[논문]등수국 잎 추출물 유래 항염 및 항균 활성 성분

조성미; 김정은; 이남호

doi:10.15230/scsk.2020.46.3.207

등수국 잎 추출물 유래 항염 및 항균 활성 성분
Anti-inflammatory and Anti-bacterial Active Ingredients Derived from the Extract of the Leaves of Hydrangea Petiolaris 원문보기

大韓化粧品學會誌 = Journal of the society of cosmetic scientists of Korea, v.46 no.3, 2020년, pp.207 - 218

조성미 (제주대학교 화학.코스메틱학과) , 김정은 (제주대학교 화학.코스메틱학과) , 이남호 (제주대학교 화학.코스메틱학과)

초록
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본 연구에서는 등수국 잎 추출물의 항염 및 항균 활성을 확인하고 유효성분을 분리하여 화학구조를 동정하였다. RAW 264.7 세포를 이용한 항염 활성 실험 결과, n-hexane (Hex) 및 ethyl acetate (EtOAc) 분획물이 세포 독성 없이 nitric oxide (NO)의 생성 및 iNOS 단백질의 발현을 농도의존적으로 억제시키는 것을 확인하였다. 추가적인 항염 기전 연구 결과, n-Hex 및 EtOAc 분획물이 전염증성 cytokine (TNF-α, IL-1β, IL-6)의 생성을 억제하는 것을 확인하였다. 또한 표피포도상구균과 여드름균을 이용한 활성 실험 결과, 추출물 및 n-Hex, EtOAc, n-butanol (BuOH) 분획물에서 항균 활성이 나타났다. n-Hex 및 EtOAc 분획물의 활성 성분을 규명하기 위해 컬럼 크로마토그래피를 수행하여 4 개의 화합물을 분리하였다; phytol (1), corosolic acid (2), asiatic acid (3) 및 1-O-p-coumaroyl-β-D-glucopyranoside (4). 이들 화합물은 모두 등수국에서 처음으로 분리된 물질이다. 또한 HPLC 분석을 통해 등수국 잎 추출물에서 분리된 화합물의 함량을 측정한 결과 phytol (1) 이 27.8 mg/g 함유되어 있는 것으로 확인되었다. 이상의 연구 결과를 바탕으로 등수국 잎 추출물을 이용한 항염 및 항균 효과를 갖는 천연 화장품 소재로의 개발이 가능할 것이라 사료된다.

Abstract ▼ AI-Helper

In this study, the anti-inflammatory and anti-bacterial activities of the extracts from the leaves of the Hydrangea petiolaris were identified, and the chemical structure was identified by separating the active ingredient. As the result of the anti-inflammatory activity experiment using RAW 264.7 cells, it was confirmed that the n-hexane (Hex) and ethyl acetate (EtOAc) fractions inhibited the production of nitric oxide (NO) and the expression of iNOS protein in a concentration-dependent manner without cytotoxicity. In addition, the n-Hex and EtOAc fractions reduced the production of pro-inflammatory cytokines (TNF-α, IL-1β and IL-6). Upon the anti-bacterial tests using Staphylococcus epidermidis and Cutibacterium acnes, the extract, n-Hex, EtOAc and n-butanol (BuOH) fractions showed potent activities. In order to isolate the active constituents, the n-Hex and EtOAc fractions were further purified to afford four phytochemicals; phytol (1), corosolic acid (2), asiatic acid (3) and 1-O-p-coumaroyl-β-D-glucopyranoside (4). All of the compounds 1 - 4 were isolated for the first time from this plant. In addition, the contents of isolated compounds were determined by HPLC and the quantity of phytol (1) was 27.8 mg/g for the 70% EtOH extract. Based on the above research results, it is believed that it will be possible to develop a natural cosmetic material that has anti-inflammatory and anti-bacterial effects using the extract of H. petiolaris leaves.

