$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

효율적인 배추 무름병 저항성 검정법 개발
Development of an Efficient Bioassay Method for Testing Resistance to Bacterial Soft Rot of Chinese Cabbage 원문보기

Research in plant disease = 식물병연구, v.26 no.3, 2020년, pp.159 - 169  

이수민 (한국화학연구원 친환경신물질연구센터) ,  최용호 (한국화학연구원 친환경신물질연구센터) ,  김헌 (한국화학연구원 친환경신물질연구센터) ,  김흥태 (충북대학교 식물의학과) ,  최경자 (한국화학연구원 친환경신물질연구센터)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

Pactobacterium carotovorum subsp. carotovorum (Pcc)에 의한 무름병은 전세계적으로 문제가 되고 있고 특히 온난 다습한 지역에서 문제가 심각하다. 본 연구는 Pcc에 의해 발생하는 배추 무름병에 대한 효율적인 저항성 검정법을 확립하기 위하여 실험하였다. 시판 배추 품종 65개의 Pcc KACC 10225에 대한 저항성 정도를 조사하고, 추후 실험을 위해 저항성에 차이를 보이는 3개 품종을 선발하였다. 이들 3개 품종의 접종하는 배추의 생육 시기, 접종원 농도, 접종 후 재배 온도 등의 발병 조건에 따른 무름병 발생을 조사하였다. 이들 실험의 결과로부터 배추의 무름병에 대한 저항성을 검정하기 위해서는, 배추 종자를 파종하고 온실(25±5℃)에서 21일 동안 재배한 유묘에 Pcc 균주의 세균현탁액(1×107 cfu/ml)을 식물체 기부에 5 ml씩 관주하여 접종하고, 접종한 식물은 25℃ 습실상에 24시간 동안 배양한 후에 25℃, 상대습도 80%의 생육상으로 이동하여 재배하는 것을 제안하고자 한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum (Pcc) causes bacterial soft rot on a wide range of crops worldwide, especially in countries with warm and humid climates. This study was conducted to establish an efficient screening method for resistant cultivars of Chinese cabbage to bacterial soft rot...

주제어

표/그림 (7)

AI 본문요약
AI-Helper 아이콘 AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

  • carotovorum (Pcc)에 의한 무름병은 전세계적으로 문제가 되고 있고 특히 온난 다습한 지역에서 문제가 심각하다. 본 연구는 Pcc에 의해 발생하는 배추 무름병에 대한 효율적인 저항성 검정법을 확립하기 위하여 실험하였다. 시판 배추 품종 65개의 Pcc KACC 10225에 대한 저항성 정도를 조사하고, 추후 실험을 위해 저항성에 차이를 보이는 3개 품종을 선발하였다.
  • 본 연구에서는 효율적인 배추 무름병 저항성 검정법을 확립하기 위해, 시판 품종 65개의 배추 품종들의 저항성 정도를 조사하고, 이 결과로부터 저항성 정도가 다른 배추 품종 3개를 선발하여 접종하는 배추 유묘의 생육 시기, 접종원 농도, 접종 후 배추의 재배 온도에 따른 무름병 발생을 조사하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (39)

  1. Aleck, J. R. and Harrison, M. D. 1978. The influence of inoculum density and environment on the development of potato blackleg. Am. Potato J. 55: 479-494. 

  2. Barksdale, T. H., Papavizas, G. C. and Johnston, S. A. 1984. Resistance to foliar blight and crown rot of pepper caused by Phytophthora capsici. Plant Dis. 68: 506-509. 

  3. Chung, E.-K., Zhang, X.-Z., Choi, B.-R., Lee, E.-J., Yeoung, Y.-R. and Kim, B.-S. 2003. Screening of disease resistance of Chinese cabbage cultivars and lines to bacterial soft rot. Res. Plant Dis. 9: 39-41. (In Korean) 

  4. Collmer, A. and Keen, N. T. 1986. The role of pectic enzymes in plant pathogenesis. Ann. Rev. Phytopathol. 24: 383-409. 

  5. Colyer, P. D. and Mount, M. S. 1984. Bacterization of potatoes with Pseudomonas putida and its influence on postharvest soft rot diseases. Plant Dis. 68: 703-706. 

