관주 접종법을 이용한 효율적인 배추 뿌리혹병 저항성 검정법 Convenient Screening Method of Chinese Cabbage for Resistance to Plasmodiophora brassicae Using Soil-Drenching Inoculation원문보기
Plasmodiophora brassicae에 의한 배추 뿌리혹병은 전 세계적으로 발생하여 큰 피해를 주고 있다. 본 연구에서는 관주 접종을 이용한 효율적인 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 확립하기 위하여, 레이스 9인 GN-1 균주를 사용하여 토양 종류, 접종원 농도, 배추 생육시기, 접종 후 배양 기간 등의 발병 조건에 따른 뿌리혹병 발생을 조사하였다. 혼합토양(원예용 상토:밭 토양=1:1, v/v)과 달리, 원예용 상토에서는 P. brassicae 접종농도가 증가함에 따라 배추 뿌리혹병 발생도 증가하였다. 접종원 농도는 폿트 당 $4.0{\times}10^8$개의 포자로 접종하였을 때 그리고 접종을 위한 배추는 파종 후 10일 유묘가 적합하였다. 안정적인 발병을 위해서, 접종한 배추 유묘는 3일 동안 $20^{\circ}C$ 생육상에서 하루에 12시간 광을 처리하며 배양한 후 온실($25{\pm}5^{\circ}C$)에서 5주 동안 재배한 후에 병조사하는 것이 요구되었다. 확립한 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 이용하여, 시판 중인 뿌리혹병 저항성 품종 25종과 감수성 품종3종의 P. brassicae GN-1 균주에 대한 저항성 정도를 실험한 결과, 모든 저항성 품종들은 뿌리혹병에 대하여 뚜렷한 저항성을 나타내었고, 감수성 품종들은 발병도 3.5 이상의 높은 감수성을 보였다. 따라서 이 방법은 배추의 뿌리혹병 저항성을 검정하기 위한 효율적인 검정법임을 알 수 있었다.
Plasmodiophora brassicae에 의한 배추 뿌리혹병은 전 세계적으로 발생하여 큰 피해를 주고 있다. 본 연구에서는 관주 접종을 이용한 효율적인 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 확립하기 위하여, 레이스 9인 GN-1 균주를 사용하여 토양 종류, 접종원 농도, 배추 생육시기, 접종 후 배양 기간 등의 발병 조건에 따른 뿌리혹병 발생을 조사하였다. 혼합토양(원예용 상토:밭 토양=1:1, v/v)과 달리, 원예용 상토에서는 P. brassicae 접종농도가 증가함에 따라 배추 뿌리혹병 발생도 증가하였다. 접종원 농도는 폿트 당 $4.0{\times}10^8$개의 포자로 접종하였을 때 그리고 접종을 위한 배추는 파종 후 10일 유묘가 적합하였다. 안정적인 발병을 위해서, 접종한 배추 유묘는 3일 동안 $20^{\circ}C$ 생육상에서 하루에 12시간 광을 처리하며 배양한 후 온실($25{\pm}5^{\circ}C$)에서 5주 동안 재배한 후에 병조사하는 것이 요구되었다. 확립한 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 이용하여, 시판 중인 뿌리혹병 저항성 품종 25종과 감수성 품종3종의 P. brassicae GN-1 균주에 대한 저항성 정도를 실험한 결과, 모든 저항성 품종들은 뿌리혹병에 대하여 뚜렷한 저항성을 나타내었고, 감수성 품종들은 발병도 3.5 이상의 높은 감수성을 보였다. 따라서 이 방법은 배추의 뿌리혹병 저항성을 검정하기 위한 효율적인 검정법임을 알 수 있었다.
Clubroot caused by Plasmodiophora brassicae is a widespread disease that causes serious problems in many brassica growing areas. To establish more simple and reliable clubroot screening method of Chinese cabbage to P. brassicae using soil-drenching inoculation, the development of clubroot on Chinese...