주제어

표/그림 (10)

$Figure 1. Effects of extract and solvent fractions from H. petiolaris on NO production in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus H. petiolaris extract and solvent fractions for 24 h. NO production was determined by the Griess reagent method. Cell viability was determined after 24 h culture of cells stimulated with LPS (1 μg/mL) in the presence of H. petiolaris. The data represent the mean ± SD of triplicate experiments (*p < 0.05, **p < 0.01).$ 그림 Figure 1. Effects of extract and solvent fractions from H. petiolaris on NO production in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus H. petiolaris extract and solvent fractions for 24 h. NO production was determined by the Griess reagent method. Cell viability was determined after 24 h culture of cells stimulated with LPS (1 μg/mL) in the presence of H. petiolaris. The data represent the mean ± SD of triplicate experiments (*p < 0.05, **p < 0.01).
$Figure 2. Effects of n-Hex and EtOAc fractions from H. petiolaris on NO production in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus n-Hex and EtOAc fractions for 24 h. NO production was determined by the Griess reagent method. Cell viability was determined after 24 h culture of cells stimulated with LPS (1 μg/mL) in the presence of n-Hex and EtOAc fractions. The data represent the mean ± SD of triplicate experiments (*p < 0.05, **p < 0.01).$ 그림 Figure 2. Effects of n-Hex and EtOAc fractions from H. petiolaris on NO production in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus n-Hex and EtOAc fractions for 24 h. NO production was determined by the Griess reagent method. Cell viability was determined after 24 h culture of cells stimulated with LPS (1 μg/mL) in the presence of n-Hex and EtOAc fractions. The data represent the mean ± SD of triplicate experiments (*p < 0.05, **p < 0.01).
$Figure 3. Effects of n-Hex (A) and EtOAc (B) fractions from H. petiolaris on production of TNF-α, IL-1β and IL-6 in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus n-Hex and EtOAc fractions for 24 h. TNF-α, IL-1β and IL-6 produced and released into the culture medium was assayed using the ELISA method. The data represent the mean ± SD of triplicate experiments (*p < 0.05, **p < 0.01).$ 그림 Figure 3. Effects of n-Hex (A) and EtOAc (B) fractions from H. petiolaris on production of TNF-α, IL-1β and IL-6 in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus n-Hex and EtOAc fractions for 24 h. TNF-α, IL-1β and IL-6 produced and released into the culture medium was assayed using the ELISA method. The data represent the mean ± SD of triplicate experiments (*p < 0.05, **p < 0.01).
$Figure 4. Effects of n-Hex (A) and EtOAc (B) fractions from H. petiolaris on level of iNOS protein in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus n-Hex and EtOAc fractions for 24 h. Whole cell lysates (20 μg) were prepared and the protein was subjected to 10% SDS-PAGE; expression of iNOS and β-actin were determined by Western blotting. β-action served as a loading control.$ 그림 Figure 4. Effects of n-Hex (A) and EtOAc (B) fractions from H. petiolaris on level of iNOS protein in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus n-Hex and EtOAc fractions for 24 h. Whole cell lysates (20 μg) were prepared and the protein was subjected to 10% SDS-PAGE; expression of iNOS and β-actin were determined by Western blotting. β-action served as a loading control.
표 Table 1. Anti-bacterial activities of H. petiolaris leaves
표 Table 2. MIC and MBC values of H. petiolaris leaves
그림 Figure 5. Isolated compounds 1–4 from H. petiolaris leaves.
그림 Figure 6. Effects of isolated compound 1 and 3 from H. petiolaris on NO production in LPS-induced RAW 264.7 cells. The cells were stimulated with 1 μg/mL of LPS only, or with LPS plus compound 1 and 3 for 24 h. NO production was determined by the Griess reagent method. Cell viability was determined after 24 h culture of cells stimulated with LPS (1 μg/mL) in the presence of compound 1 and 3. The data represent the mean ± SD of triplicate experiments (*p < 0.05, **p < 0.01).
표 Table 3. Contents (mg/g) of isolated compounds 1 – 4 from H. petiolaris leaves
$Figure 7. HPLC chromatogram of 70% EtOH extract (A), n-Hex fraction (B) and EtOAc fraction (C) from H. petiolarisleaves at 202 nm.$ 그림 Figure 7. HPLC chromatogram of 70% EtOH extract (A), n-Hex fraction (B) and EtOAc fraction (C) from H. petiolarisleaves at 202 nm.

AI 본문요약
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문제 정의

그러나 아직까지 등수국 잎(leaves)을 대상으로 한 생리 활성 연구 및 유효 성분에 대해서는 보고되어 있지 않으므로 본 연구에서는 등수국 잎 추출물 및 극성별 용매 분획물의 항염 및 항균 효과를 확인하고 유효 성분을 분리, 동정하여 천연 화장품 원료 등으로 이용 가능한지 알아보고자 하였다.
petiolaris) 줄기에 대한 생리활성 및 성분 연구는 보고되어 있지만, 등수국 잎에 대해서는 활성 및 유효 성분 연구가 보고되어 있지 않다. 따라서 본 연구에서는 등수국 잎 추출물 및 용매 분획물의 항염, 항균 활성을 확인하고 성분 연구를 진행하여 화장품 관련 천연 소재로써의 이용 가능성을 알아보고자 하였다.

