coupe Blixer, Robot Coupe USA, Jackson, MS, USA)로 마쇄하여 균질화하였으며, 이를 농촌 진흥청으로부터 제공받아 −20℃에서 냉동 보관하며 사용하였다.
Acetonitrile은 Thermo Fisher Scientific (Portsmouth, NH, USA)에서 구입하여 실험에 사 용하였다. 표준참고물질(SRM, standard reference materials) 은 미국 국립 표준 기술소(National institute of standards and technology, NIST)에서 구입하여 사용하였다. 내부 분석 품질관리에 사용한 quality control (QC) 시료는 시중에 판매 하는 분유(commercial infant formula, Imperial dream XO, Namyang, Seoul, Korea)를 구입하여 사용하였다.

데이터처리

정밀성 검증은 QC 시료를 사용하여 1일 5회 분석하여 반복성 (repeatability)을 평가하였으며, 5일 동안 1회씩 분석하여 재 현성(reproducibility)을 평가하였다. LOD와 LOQ는 biotin 표준품의 peak로부터 얻어지는 signal-to-noise (S/N)의 평균 값과 표준편차를 이용하여 구했다.
QC chart 는 조제분유를 10회 이상 분석하여 biotin 함량을 확립한 후 관리 상·하한선(upper and lower control line, UCL and LCL)과 조치 상·하한선(upper and lower action line, UAL and LAL)을 설정하여 작성하였다. 또한 매번 시료를 분석하면서 내부 분석품질관리 물질인 조제분유도 함께 분석하여 그 결과값을 QC chart에 기록하였다.
본 연구 결과의 통계 분석은 SAS 9.4 (SAS Institute Inc., Cary, NC, USA) 프로그램을 사용하였으며, 일원배치분 산분석(ANOVA)과 Duncan’s multiple range test를 실시하여 p<0.05 수준에서 시료 간의 유의성을 검정하였다.

이론/모형

Biotin 분석에 대한 내부 분석품질관리를 위하여 AOAC guideline (2016)에 따라 QC chart를 작성하였다. QC chart 는 조제분유를 10회 이상 분석하여 biotin 함량을 확립한 후 관리 상·하한선(upper and lower control line, UCL and LCL)과 조치 상·하한선(upper and lower action line, UAL and LAL)을 설정하여 작성하였다.
본 연구에서 사용된 biotin 분석법은 AOAC 분석법 검증 가이드라인(2016)에 따라 수행되었다. 분석법 검증은 특이성, 직선성, 정확성, 정밀성, 검출한계(LOD, limits of detection) 와 정량한계(LOQ, limits of quantification)를 평가하였다.