Clubroot caused by Plasmodiophora brassicae is a widespread disease that causes serious problems in many brassica growing areas. To establish more simple and reliable clubroot screening method of Chinese cabbage to P. brassicae using soil-drenching inoculation, the development of clubroot on Chinese cabbage according to several conditions such as soil type, inoculum concentration of P. brassicae GN-1 (race 9), plant growth stage and incubation period was studied. In a commercial horticulture nursery media soil (CNS), disease severity of the seedling according to inoculum concentration increased in a dose-dependent manner, but did not in mixture of CNS and upland soil (1:1, v/v). To facilitate and acquire precise result of resistance screening of Chinese cabbage to clubroot, 10-day-old seedlings should be inoculated by drenching the spore suspension of P. brassicae to give inoculum density of $4.0{\times}10^8$ spores/pot. To develop the disease, the inoculated seedlings were incubated in a growth chamber at $20^{\circ}C$ for 3 days, and then cultivated in a greenhouse ($25{\pm}5^{\circ}C$) for five weeks. Under the optimum conditions, 25 clubroot-resistant (CR) and 3 clubroot-susceptible (CS) cultivars were tested for resistance to P. brassicae. All CR cultivars showed very clear resistance response, on the other hand all CS cultivars severly infected with the pathogen. The results suggest that this method is efficient screening method of Chinese cabbage for resistance to clubroot disease.
Clubroot caused by Plasmodiophora brassicae is a widespread disease that causes serious problems in many brassica growing areas. To establish more simple and reliable clubroot screening method of Chinese cabbage to P. brassicae using soil-drenching inoculation, the development of clubroot on Chinese cabbage according to several conditions such as soil type, inoculum concentration of P. brassicae GN-1 (race 9), plant growth stage and incubation period was studied. In a commercial horticulture nursery media soil (CNS), disease severity of the seedling according to inoculum concentration increased in a dose-dependent manner, but did not in mixture of CNS and upland soil (1:1, v/v). To facilitate and acquire precise result of resistance screening of Chinese cabbage to clubroot, 10-day-old seedlings should be inoculated by drenching the spore suspension of P. brassicae to give inoculum density of $4.0{\times}10^8$ spores/pot. To develop the disease, the inoculated seedlings were incubated in a growth chamber at $20^{\circ}C$ for 3 days, and then cultivated in a greenhouse ($25{\pm}5^{\circ}C$) for five weeks. Under the optimum conditions, 25 clubroot-resistant (CR) and 3 clubroot-susceptible (CS) cultivars were tested for resistance to P. brassicae. All CR cultivars showed very clear resistance response, on the other hand all CS cultivars severly infected with the pathogen. The results suggest that this method is efficient screening method of Chinese cabbage for resistance to clubroot disease.
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문제 정의
하지만 병원균의 휴면포자 현탁액을 토양에 관주처리 하여 접종하는 관주 접종법은 편리한 접종 방법이나, 이를 이용한 배추 뿌리혹병 저항성 검정에 관해서는 보고된 바 없다. 따라서 본 연구에서는 토양 관주 접종법을 이용하여 여러 발병 조건에 따른 배추 뿌리혹병 발생을 실험하여 효율적인 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 확립하였다. 또한 확립한 검정법을 이용하여 시판 배추품종 28종의 뿌리혹병 저항성 정도를 조사하였다.
Plasmodiophora brassicae에 의한 배추 뿌리혹병은 전세계적으로 발생하여 큰 피해를 주고 있다. 본 연구에서는 관주 접종을 이용한 효율적인 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 확립하기 위하여, 레이스 9인 GN-1 균주를 사용하여 토양 종류, 접종원 농도, 배추 생육시기, 접종 후 배양 기간 등의 발병 조건에 따른 뿌리혹병 발생을 조사하였다. 혼합토양(원예용 상토:밭 토양=1:1, v/v)과 달리, 원예용 상토에서는 P.
