$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

혼합영양 조건하에서 Haematococcus sp.의 배지 최적화 및 대사산물 생산
Medium Optimization for Cell Growth and Metabolite Formation from Haematococcus sp. under Mixotrophic Cultivation 원문보기

Microbiology and biotechnology letters = 한국미생물·생명공학회지, v.48 no.3, 2020년, pp.337 - 343  

김효선 (부경대학교 생물공학과) ,  김성구 (부경대학교 생물공학과) ,  정귀택 (부경대학교 생물공학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

Haematococcus sp.를 대상으로 mixotroph 형태에서 배양을 위한 배지 최적화 연구를 수행하였다. 기본 배지로는 modified MS 배지가 적절했으며, 탄소원으로는 glucose가, 그리고 농도는 10 g/l가 적합하였다. 질소원으로는 KNO3를 선정하였으며, 농도는 1.9 g/l이 최적이었다. 최적의 배지조건에서 Haematococcus sp.를 초기 접종량(0.18 g/l)로 접종하여 14일 후에 5.58 ± 0.25 g/l로 성장하였으며, 이는 건조 세포중량 기준으로 약 31배의 성장한 것이다. 이때 생성된 클로로필은 172.16 ± 7.79 mg/l였으며, 카로티노이드는 42.33 ± 1.91 mg/l이었다. 본 연구의 결과는 추후 미세조류 대량 배양과 대사산물의 생산에 이용가능한 기초자료가 될 수 있을 것이라 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

In this study, the medium optimization for cell growth and metabolite formation of Haematococcus sp. under mixotrophic cultivation was investigated. As a result, modified MS medium was selected as the basal medium; glucose was selected as the carbon source, with an optimum concentration of 10 g/l, a...

주제어

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

제안 방법

  • L/D cycle의 영향. L/D cycle에 따른 미세조류의 성장을 비교하기 위해 L/D cycle을 16:8, 12:12, 8:16의 3가지 형태로 배양을 진행하였다. 형광등을 사용하여 100 µmol/m2/s의 광도로 조사하였다.
  • 01 day-1를 나타내었다. NaNO3에서 growth rate가 더 높았지만, product 생산에 큰 영향을 주지 않을 것으로 생각되어 KNO3를 최적 질소원으로 결정하였다.
  • 를 대상으로 mixotroph 배양 조건에서 기본 배지를 선정하고, L/D cycle, 탄소원과 질소원의 종류 및 농도의 최적화를 통하여 미세조류의 대량배양에 적합한 배지 조성을 조사하였다. 또한, 미세조류의 성장과 더불어 대사산물(클로로필, 카로티노이드)의 생성을 조사하였다.
  • 또한, 접종에 사용한 미세조류는 배양 전 4일 동안 전배양 후 접종에 사용하였으며, 초기 미세조류의 농도(OD) 값은 0.2−0.3 사이가 되도록 하였다.
  • 본 연구에서는 미세조류 Haematococcus sp.를 대상으로 mixotroph 배양 조건에서 기본 배지를 선정하고, L/D cycle, 탄소원과 질소원의 종류 및 농도의 최적화를 통하여 미세조류의 대량배양에 적합한 배지 조성을 조사하였다. 또한, 미세조류의 성장과 더불어 대사산물(클로로필, 카로티노이드)의 생성을 조사하였다.
  • Haematococcus sp.를 대상으로 mixotroph 형태에서 배양을 위한 배지 최적화 연구를 수행하였다. 기본 배지로는 modified MS 배지가 적절했으며, 탄소원으로는 glucose가, 그리고 농도는 10 g/l가 적합하였다.
  • 미세조류의 성장은 분광광도계(Ultrospec® 3000)를 사용하여 660 nm에서 흡광도를 측정하였으며, 건조세포중량과 흡광도 값과의 관계식을 이용하여 환산하여 사용하였다.
  • 배양에 알맞은 탄소원 종류를 알아보기 위해 glucose, galactose, fructose, xylose, cellobiose, sucrose를 대상으로 10 g/l씩 첨가하여 14일 동안 배양한 결과를 Fig. 3에 나타내었다.
  • 건조세포중량 측정. 배양한 미세조류는 원심분리기를 사용 하여 분리한 후 동결건조기(-80℃, SFDSM 24L, Samwon Freeze Engineering Co., Korea)를 이용하여 3일 동안 동결건조하여 미세조류 건조중량을 측정하였다. 미세조류의 성장은 분광광도계(Ultrospec® 3000)를 사용하여 660 nm에서 흡광도를 측정하였으며, 건조세포중량과 흡광도 값과의 관계식을 이용하여 환산하여 사용하였다.
  • 클로로필과 카로티노이드 생산에 적절한 탄소원 농도는 10 g/l로 충분할 것으로 판단되었다. 세포성장과 대사산물의 생산량을 고려하여 10 g/l의 glucose를 최적 농도로 결정하였다.
  • 27 mg/l가 생산되었다. 실험에는 가장 세포성장이 높았던 16:8 L/D cycle을 최적 조건으로 확립하고 모든 조건에서 L/D cycle을 16:8로 고정하고 실험을 진행하였다.
  • 의 성장을 비교하기 위하여 modified MS, BG11, JM, F/2 배지를 대상[16−18]으로 배지의 pH를 7로 조절하여 121℃에서 15분간 멸균하여 사용하였다.
  • 질소원의 영향. 질소원에 따른 미세조류의 성장과 대사산물의 생산을 비교하기 위하여 NaNO3, KNO3, NH4NO3, NH4Cl, (NH4)2SO4를 1.5 g/l씩 배지에 첨가한 후 최적 질소원을 선정하였다. 최적 질소원의 농도는 선정된 질소원의 농도를 0.
  • 27 g/l의 세포성장으로 나머지 탄소원에 비해 비교적 낮은 값을 나타내었다. 최적 탄소원으로 세포성장과 경제적인 면을 고려하여 glucose를 선택하였다.
  • 클로로필, 카로티노이드 추출 및 측정. 배양한 미세조류는 원심분리를 사용하여 분리한 후 동결건조한 시료를 대상으로 대사산물의 추출에 사용하였다.
  • 탄소원의 영향. 탄소원에 따른 미세조류의 성장과 대사산물의 비교를 위하여 glucose, galactose, sucrose, xylose, fructose, cellobiose를 대상으로 10 g/l씩 첨가하여 배양하였다. 최적 탄소원의 농도는 5−30 g/l의 농도로 배양하였다.
  • 형광등을 사용하여 100 µmol/m2/s의 광도로 조사하였다.