성능/효과

Biotin 분석의 정확성 검증을 위하여 표준인증물질인 SRM 1845a (whole egg powder)를 사용하였으며, 분석값은 0.75± 0.00 mg/kg으로 100.47%의 우수한 회수율을 보여주었다.
Biotin의 1일 충분 섭취량은 30 µg/day로 흰구슬 팥을 섭취하였을 때 약 38.3%를 충족시킬 수 있으며, 건조 호박은 27.9%인 것으로 나타났다.
과일 및 채소류에서는 건조 호박(8.379± 0.149 µg/100 g)이 가장 높은 biotin 함량을 나타냈고, 삶은 호박(0.254±0.003 µg/100 g)이 가장 낮은 함량을 보여주었다.
다소비 식품의 biotin의 함량을 분석한 결과 식물성 식품군에서는 건조 호박(8.379±0.149 µg/ 100 g)과 흰구슬 팥(11.475±0.076 µg/100 g)의 biotin 함량이 높게 나타났다.
따라서 본 연구에 사용된 biotin의 분석법은 HPLC MS/MS를 사용한 분석법에 비하여 더욱 우수하게 biotin을 검출할 수 있는 것으로 판단된다.
3 µg/ 100 g으로 보고하고 있다. 따라서 본 연구에서 알아본 명란젓의 biotin 함량이 높은것은 원재료에 포함된 biotin으로부터 기인한 것으로 생각된다. 또한 젓갈은 저장기간 동안 자가분해효소 및 미생물의 발효 작용에 의해 단백질과 지방의 분해가 일어나 독특한 풍미와 맛을 갖게 된다(Hwang & Kim 2001).
본 연구에서 사용된 biotin 분석법의 특이성, 직선성, 정확성, 정밀성, LOD 및 LOQ는 모든 지표가 분석법 검증 가이드라인에 부합하였다. 또한 내부 분석품질관리를 통해 biotin 분석 결과의 신뢰성을 확보할 수 있었다. 본 연구에서 는 우리나라에서 다소비되는 식품의 biotin 함량에 관한 정 보를 제공하며, 이는 국가표준식품성분표 및 국가영양정책 수립에 활용될 수 있을 것으로 기대된다.
또한 본 연구에서는 시판 조제 분유를 활용하여 spike 테스트를 실시하였으며, 회수율은 95.354-105.02%의 범위를 나타내었다. Shin et al.
630분에서 peak가 확인되었다. 또한 표준곡선의 상관계수(R²)는 0.9999 이상이었으며, 직선성이 우수함을 확인할 수 있었다.[Figure 2]
6%였다. 본 연구 결과 충분한 biotin의 섭취를 위해서는 육류와 수산물 식품보다는 곡류 및 두류의 섭취가 유리하며, 여러 식품과 어울려 함께 섭취해야 할 것으로 판단된다. 본 연구에서 사용된 biotin 분석법의 특이성, 직선성, 정확성, 정밀성, LOD 및 LOQ는 모든 지표가 분석법 검증 가이드라인에 부합하였다.
672 µg/100 g)을 나타냈었다. 본 연구에서 분석한 건조된 호박의 biotin 함량이 높게 나타난 것은 건조에 의한 수분 증발로 단위 중량당 biotin의 함량이 높게 나타난 것으로 보이며, 이는 이전 연구(Kwon et al. 2019)의 건조된 옥수수에서 biotin 함량이 높게 나타난것과 유사하다. 두류와 곡류에서는 흰구슬 팥이 11.
본 연구에서 사용된 모든 젓갈류에서는 biotin이 검출되었으며, 명란젓(7.486±0.021 µg/100 g)이 가장 높았고, 다음으로 까나리 액젓(4.991±0.248 µg/100 g), 창란젓(2.057±0.102 µg/100 g) 순으로 높았다.
AOAC가이드라인(2016)에서는 정밀성이 확보된 RSD%의 수용 범위를 1 µg/100 g 수준에서 반복성의 경우 8%, 재현성의 경우16%로 제시하고 있다. 본 연구의 반복성과 재현성의 결과는 모두 AOAC에서 제시하는 수준보다 낮은 값이었고, 본 분석법의 정밀성은 매우 우수한 것으로 판단되었다[Table 6].
243 µg/100 g이었다. 소고기 부위별로 biotin 함량은 등심, 우둔, 앞다리 순으로 높았으나 부위별 유의적인 차이는 나타나지 않았다. Watanabe et al.
소고기의 부위별 biotin 함량은 0.146-0.243 µg/100 g이었으며, 부위에 따른 biotin 함량의 차이는 유의적이지 않는 것으로 나타났다.
00%로 보고하였다. 이와 같이 본 연구에서 사용한 biotin 분석법은 기존 연구와 비교하였을 때 AOAC가이드라인(2016)에서 제시하는 기준을 충족하는 것으로 나타났다 [Table 5].
9 µg/100 g (Kim & Oh 2011)으로 나타나 있다. 이처럼 육류는 biotin의 좋은 급원 식품이 아니며, 본 연구 결과에서도 소고기의 biotin 함량은 1일 충분 섭취량 대비 1% 이하의 낮은 수준으로 나타났다. 또한 최근 식생활의 변화로 우리나라에서 육류에 대한 소비는 날로 증가하고 있기에, biotin의 충분한 섭취를 위해서는 biotin 급원 식품을 포함한 식단을 구성해야 할 것으로 생각된다.