제안 방법
접종하기 직전에 보관 중인 GN-1 균주를 꺼내어 증류수로 수차례 세척하여 이물질을 깨끗이 제거한 후 멸균수를 첨가하여 Warning blender로 마쇄하였다. 그리고 식물조직을 제거하기 위하여 2겹의 가제로 여과하였으며, 준비한 포자현탁액은 광학현미경 하(300배)에서 hemat℃ytometer를 이용하여 포자수를 측정하였다. 멸균수로 희석하여 포자현탁액의 최종농도를 8 × 107 spores/ml로 조정하여 접종원으로 사용하였다.
그리고 토양의 종류에 따른 뿌리혹병 발생 실험에서는 원예용상토 5호와 밭토양을 동량으로 섞은 혼합 토양과 원예용상토 5호 등 두 종류 토양에 배추 종자를 파종하여 재배하였으며, P. brassicae GN-1 균주의 레이스 검정을 위해서는 원예용상토 5호를 사용하여 양배추 2종 품종(‘Jersey Queen’과 ‘Badger Shipper’)과 Rutabaga 2종 품종(‘Laurentian’과 ‘Wilhelmsburger’)의 종자를 폿트 당 1립씩 파종하여 온실에서 14일간 재배한 후에 접종하였다.
따라서 본 연구에서는 토양 관주 접종법을 이용하여 여러 발병 조건에 따른 배추 뿌리혹병 발생을 실험하여 효율적인 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 확립하였다. 또한 확립한 검정법을 이용하여 시판 배추품종 28종의 뿌리혹병 저항성 정도를 조사하였다.
생육시기에 따른 발병 실험에서는 원예용상토 5호에 배추 종자를 파종하고 각각 4, 7, 10, 14일 동안 온실에서 배양한 배추 유묘를 사용하여 실험하였다. 그리고 토양의 종류에 따른 뿌리혹병 발생 실험에서는 원예용상토 5호와 밭토양을 동량으로 섞은 혼합 토양과 원예용상토 5호 등 두 종류 토양에 배추 종자를 파종하여 재배하였으며, P.
온실에서 재배한 배추 유묘에 포자 현탁액을 폿트 당 5 ml씩 관주하여 접종하였으며, 접종한 유묘는 20℃ 항온항습실에서 하루에 12시간 광을 처리하며 3일 동안 배양한 후 온실(25 ± 5℃)로 이동하여 수분을 공급하며 재배하였다.
온실에서 재배한 배추 유묘에 포자 현탁액을 폿트 당 5 ml씩 관주하여 접종하였으며, 접종한 유묘는 20℃ 항온항습실에서 하루에 12시간 광을 처리하며 3일 동안 배양한 후 온실(25 ± 5℃)로 이동하여 수분을 공급하며 재배하였다. 접종 5주 후에 뿌리를 수확하여 뿌리혹 발생정도에 따라 병을 조사하였다. 조사기준은 0 = 뿌리혹병 발생이 없음, 1 = 측근에 뿌리혹이 착생되어 비대정도가 적고 서로 독립하여 존재, 2 = 측근에 뿌리혹이 착생되며 비대정도가 비교적 큼, 3 = 주근에 뿌리혹이 착생되며 서로 접합되고 비대정도가 큼, 4 = 주근에 뿌리혹이 착생되며 서로 접합되고 비대정도가 매우 큼 등의 5단계로 하였다(Kuginuki 등, 1999; Suwabe 등, 2003).
접종 후 배양기간에 따른 발병 정도를 조사하기 위하여 원예용 상토에서 4, 7, 10, 14일 동안 재배한 배추유묘에 여러 가지 포자농도로 접종하고 4주와 5주 후에 발병도를 조사하였다(Fig. 3). 접종 후 5주 동안 배양한 배추의 뿌리혹병 발병도의 평균값은 3.
2009년에 강원도 강릉시 왕산면 대기리의 배추 재배포장에서 전형적인 병징을 나타내는 배추뿌리 이병조직을 채집하였다. 뿌리혹병균의 순도를 높이기 위하여 채집한 이병조직을 온실에서 재배한 본엽 2엽기 배추에 접종하여 20℃ 항온항습실에서 1주일 동안 배양한 후 한국화학연구원 밭포장에 정식하여 60일 동안 재배하여 증식한 균주를 P.