  6. De Boer, S. H. and Kelman, A. 1978. Influence of oxygen concentration and storage factors on susceptibility of potato tubers to bacterial soft rot (Erwinia carotovora). Potato Res. 21: 65-79. 

  7. Doullah, M. A. U., Meah, M. B. and Okazaki, K. 2006. Development of an effective screening method for partial resistance to Alternaria brassicicola (dark leaf spot) in Brassica rapa. Eur. J. Plant Pathol. 116: 33-43. 

  8. Eriksson, A. R. B., Andersson, R. A., Pirhonen, M. and Palva, E. T. 1998. Two-component regulators involved in the global control of virulence in Erwinia carotovora subsp. carotovora. Mol. Plant-Microbe Interact. 11: 743-752. 

  9. Fox, R. T. V., Manners, J. G. and Myers, A. 1971. Ultrastructure of entry and spread of Erwinia carotovora var. atroseptica into potato tubers. Potato Res. 14: 61-73. 

  10. Fritz, V. A. and Honma, S. 1987. The effect of raised beds, population densities, and planting date on the incidence of bacterial in Chinese cabbage. J. Am. Soc. Hortic. Sci. 112: 41-44. 

  11. Geels, F. P. and Schippers, B. 1983. Selection of antagonistic fluorescent Pseudomonas spp. and their root colonization and persistence following treatment of seed potatoes. J. Phytopathol. 108: 193-206. 

  12. Hwang, S. M., Jang K. S., Choi, Y. H., Kim, H. and Choi, G. J. 2017. Development of an efficient bioassay method to evaluate resistance of chili pepper cultivars to Ralstonia solanacearum. Res. Plant Dis. 23: 334-347. (In Korean) 

  13. Jee, S., Malhotra, S., Roh, E., Jung, K., Lee, D., Choi, J. et al. 2012. Isolation of bacteriophages which can infect Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum. Res. Plant Dis. 18: 225-230. (In Korean) 

  14. Jeger, M. J. and Viljanen-Rollinson, S. L. H. 2001. The use of the area under the disease-progress curve (AUDPC) to assess quantitative disease resistance in crop cultivars. Theor. Appl. Genet. 102: 32-40. 

  15. Jo, E. J., Jang, K. S., Choi, Y. H., Ahn, K. G. and Choi, G. J. 2016. Resistance of cabbage plants to isolates of Plasmodiophora brassicae. Korean J. Hortic. Sci. Technol. 34: 442-452. (In Korean) 

  16. Jo, S.-J. Shim, S.-A., Jang, K. S., Choi, Y. H., Kim, J.-C. and Choi, G. J. 2014. Resistance of chili pepper cultivars to isolates of Phytophthora capsici. Korean J. Hortic. Sci. Technol. 32: 66-76. (In Korean) 

  17. Jones, S., Yu, B., Bainton, N. J., Birdsall, M., Bycroft, B. W., Chhabra, S. R. et al. 1993. The lux autoinducer regulates the production of exoenzyme virulence determinants in Erwinia carotovora and Pseudomonas aeruginosa. EMBO J. 12: 2477-2482. 

  18. Kotoujansky, A. 1987. Molecular genetics of pathogenesis by softrot Erwinias. Annu. Rev. Phytopathol. 25: 405-430. 

  19. Kim, H., Jo, E. J., Choi, Y. H., Jang, K. S. and Choi, G. J. 2016. Pathotype classification of Plasmodiophora brassicae isolates using clubroot-resistant cultivar of Chinese cabbage. Plant Pathol. J. 32: 423-430. 

  20. Kim, Y. J., Hwang, B. K. and Park, K. W. 1989. Expression of agerelated resistance in pepper plants infected with Phytophthora capsici. Plant Dis. 73: 745-747. 