후속연구

9%인 것으로 나타났다. 그러나 식품 원재료에 함유된 수용성 비타민은 조리 과정을 거치게 되면서 잔존율이 낮아지므로(Hwang et al. 2014), 실제 섭취되는 biotin은 본 연구에서 보고하는 함량보다 적을 것으로 예측되며, 후속 연구가 필요한 것으로 생각 된다. 따라서 충분한 biotin의 공급을 위해서는 다른 식품과 함께 섭취해야 할 것으로 판단된다.
대부분의 식품에 함유된 biotin의 함량은 매우 낮은 편이며, 동물성 식품에서 biotin은 단백질과 강하게 복합체를 이루고 있기 때문에 biotin의 함량을 정확히 분석하는 것은 어려우며, 앞으로 더욱 연구가 필요한 실정이다(Holler et al. 2006). 현재 우리나라에서 섭취하는 식품에 대한 biotin의 함량에 관한 연구는 매우 부족하다.
또한 내부 분석품질관리를 통해 biotin 분석 결과의 신뢰성을 확보할 수 있었다. 본 연구에서 는 우리나라에서 다소비되는 식품의 biotin 함량에 관한 정 보를 제공하며, 이는 국가표준식품성분표 및 국가영양정책 수립에 활용될 수 있을 것으로 기대된다.
뿐만 아니라 생선류의 biotin 함량은 대체적으로 낮은 수준(Kim & Oh 2011)으로 본 연구 결과는 이전 연구 결과와 유사하였다. 본 연구에서 분석한 젓갈류의 biotin 함량은 비교적 생선류보다 높은 함량을 보여주었으나, 젓갈류의 biotin 함량에 관한 정보가 매우 제한적이기에 추가 연구가 필요한 것으로 생각된다. 이와 같이 육류 및 생선과 같은 동물성 식품에는 biotin 함량이 대체적으로 낮은 수준이므로 충분한 biotin의 섭취를 위해서는 식단의 구성에 유의해야 할 것으로 판단된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	과일 및 채소류에서 식물성 식품의 biotin 함량이 가장 높은 것과 가장 낮은 것은 무엇인가?	국내에서 다소비되는 식물성 식품의 biotin 함량은 [Table1]에 나타내었다. 과일 및 채소류에서는 건조 호박(8.379± 0.149 µg/100 g)이 가장 높은 biotin 함량을 나타냈고, 삶은 호박(0.254±0.003 µg/100 g)이 가장 낮은 함량을 보여주었다.본 연구진이 수행한 이전 연구(Kwon et al.
	biotin이란 무엇인가?	비타민 B7으로 불리는 biotin (hexahydro-2-oxo-1-H-thieno [3,4-d-] imidazole-4-pentanoic acid)은 수용성 비타민 중 하나이다. Biotin은 살아 있는 모든 생명체의 세포에서 발견되며(Livaniou et al.
	biotin의 생리적 기능은 무엇인가?	계란의 난백에는 avidin이라는 단백질이 존재하며, 이는 biotin과 결합하여 침전을 일으키기 때문에 장기간 날계란을 섭취한 경우에는 biotin 결핍이 야기될 수 있다(Joseph & Devi 2018). 최근 연구에 의하면 biotin은 케라틴과 같은 단백질의 구조 강화에 기여함으로써 피부 및 두피 건강 유지에 중요한 것으로 알려져 있다(Yomota & Ohnishi 2007). 뿐만 아니라 biotin 은 체중감량, 혈당 저하, 피로회복 등의 효과로 인해 영양보충제로도 각광받고 있다(Luong et al. 2019).

참고문헌 (17)

AOAC. AOAC guidelines for single laboratory validation of chemical methods for dietary supplements and botanicals. Association of Official Agricultural Chemists International, Gaithersburg, MD, USA. 2016
Gill BD, Saldo S, Wood JE, Indyk HE. 2018. A rapid method for the determination of biotin and folic acid in liquid milk, milk powders, infant formula, and milk-based nutritional products by liquid chromatography-tandem mass spectrometry. J AOAC Int. 101(5):1578-1583

상세보기
Holler U, Wachter F, Wehrli C, Fizet C. 2006. Quantification of biotin in feed, food, tablets, and premixes using HPLC-MS/MS. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 831(1-2):8-16
Hwang IG, Byun JY, Kim KM, Jung MN, Yoo SM. 2014. Vitamin C quantification of Korea sweet potatoes by cultivar and cooking method. J Korean Soc Food Sci Nutr. 43(6):955-961
Hwang JH, Kim JM. 2001. Physicochemical properties of commercial salt-fermented shrimp. J Korea Soc Food Sci Nutr. 30(4):760-763
Joseph G, Devi R. 2018. Determination of total biotin by liquid chromatography coupled with immunoaffinity column cleanup extraction: multilaboratory testing, Final Action 2016.02. J AOAC Int. 101(3):831-842