Voorrips 등(1996)도 단일포자로부터 증식한 균주는 포장균주에 비해 병원성이 훨씬 낮다고 하였다. 따라서 뿌리혹병 저항성 검정법 확립을 위한 본 연구의 실험에 단포자를 분리하여 증식한 뿌리혹병균 균주를 사용하지 않고, 강릉 배추포장에서 채집한 뿌리혹병이병조직을 다시 배추에 접종하여 무병토에 정식하여 증식한 균주인 GN-1 균주를 실험에 사용하였다.
2009년에 강원도 강릉시 왕산면 대기리의 배추 재배포장에서 전형적인 병징을 나타내는 배추뿌리 이병조직을 채집하였다. 뿌리혹병균의 순도를 높이기 위하여 채집한 이병조직을 온실에서 재배한 본엽 2엽기 배추에 접종하여 20℃ 항온항습실에서 1주일 동안 배양한 후 한국화학연구원 밭포장에 정식하여 60일 동안 재배하여 증식한 균주를 P. brassicae GN-1 균주로 명명하고 실험에 사용하였다.
시판되고 있는 배추 품종에 대한 뿌리혹병 저항성 검정 실험은 농우바이오, 동부하이텍, 몬산토코리아, 사타카코리아, 신젠타코리아, 제일종묘, 코레곤종묘, 현대종묘 등의 종자회사로부터 뿌리혹병 저항성 품종으로 판매하고 있는 25종 품종(‘대통배추’, ‘맞춤배추’, ‘부활배추’, ‘불암플러스배추’, ‘아름찬배추’, ‘올품배추’, ‘챔피온배추’, ‘추월배추’, ‘CR-고냉지노랑’, ‘CR-농심배추’, ‘CR-맛배추’, ‘CR-맛짱’, ‘CR-명가배추’, ‘CR-명품’, ‘CR-안심배추’, ‘CR-알찬’, ‘CR-요시마사’, ‘CR-장군배추’, ‘CR-진심배추’, ‘CR-청록배추’, ‘CR키요시’, ‘CR-하계배추’, ‘CR-황금배추’, ‘CR-황록’, ‘CR황태자’)과 저항성으로 공시하고 있지 않는 3종 품종(‘강력여름배추’, ‘노랑김장배추’, ‘삼복엇갈이배추’)을 구입하여 위와 동일한 방법으로 재배하여 실험에 사용하였다.
데이터처리
Columns labeled with the same letter are not significantly different in Duncan’s multiple range test (P = 0.05).
Values in the labeled with the same letter are not significantly different in Duncan’s multiple range test (P = 0.05).
0 초과이면 감수성으로 판단하였으며, 4개 기주에서의 반응을 저항성과 감수성으로 결정한후 Williams 레이스 판별기준표에 따라 레이스를 결정하였다(Williams, 1966). 모든 실험은 10반복으로 2회 실시하였으며, SAS(SAS Institute, Inc., 1989, Cary, NC) 프로그램을 이용하여 ANOVA 분석을 하였다. 처리 평균간 비교를 위하여 Duncan's multiple range test (P=0.
처리 평균간 비교를 위하여 Duncan's multiple range test (P=0.05)를 실시하였다.
이론/모형
레이스 검정 실험에서는 평균 발병도가 1.0 이하일 때 저항성으로, 그리고 1.0 초과이면 감수성으로 판단하였으며, 4개 기주에서의 반응을 저항성과 감수성으로 결정한후 Williams 레이스 판별기준표에 따라 레이스를 결정하였다(Williams, 1966). 모든 실험은 10반복으로 2회 실시하였으며, SAS(SAS Institute, Inc.
성능/효과
P. brassicae GN-1 균주의 레이스를 규명하기 위하여 Williams 판별기주를 이용하여 실험한 결과, rutabaga (Laurentian, Wilhelmsburger)에서는 병원성을 나타내었지만, 양배추 두 품종(‘Jersey Queen’와 ‘Badger Shipper’)은 이 균주에 저항성을 나타내었다.