  21. Korean Society of Plant Pathology. 2009. Vegetables. In: List of Plant Disease in Korea. 5th ed., eds. by W.-G. Kim and H. M. Koo, pp. 99-103. Korean Society of Plant Pathology, Suwon, Korea. (In Korean) 

  22. Lee, J. H., Lee, J. and Oh, D.-G. 2018a. Resistance of pepper cultivars to Ralstonia solanacearum isolates from major cultivated areas of chili peppers in Korea. Hortic. Sci. Technol. 36: 569-576. (In Korean) 

  23. Lee, S. M., Choi, Y. H., Jang, K. S., Kim H., Lee, S.-W. and Choi, G. J. 2018b. Development of an efficient bioassay method for testing resistance to bacterial soft rot of radish. Res. Plant Dis. 24: 193-201. (In Korean) 

  24. Lee, W. J., Lee, J. H., Jang, K. S., Choi, Y. H., Kim, H. T. and Choi, G. J. 2015. Development of efficient screening methods for melon plants resistant to Fusarium oxysporum f. sp. melonis. Korean J. Hortic. Sci. Technol. 33: 70-82. (In Korean) 

  25. Lefebvre, V. and Palloix, A. 1996. Both epistatic and additive effects of QTLs are involved in polygenic induced resistance to disease: a case study, the interaction pepper-Phytophthora capsici Leonian. Theor. Appl. Genet. 93: 503-511. 

  26. Lefebvre, V., Pflieger, S., Thabuis, A., Caranta, C., Blattes, A., Chauvet, J.-C. et al. 2002. Towards the saturation the pepper linkage map by alignment of three intraspecific maps including knownfunction genes. Genome 45: 839-845. 

  27. Madden, L. V., Hughes, G. and van den Bosch, F. 2007. The Study of Plant Disease Epidemics. APS Press, St. Paul, MN, USA. 421 pp. 

  28. Peombelon, M. C. M., Gullings-Handley, J. and Kelman, A. 1979. Population dynamics of Erwinia carotovora and pectolytic Clostridium spp. in relation to decay of potatoes. Phytopathology 69: 167-173. 

  29. Pirhonen, M., Flego, D., Heikinheimo, R. and Palva, E. T. 1993. A small diffusible signal molecules is responsible for the global control of virulence and exoenzyme production in the plant pathogen Erwinia carotovora. EMBO J. 12: 2467-2476. 

  30. Raju, M. R. B., Pal, V. and Jalali, I. 2006. Antagonistic rhizospheric bacteria for management of bacterial soft rot of radish seed crop. Ann. Plant Prot. Sci. 14: 393-395. 

  31. Raju, M. R. B., Pal, V. and Jalali, I. 2008. Inoculation method of Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum and factors influencing development of bacterial soft rot in radish. J. Mycol. Plant Pathol. 38: 311-315. 

  32. Ren, J., Petzoldt, R. and Dickson, M. H. 2001. Screening and identification of resistance to bacterial soft rot in Brassica rapa. Euphytica 118: 271-280. 

  33. Rimmer, S. R. 2007. Bacterial soft rot. In: Compendium of Brassica Disease, eds. by S. R. Rimmer, V. I. Shattuck and L. Buchwaldt, pp. 59-60. APS Press, St. Paul, MN, USA. 

  34. Risser, G., Banihashemi, Z. and Davis, D. W. 1976. A proposed nomenclature of Fusarium oxysporum f. sp. melonis races and resistance genes in Cucumis melo. Phytopathology 66: 1105-1106. 

  35. Taylor, J. D., Conway, J., Roberts, S. J., Astley, D. and Vincente, J. G. 2002. Sources and origin of resistance to Xanthomonas campestris pv. campestris in Brassica genomes. Phytopathology 92: 105-111. 

  36. Thabuis, A., Lefebvre, V., Bernard, G., Daubeze, A. M., Phaly, T., Pochard, E. et al. 2004. Phenotypic and molecular evaluation of a recurrent selection program for a polygenic resistance to Phytophthora capsici in pepper. Theor. Appl. Genet. 109: 342-351. 

  37. Thabuis, A., Palloix, A., Pflieger, S., Daubeze, A.-M., Caranta, C. and Lefebvre, V. 2003. Comparative mapping of Phytophthora resistance loci in pepper germplasm: evidence for conserved resistance loci across Solanaceae and for a large genetic diversity. Theor. Appl. Genet. 106: 1473-1485. 

  38. Williams, P. H. 1981. Workshop on Screening Crucifers for Multiple Disease Resistance. University of Wisconsin, Medison, WI, USA. 105 pp. 

  39. Zhao, Y., Li, P., Huang, K., Wang, Y., Hu, H. and Sun, Y. 2013. Control of postharvest soft rot caused by Erwinia carotovora of vegetables by a strain of Bacillus amyloliquefaciens and its potential mode of action. World J. Microbiol. Biotechnol. 29: 411-420. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로