제안 방법

EtOAc 분획물은 MPLC를 이용하여 극성에 따라 세분화 하였다. EtOAc 분획물 5.
025 mm, Fluka, USA)이 사용되었다. Medium pressur liquid chromatography (MPLC, Biotage, Sweden)에는 KP-C18-HS (Biotage, Sweden) 컬럼을 사용하였다. 구조분석을 위한 nuclear magnetic resonance (NMR)는 JNM-ECX 400 (FT-NMR system, JEOL, Japan)을 이용하였으며, NMR 측정 용매는 CIL 사의 NMR 전용 용매인 CDCl₃ 및 CD₃OD을 사용하였다.
NO 생성 억제 활성이 우수한 등수국 잎 n-Hex 및 EtOAc 분획물에 대해 추가적인 항염 활성 기전 연구를 위해 ELISA kit를 이용하여 전염증성 사이토카인 생성 억제활성을 측정하였다. 그 결과, 등수국 잎 n-Hex 분획물은 TNF-α 및 IL-1β의 생성을 농도 의존적으로 감소시키는 효과가 있음을 확인하였다.
n-Hex 분획물 1.7 g을 극성에 따라 나누기 위하여 VLC를 수행하였으며, n-Hex-EtOAc (0 – 50%)의 용매를 극성을 5%씩 높이는 방법으로 각 300 mL씩 용출하였다.
1 차 항체 반응이 끝난 membrane은 TTBS 용액으로 5 회 세척 후, peroxidaseconjugated 2 차 항체(1 : 5,000 또는 1 : 20,000, SantaCruze, USA)와 상온에서 1 h 반응 시킨 뒤, TTBS 용액으로 5 회세척하였다. 단백질은 WESTA NOVA 2.0 (Cyanagen, Italy) 용액을 이용해 ECL 기질과 반응 시킨 후 Chemidoc (Fusion solo, VILBER LOURMAT, Germany)을 이용하여 각각의 단백질 발현 정도를 분석하였다.
등수국 잎 70% 에탄올 추출물 및 용매 분획물에 대한 항균 활성을 확인하기 위해 피부 관련 균주인 S. epidermidis 및 C. acnes를 이용하여 한천확산법으로 clear zone의 크기를 확인하였다. 그 결과, 등수국 잎 추출물 및 n-Hex, EtOAc, n-BuOH 분획물에서 항균 활성이 나타났으며(Table 1), 추가적으로 최소억제농도(MIC) 및 최소사멸농도(MBC) 값을 확인하였다(Table 2).
등수국 잎 추출물 및 용매 분획물의 항염 효과를 확인 하기 위해 마우스 대식세포인 RAW 264.7 cell을 이용하여 NO 생성 억제 활성을 측정하였다. 등수국 잎은 70% 에탄올을 이용해 추출하였으며, 얻어진 추출물을 용매 극성 순서에 따라 순차적으로 분획하여 n-Hex, EtOAc, n-BuOH, H₂O 분획물을 얻었다.
등수국 잎에서 분리된 화합물 1 – 4의 함량을 HPLC를 이용하여 분석하였다.
등수국 잎에서 분리된 화합물 1 –4의 함량을 확인하기 위해 HPLC (Alliance, Waters Co., USA), Kromasil 100-5-C18 column (4.6 × 250 mm, AkzoNobel, Netherlands)을 사용하여 정량 분석하였다.
7 cell을 이용하여 NO 생성 억제 활성을 측정하였다. 등수국 잎은 70% 에탄올을 이용해 추출하였으며, 얻어진 추출물을 용매 극성 순서에 따라 순차적으로 분획하여 n-Hex, EtOAc, n-BuOH, H₂O 분획물을 얻었다. 우선 추출물 및 용매 분획물에 대하여 100 μg/mL의 농도에서 실험을 진행하였으며 그 결과, n-Hex 및 EtOAc 분획물에서 NO 생성 억제 활성이 우수했으나, n-Hex 분획물은 세포독성이 나타났다(Figure 1).
또한 피부 관련 균주인 표피포도상구균(S. epidermidis) 및 여드름균(C. acnes)을 이용한 항균 실험 결과, 추출물 및 n-Hex, EtOAc, n-BuOH 분획물에서 활성이 나타났으며, 이와 같은 결과를 바탕으로 활성 성분을 확인하기 위해 n-Hex 및 EtOAc 분획물에 대해 MPLC, VLC 및 Sephadex LH-20 컬럼 크로마토그래피를 수행하여 4 개의 화합물을 분리하였다.