관주접종법을 이용하여 앞에서 선발한 최적화 조건으로 시판품종 28종 배추의 뿌리혹병 저항성 정도를 실험한 결과, 뿌리혹병에 대하여 저항성 배추품종으로 판매되고 있는 25종 품종은 실험한 GN-1 균주에 대하여 모두 저항성 반응을 나타내 었다(Table 2). 한편 감수성 품종으로 판매되고 있는 3종 품종은 모두 3.
김 등(2003)은 저항성 배추계통으로 육성된 CR계 품종은 지역이나 재배시기에 따라 이병성, 중도저항성, 저항성 등으로 각기 다르게 나타나 저항성 정도에 일관성이 없는 것으로 보고하였다. 그러나 본 연구에서는 실험한 모든 CR계 품종들이 GN-1 균주에 대하여 뚜렷한 저항성 반응을 나타내었으므로 확립한 GN-1 균주를 이용한 배추 뿌리혹병 저항성 검정법은 효율적이고 재현성이 우수한 방법이라는 것을 알 수 있었다.
brassicae GN-1 균주의 레이스를 규명하기 위하여 Williams 판별기주를 이용하여 실험한 결과, rutabaga (Laurentian, Wilhelmsburger)에서는 병원성을 나타내었지만, 양배추 두 품종(‘Jersey Queen’와 ‘Badger Shipper’)은 이 균주에 저항성을 나타내었다. 따라서 Williams 판별품종을 이용한 레이스 검정 결과에 따라 GN-1 균주는 race 9임을 알 수 있었다(Fig. 1; Williams, 1966). Cho 등(2003)도 우리나라의 배추 포장에 race 9가 널리 존재한다고 보고한 바 있다.
5 이상의 높은 감수성을 보였다. 따라서 이 방법은 배추의 뿌리혹병 저항성을 검정하기 위한 효율적인 검정법임을 알 수 있었다.
원예용 상토에서 실험한 배추는 폿트 당 1.0 × 108개 포자를 접종하였을 때에는 뿌리혹병 발병도는 2.8이었으나, 폿트 당 2.0~8.0 × 108개 포자일 때에는 모두 3.1 이상의 높은 발병도를 나타내었다.
원예용 상토와 원예용 상토와 밭 토양을 혼합한 토양에서 뿌리혹병 발생을 조사한 결과, 원예용 상토의 경우 접종원의 농도가 증가함에 따라 뿌리혹병 발생이 증가하였다(Fig. 2). 원예용 상토에서 실험한 배추는 폿트 당 1.
접종 후 4주 동안 배양하였을 때, 파종 4일 후에 접종한 배추는 접종농도가 2.0 × 108 spores/pot 이하로 접종하였을 때 발병도는 2.1이었으며, 접종농도가 4.0 × 108 spores/pot 이상일 때는 2.7 이상의 발병도를 나타내었다.
3). 접종 후 5주 동안 배양한 배추의 뿌리혹병 발병도의 평균값은 3.8로 4주간 배양한 배추의 평균값 3.2보다 증가하였다. 접종 후 4주 동안 배양하였을 때, 파종 4일 후에 접종한 배추는 접종농도가 2.
접종원 농도는 폿트 당 4.0 × 108개의 포자로 접종하였을 때 그리고 접종을 위한 배추는 파종 후 10일 유묘가 적합하였다.
0 이상의 높은 뿌리혹 발생을 보였다. 즉 배추의 파종 후 생육기간이 증가할수록 배추의 뿌리혹병 발생은 증가함을 알 수 있었다. 김 등(2000a, 2000b)은 포장에서는 배추 뿌리혹병균의 감염시기가 빠를수록 뿌리혹병의 피해정도가 심각하다고 보고하였으나, 이는 본 실험과 달리 뿌리혹병균에 감염되는 기간이 증가하기 때문에 나타난 결과로 생각된다.