대상 데이터

  • 본 실험에서 사용한 Haematococcus sp. (KMMCC 1464)는 한국해양미세조류은행에서 분양받아 사용하였다. 실험에 사용한 시약들은 시약급을 사용하였다.
  • 클로로필, 카로티노이드 추출 및 측정. 배양한 미세조류는 원심분리를 사용하여 분리한 후 동결건조한 시료를 대상으로 대사산물의 추출에 사용하였다. 동결 건조한 미세조류 분말 10 mg에 메탄올 10 ml를 첨가하여 60℃에서 30분 동안 추출 후, 0℃에서 5분간 냉각시킨 뒤 상등액을 분리하였다.
  • 기본 배지로는 modified MS 배지가 적절했으며, 탄소원으로는 glucose가, 그리고 농도는 10 g/l가 적합하였다. 질소원으로는 KNO3를 선정하였으며, 농도는 1.9 g/l이 최적이었다. 최적의 배지조건에서 Haematococcus sp.

데이터처리

  • 결과의 통계적 유의성은 SPSS 소프트웨어(버전 23.0; SPSS Inc., USA)를 사용하여 분산 분석(ANOVA)과 Duncan의 다중 범위 테스트(p < 0.05)를 통하여 평가하였었다.
  • 모든 실험은 2회 이상 반복하여 각 항목에 따라 평균값±표준편차를 구하여 결과를 평가하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (19)

  1. Lee SP, Kim HS. 2013. Biodiesel using microalgae, pp. 6-11. Korea Institute of Science and Technology Information. 

  2. Rossler PG. 1990. Environmental control of glycerolipid metabolism in microalgae: Commercial implications and future research direction. J. Phycol. 26: 393-399. 

  3. Yun YS, Part JM, Yang JW. 1996. Enhancement of $CO_2$ tolerance of Chlorella Vulgaris by gradual increase of $CO_2$ concentration. Biotechnol. Technol. 10: 713-716. 

  4. Percival E, Foyle RAH. 1989. The extracellular polysaccharides od Porphyridium cruentum and Porphyridium aerugineum. Carbohydr. Res. 72: 165-172. 

  5. Viso AC, Pesando D, Baby C. 1987. Antibacterial and antifungal propertise of some marine diatoms in culture. Botanica Marina 30: 41. 

  6. Oh HM, Choi AR, Mheen TI. 2003. High-value materials from microalgae. Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology, Korea. 

  7. Lee IS, Lee HY, Kim HL, Ko KH, Chang HC, Kim IC. 2008. Effect of metal ions on stabilization of Codium fragile's pigments. Korean J. Food Preserv. 15: 352-360. 

  8. Lee NY, Kim YK, Choi ID, Cho SK, Hyun JN, Choi JS, et al. 2010. Biological activity of barley (Hordeum vulgare L.) and barley byproduct extracts. Food Sci. Biotechnol. 19: 795-791. 

  9. Rao AV, Rao LG. 2007. Carotenoids and human health. Pharmacol. Res. 55: 207-216. 

  10. Stahl W, Sies H. 2005. Bioactivity and protective effects of natural carotenoids. Biochim. Biophys. Acta. 1740: 101-107. 

  11. Gouveia L, Veloso V, Reis A, Fernandes H, Novais J, Empis J. 1996. Evolution of pigment composition in Chlorella vulgaris. Bioresour. Technol. 57: 157-159. 

  12. Lorenz RT, Cysewski GR. 2000. Commercial potential for Haematococcus microalgae as a natural source of astaxanthin. Trends Biotechnol. 18: 160-167. 

  13. Li HB, Jiang Y, Chen F. 2002. Isolation and purification of lutein from the microalga Chlorella vulgaris by extraction after saponification. J. Agric. Food Chem. 50: 1070-1072. 

  14. Bowers J. 1992. Food theory and applications, Macmillan Publishing Company. pp. 726-729. New York. 

  15. Jung SJ, Kim GE. 2001. The changes of ascorbic acid and chlorophylls contents in gochu-jangachi during fermentation. J. Korean Soc. Food Sci. Nutr. 30: 814-818. 

  16. Thompson AS, Rhodes JC, Pettman I. 1988. Natural Environmental Research Council Culture Collection of Algae Protozoa-Catalogue of Strains. pp. 22. Freshwater Biology Association (UK), Ambleside. 

  17. Rippka R, Deruelles J, Waterbury JB, Herdman M, Stanier RY. 1979. Generic assignments, strain histories and properties of pure cultures of cyanobacteria. J. Gen. Microbiol. 111: 1-61. 

  18. Guillard RRL. 1975. Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. pp. 26-60. In Smith, W.L. and Chanley, M.H. (Eds) Culture of Marine Invertebrate Animals, Plenum Press, New York. 

  19. Choi SJ, Lee JH. 2015. Characteristic of Arthrospira platensis enhanced antioxidant activity. Korean Soc. Biotecnol. Bioeng. J. 30: 119-124. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로