5% agar) 위에 붓는다. 배지가 굳으면 시료 용액을 포함하는 직경 8 mm paper disc를 올린 후, S. epidermidis는 37 ℃에서 24 h동안 배양하고, C. acnes는 37 ℃에서 48 h 동안 혐기 배양한 후, 형성된 원형 발육 저지환의 크기를 측정하였다. 대조군으로는 erythromycin을 사용하였다.
항염 및 항균 활성이 우수한 등수국 잎 n-Hex 및 EtOAc 분획물에 대해 VLC, MPLC 및 Sephadex LH-20 컬럼 크로마토그래피를 수행하여 4개의 화합물을 분리하였다. 분리된 화합물은 ¹H 및 ¹³C NMR을 이용하여 화합물의 구조를 확인하였다. 화합물 1은 ¹³C NMR 스펙트럼에서 20개의 탄소 피크가 관찰되었으며, δ _H 5.
5% phosphoric acid) 100 μL를 혼합하여 96 well plate에서 10 min 동안 반응 시킨 후 540 nm에서 흡광도를 측정 하였다. 생성된 NO의 양은 Griess 시약을 이용하여 세포배양액 중에 존재하는 NO₂^-의 형태로 측정하였고 sodium nitrite (NaNO₂)를 standard로 사용하여 정량하였다.
이후 500 μg/mL의 농도로 MTT (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide)를 첨가하여 37 ℃에서 3 -4 h 동안 반응시킨 후, MTT 용액을 제거하였다. 여기에 DMSO를 가하여 살아있는 세포와 반응하여 생긴 formazan 침전물을 용해시키고 570 nm에서 흡광도를 측정하여 세포 생존률(%)을 계산하였다.
이후 세포배양 상등액의 사이토카인 생성 함량을 sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) kit를 이용하여 정량하였으며 , TNF-α ELISA kit (Invitrogen, USA), IL-1β ELISA kit (R&D Systems, USA), IL-6 ELISA kit (Invitrogen, USA)를 사용하였다.
최소억제농도(MIC, minimum inhibitory concentration)는 미생물의 성장을 막는 항생물질의 최소농도로, 액체배지희석법(broth dilution method)을 변형하여 실험하였다. 96 well plate에 two-fold-dilution법으로 시료의 농도를 두 배씩 묽히면서 시료를 포함하는 배지를 100 μL 넣어준 후, 균 현탁액의 농도를 2 × 10⁵ CFU/mL가 되도록 조절하여 100 μL 씩 넣어준다.
0 g을 70% 에탄올 24 L에 침적하여 실온에서 24 h 동안 침출시켰다. 침출시킨 시료를 감압 흡입여과기를 이용 하여 여액만 취하였으며, 이와 같은 방법으로 분리한 잔사에 대하여 동일한 조건으로 2 회 더 반복 실시하였다. 여과하여 얻어진 여액은 40 ℃ 수욕상에서 감압 농축하여 추출물 38.
항염 및 항균 활성이 우수한 등수국 잎 n-Hex 및 EtOAc 분획물에 대해 VLC, MPLC 및 Sephadex LH-20 컬럼 크로마토그래피를 수행하여 4개의 화합물을 분리하였다. 분리된 화합물은 ¹H 및 ¹³C NMR을 이용하여 화합물의 구조를 확인하였다.
화합물 2는 13C NMR 스펙트럼에서 30개의 탄소 피크와 1H NMR 스펙트럼에서 6개의 methyl group을 포함하는 넓은 범위의 aliphatic signal을 바탕으로 triterpene으로 예상하였으며, δ C 69.0, 84.3의 피크를 통해전기음성도가 큰 산소에 인접한 위치의 2개의 sp3 혼성 탄소 등을 예상하였고, 문헌[17]을 통해 corosolic acid로 확인 되었다.