4 이상의 높은 발병도를 나타내었다(Table 1). 파종 10일과 14일 후 유묘에 접종한 배추는 모든 접종원 농도에서 3.0 이상의 높은 뿌리혹 발생을 보였다. 즉 배추의 파종 후 생육기간이 증가할수록 배추의 뿌리혹병 발생은 증가함을 알 수 있었다.
파종한 후 온실에서 4일, 7일, 10일, 14일 배양한 배추 유묘에 여러 가지 농도의 뿌리혹 병균을 접종을 하여 뿌리혹병 발생을 조사한 결과, 파종 4일 후 유묘에 접종한 배추의 발병도는 접종한 모든 농도에서 2.4 이하의 낮은 발병도를 나타냈으며, 파종 7일후 유묘에 접종한 배추는 가장 낮은 농도인 1.0 × 108 spores/pot를 제외한 나머지 실험구에서는 3.4 이상의 높은 발병도를 나타내었다(Table 1).
4 이상의 높은 뿌리혹병 발생을 보였다. 하지만 접종 5주 후에 병조사를 하였을 때에는 배추의 생육 시기와 접종 농도에 관계없이 모든 실험구에서 3.3 이상의 높은 발병도를 나타내었다. 따라서 뿌리혹병 저항성 검정을 위해서는 접종 5주 후에 병조사하는 것이 바람직하다고 생각되었다.
본 연구에서는 관주 접종을 이용한 효율적인 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 확립하기 위하여, 레이스 9인 GN-1 균주를 사용하여 토양 종류, 접종원 농도, 배추 생육시기, 접종 후 배양 기간 등의 발병 조건에 따른 뿌리혹병 발생을 조사하였다. 혼합토양(원예용 상토:밭 토양=1:1, v/v)과 달리, 원예용 상토에서는 P. brassicae 접종농도가 증가함에 따라 배추 뿌리혹병 발생도 증가하였다. 접종원 농도는 폿트 당 4.
안정적인 발병을 위해서, 접종한 배추 유묘는 3일 동안 20℃ 생육상에서 하루에 12시간 광을 처리하며 배양한 후 온실(25 ± 5℃)에서 5주 동안 재배한 후에 병조사하는 것이 요구되었다. 확립한 배추 뿌리혹병 저항성 검정법을 이용하여, 시판 중인 뿌리혹병 저항성 품종 25종과 감수성 품종 3종의 P. brassicae GN-1 균주에 대한 저항성 정도를 실험한 결과, 모든 저항성 품종들은 뿌리혹병에 대하여 뚜렷한 저항성을 나타내었고, 감수성 품종들은 발병도 3.5 이상의 높은 감수성을 보였다. 따라서 이 방법은 배추의 뿌리혹병 저항성을 검정하기 위한 효율적인 검정법임을 알 수 있었다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
Plasmodiophora brassicae는 어떠한 형태로 토양에 존재하는가?
P. brassicae는 절대기생균으로 배추 외에도 양배추, 꽃양배추, 브로콜리, 무 등의 배추과 작물에 뿌리혹병을 일으키며(김 등, 2003; 장 등, 2005), 휴면포자, 유주자, 변형체 등의 형태로 토양에 존재한다(Braselton, 1995). 우리나라에서는 1990년대 초반부터 배추 재배지역에 이병이 발생하기 시작하여(심 등, 1998), 1990년대 후반에는 뿌리혹병 발생면적이 700여 ha에 달하였으며(김 등, 1999), 현재는 전국에 걸쳐 배추, 양배추 등의 배추과 작물에 뿌리혹병이 발생하고 있다.
우리나라에서 1990년대 후반에 뿌리혹병 발생면적은 얼마인가?
brassicae는 절대기생균으로 배추 외에도 양배추, 꽃양배추, 브로콜리, 무 등의 배추과 작물에 뿌리혹병을 일으키며(김 등, 2003; 장 등, 2005), 휴면포자, 유주자, 변형체 등의 형태로 토양에 존재한다(Braselton, 1995). 우리나라에서는 1990년대 초반부터 배추 재배지역에 이병이 발생하기 시작하여(심 등, 1998), 1990년대 후반에는 뿌리혹병 발생면적이 700여 ha에 달하였으며(김 등, 1999), 현재는 전국에 걸쳐 배추, 양배추 등의 배추과 작물에 뿌리혹병이 발생하고 있다.