상세보기
Kergaravat SV, Gomez GA, Fabiano SN, Laube Chavez TI, Pividori MI, Hernandez SR. 2012. Biotin determination in food supplements by an electrochemical magneto biosensor. Talanta. 97:484-490

상세보기
Kim DS, Lee YJ. Jeong DY, Lee DY, Ahn MK. 2003. Determination of biotin by HPLC. Anal Sci Technol. 16:499-503
Kim JH, Hwang HW, Cho YJ, Park JW. 2020. A study on collecting representative food samples for the 10th Korean standard foods composition table. The Korean Journal of Applied Statistics. 33(2):215-228
Kim JY, Oh CH. 2011. Analysis of biotin in Korean representative foods and dietary intake assessment for Korean. Food Sci Biotechnol. 20(4):1043-1049

원문보기 상세보기
Kwon JH, Lee SH, Choi Y, Kim Y. 2019. Biotin analysis in selected agricultural foods consumed in Korea. J Korea Soc Food Sci Nutr. 48(12):1366-1372
Lin Q, Ding Y, Poh F, Zhang C, Pan SJ, Schimpf KJ. 2017. Determination of biotin in infant, pediatric, and adult nutritionals by high-performance liquid chromatography and fluorescence detection: single-laboratory validation, First Action 2016.11. J AOAC Int. 100(1):145-151

상세보기
Livaniou E, Costopoulou D, Vassiliadou I, Leondiadis L, Nyalala JO, Ithakissios DS, Evangelatos GP. 2000. Analytical techniques for determining biotin. J Chromatogr A. 881(1-2):331-343
Luong JHT, Male KB, Glennon JD. 2019. Biotin interference in immunoassays based on biotin-strept (avidin) chemistry:An emerging threat. Biotechnol Adv. 37(5):634-641

상세보기
Shin YW, Lee HJ, Ham HS, Shin SC, Kang YJ, Hwang KM, Kwon YK, Seo IW, Oh JM, Koo YE. 2016. Establishment of biotin analysis by LC-MS/MS method in infant milk formulas. J Food Hyg Saf. 31(5):327-334
Watanabe T, Kioka M, Fukushima A, Morimoto M, Sawamura H. 2014. Biotin content table of select foods and biotin intake in Japanese. Int J Anal Bio Sci. 2(4):109-125
Yomota C, Ohnishi Y. 2007. Determination of biotin following derivatization with 2-nitrophenylhydrazine by highperformance liquid chromatography with on-line UV detection and electrospray-ionization mass spectrometry. J Chromatogr A. 1142(2): 231-235

상세보기

저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

내보내기 구분	파일저장 인쇄 메일전송
구성항목	기본정보 상세정보 관리번호, 논문명, 저널/프로시딩명, 저자 , 발행년, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, 발행기관 관리번호, 논문명, 대등논문명, 저자 , 저널/프로시딩명, 발행기관, 발행년, 발행언어, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, ISBN, ISSN, 주제분야, 키워드, 초록(한글), 초록(영문), 저자(소속기관)
저장형식	Text(ASCII format) Excel format RefWorks Direct Export RIS format (for Reference Manager, ProCite, EndNote), Scholar's Aids, Mendeley
메일정보	받는사람 (필수) @ 보내는사람 (선택) @ 제목 내용 KISTI 검색결과 이메일 서비스
안내	총 건의 자료가 검색되었습니다. 다운받으실 자료의 인덱스를 입력하세요. (1-10,000) 검색결과의 순서대로 최대 10,000건 까지 다운로드가 가능합니다. 데이타가 많을 경우 속도가 느려질 수 있습니다.(최대 2~3분 소요) 다운로드 파일은 UTF-8 형태로 저장됩니다. 파일의 내용이 제대로 보이지 않을실 때는 웹브라우저 상단의 보기 -> 인코딩 -> 자동선택 여부를 확인하십시오. ~ Text(ASCII format) Excel format

연합인증