대상 데이터

Murine macrophage cell line인 RAW 264.7 cell은 American type cell culture (ATCC, USA)로부터 분양받아 100 U/mL penicillin, 100 μg/mL streptomycin 및 10% fetal bovine serum (FBS, GIBCO Inc., USA)이 함유된 Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM GIBCO Inc. USA) 배지를 사용하여 37 ℃, 5% CO2 항온기에서 배양하였으며, 2 – 3 일에 한 번씩 계대 배양하였다.
Medium pressur liquid chromatography (MPLC, Biotage, Sweden)에는 KP-C18-HS (Biotage, Sweden) 컬럼을 사용하였다. 구조분석을 위한 nuclear magnetic resonance (NMR)는 JNM-ECX 400 (FT-NMR system, JEOL, Japan)을 이용하였으며, NMR 측정 용매는 CIL 사의 NMR 전용 용매인 CDCl₃ 및 CD₃OD을 사용하였다.
acnes는 37 ℃에서 48 h 동안 혐기 배양한 후, 형성된 원형 발육 저지환의 크기를 측정하였다. 대조군으로는 erythromycin을 사용하였다.
시료의 추출, 용매 분획 및 분리에 사용된 용매들은 Merck 및 OCI 제품을 사용하였다. Vacuum liquid chromatography (VLC)에는 silica gel (0.
실험에 사용된 등수국 잎(시료번호: 487)은 2018년 1월 제주생물자원(주) (Korea)에서 구입하였으며, 시료는 동결건조 및 분쇄하여 사용하였다. 건조 및 분쇄된 등수국 잎 120.
이동상은 0.2% acetic acid가 함유된 증류수(용매 A)와 acetonitrile (용매 B)을 사용하였으며 유속은 1 mL/min, 주입량은 10 μL로 하였고 검출기는 UV detector (202 nm)를 사용하였다.
45 μm PTFE syringe filter를 이용하여 여과한 후, C₁₈ 컬럼에 주입하였다. 이동상은 증류수(용매 A)와 메탄올(용매 B)을 사용하였으며, 유속은 15 mL/min으로 하였다. 용출조건은 gradient mode로 100 min 동안 용매 B를 10 – 50%의 비율로 변화시킨 후, 10 min 동안 100% 용매 B를 용출시켜 총 48 개의 fraction을 얻었다(Fr.
표피포도상구균인 S. epidermidis (CCARM 3709, 3710, 3711)와 여드름균인 C. acnes (CCARM 0081, 9009, 9010)를 항생제내성균주은행(Culture Collection of Antimicrobial Resistant Microbes)으로부터 분양 받아 사용하였다. S.

이론/모형

petiolaris extract and solvent fractions for 24 h. NO production was determined by the Griess reagent method. Cell viability was determined after 24 h culture of cells stimulated with LPS (1 μg/mL) in the presence of H.
TNF-α, IL-1β and IL-6 produced and released into the culture medium was assayed using the ELISA method.
시료의 항균 활성을 측정하기 위해 한천확산법으로 clear zone의 크기를 확인하였다. 각 균주는 0.

성능/효과

이를 바탕으로 추가적인 항염 기전 연구를 진행하였으며, ELISA를 이용하여 등수국 잎 n-Hex 분획물은 TNF-α 및 IL-1β의 생성을 감소시키고, EtOAc 분획물은 IL-1β 및 IL-6의 생성을 감소시키는 효과가 있음을 확인하였다. Wesgtern blot 분석법을 이용하여 iNOS 단백질의 발현량을 확인한 결과, 등수국 잎 n-Hex 및 EtOAc 분획물은 iNOS 단백질의 발현을 농도 의존적으로 억제시키는 활성이 있었다.
그 결과, 등수국 잎 n-Hex 분획물은 TNF-α 및 IL-1β의 생성을 농도 의존적으로 감소시키는 효과가 있음을 확인하였다.
acnes를 이용하여 한천확산법으로 clear zone의 크기를 확인하였다. 그 결과, 등수국 잎 추출물 및 n-Hex, EtOAc, n-BuOH 분획물에서 항균 활성이 나타났으며(Table 1), 추가적으로 최소억제농도(MIC) 및 최소사멸농도(MBC) 값을 확인하였다(Table 2).
등수국 잎 70% 에탄올 추출물을 극성에 따라 분획하여 n-Hex, EtOAc, n-BuOH, H₂O 분획물을 얻었으며, 항염 활성 실험 결과 n-Hex 및 EtOAc 분획물이 NO 생성을 농도 의존적으로 저해시키는 효과가 우수함을 확인하였다. 이를 바탕으로 추가적인 항염 기전 연구를 진행하였으며, ELISA를 이용하여 등수국 잎 n-Hex 분획물은 TNF-α 및 IL-1β의 생성을 감소시키고, EtOAc 분획물은 IL-1β 및 IL-6의 생성을 감소시키는 효과가 있음을 확인하였다.
등수국 잎으로부터 분리된 화합물에 대한 항염 활성 실험 결과, 화합물 1 및 3이 100 μM 이하의 농도에서 세포에 대한 독성 없이 농도 의존적으로 NO의 생성을 저해시키는 효과가 우수함을 확인하였다(Figure 6).
또한 HPLC를 이용하여 등수국 잎에서 분리된 화합물 1 – 4 의 함량 분석 결과 phytol (1)의 함량이 27.8 mg/g으로 함유량이 가장 많음을 확인하였다.
또한 등수국 잎 EtOAc 분획물은 IL-1β 및 IL-6의 생성을 농도의존적으로 저해시키는 것을 확인하였다(Figure 3).
분리된 화합물에 대한 항염 활성 실험 결과 화합물 1, 3 이 NO의 생성을 농도 의존적으로 억제시키는 효과가 있음을 확인하였으며, 문헌을 통해 화합물 1, 3의 항염 효능 및 화합물 2, 3의 항균 효능이 알려져 있음을 확인하였다. 또한 HPLC를 이용하여 등수국 잎에서 분리된 화합물 1 – 4 의 함량 분석 결과 phytol (1)의 함량이 27.
분리된 화합물은 1H 및 13C NMR을 이용해 화학구조를 동정하였으며, phytol (1), corosolic acid (2), asiatic acid (3), 1-O-p-coumaroyl-β-D-glucopyranoside (4)로 확인되었다.
우선 추출물 및 용매 분획물에 대하여 100 μg/mL의 농도에서 실험을 진행하였으며 그 결과, n-Hex 및 EtOAc 분획물에서 NO 생성 억제 활성이 우수했으나, n-Hex 분획물은 세포독성이 나타났다(Figure 1).
이를 바탕으로 추가적인 항염 기전 연구를 진행하였으며, ELISA를 이용하여 등수국 잎 n-Hex 분획물은 TNF-α 및 IL-1β의 생성을 감소시키고, EtOAc 분획물은 IL-1β 및 IL-6의 생성을 감소시키는 효과가 있음을 확인하였다.
추가적으로 n-Hex 분획물은 50 μg/mL 이하의 농도에서, EtOAc 분획물은 100 μg/mL 이하의 농도에서 농도별 실험을 진행한 결과, 등수국 잎 n-Hex 및 EtOAc 분획물은 농도 의존적으로 NO의 생성을 억제하는 것을 확인하였다(Figure 2).

후속연구

이상의 연구 결과를 바탕으로 등수국 잎 추출물은 항염 및 항균 효과를 갖는 천연 기능성 화장품 소재로의 개발이 가능할 것이라 사료된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	염증반응이란 무엇인가?	염증반응은 생체 내 항원침입이나 조직손상과 같은 응급상황이 발생하였을 때 림프구를 포함한 면역세포들에 의해 수행되는 일련의 생체보호반응이다. 그러나 염증반응이 과도하거나 지속적으로 나타나게 되면 주변조직의 손상과 더불어 생체기능에 이상을 가져와 질병의 상태를 악화시키거나 새로운 질병이 생기게 된다[1].
	염증반응에 관여하는 세포는 무엇인가?	그러나 염증반응이 과도하거나 지속적으로 나타나게 되면 주변조직의 손상과 더불어 생체기능에 이상을 가져와 질병의 상태를 악화시키거나 새로운 질병이 생기게 된다[1]. 염증반응에 관여하는 세포인 대식세포(macrophage)는 체내에서 선천적으로 면역반응을 담당하는 세포로 알려져 있으며 동물 체내 모든 조직에 분포한다[2]. 박테리아와 같은 세균이 체내로 침투하면 세균 세포막 성분인 lipopolysaccharide (LPS) 등에 의해 대식세포가 자극을 받아 활성화된다.
	세균이 체내로 침투하면 활성화된 대식세포는 어떤 물질을 분비하는가?	박테리아와 같은 세균이 체내로 침투하면 세균 세포막 성분인 lipopolysaccharide (LPS) 등에 의해 대식세포가 자극을 받아 활성화된다. 활성화된 대식세포는 nitric oxide (NO) prostagalandin E2 (PGE2), tumor necrosis factor-α (TNF-α) 등과 같은 염증매개 물질들을 분비한다[3].

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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