농약의 과다사용의 문제점은 무엇인가?
그러나 경종적 방제는 뿌리혹병에 대한 방제효과가 낮고, 살균제를 이용한 화학적 방제는 일시적으로 병원균의 밀도를 저하시켜 단기간 내에 방제 효과를 볼 수 있으나 약효가 떨어지면 다시 병원균의 밀도가 높아져 뿌리혹병이 발생하게 된다(Yoshigawa, 1983). 또한 농약의 과다사용으로 인한 경제적 부담과 환경오염 유발 등의 문제점을 야기하고 있다. 따라서 오늘날에는 뿌리혹병 방제를 위하여 저항성 배추 품종의 재배 등 환경친화적인 방법이 요구되고 있다.
참고문헌 (29)
Braselton, J. 1995. Current status of plasmodiophodids. Crit. Rev. Microbiol. 21: 263-275.
장석원, 김희동, 김성기, 이은섭, 노용택. 2008. 정식 후 초기 관수횟수에 따른 배추 뿌리혹병 발생 억제효과. 식물병연구 14:85-89.
Cheah, L. H. and Page, B. B. C. 1995. Trichoderma spp. for potential biocontrol of clubroot of vegetable Brassicas. Proc. 50th N. Z. Plant Protection Conf. 150-153.
Cheah, L. H., Veerakone, S. and Kent, G. 2000. Biological control of clubroot on cauliflower with Trichoderma and Streptomyces spp. N. Z. Plant Protection. 53: 18-21.
Cho, W. D., Kim, W. G. and Takahashi, K. 2003. Occurrence of clubroot in cruciferous vegetable crops and races of the pathogen in Korea. Plant Pathol. J. 19: 64-68.
Crute, I. R. and Pink, D. A. C. 1989. The characteristic and inheritance of resistance to clubroot in Brassica oleracea. Aspect. Appl. Biol. 23: 57-60.
James, R. V. and Williams, P. H. 1980. Clubroot resistance and linkage in Brassica campestris. Phytopathology 70: 776-779.
Kuginuki, Y., Yoshikawa, H. and Hirai, M. 1997. RAPD markers
Kuginuki, Y., Yoshikawa, H. and Hirai, M. 1999. Variation in virulence of Plasmodiophora brassicae in Japan tested with clubroot resistance cultivars of Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis). Eur. J. Plant Pathol. 105: 327-332.
Laurens, F. and Thomas, G. 1993. Inheritance of resistance to clubroot (Plasmodiophora brassicae Wor.) in kale (Brassica oleracea ssp. acephala). Heredities 119: 253-262.
Lee, S. B., Lee, C. S., Kim, S. K., Hong, S. S., Choi, J. K., Lee, J. H. and Kim, C. H. 2001. Screening result varieties of crucifer crops to clubroot disease caused by Plasmodiophora brassicae in Korea. Plant Pathol. J. 17: 369-370.
Lee, J. G. and Kim, J. S. 2010. Variation of glucosinolate content in the root of susceptible and resistant Chinese cabbage cultivars during development of clubroot disease. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 20: 200-208.
Narisawa, K., Shimura, M., Usuki, F., Fukuhara, S. and Hashiba, T. 2005. Effects of pathogen density, soil moisture, and soil pH on biological control of clubroot in Chinese cabbage by Heteroconium chaetospira. Plant Dis. 89: 285-290.
Scot, E. S. and Loh, C. S. 1985. Inoculation of secondary embryos of oilseed rape with single resting spores of Plasmodiophora brassicae. Cruciferae Newsletter 8: 28-29.
Toxopeus, H. and Janssen, A. M. P. 1975. Clubroot resistance in turnip II. The ‘slurry’ screening method and clubroot races in the Netherlands. Euphytica 24: 751-755.
Voorips, R. E. and Kanne, H. J. 1997. Genetic analysis of resistance to clubroot (Plasmodiophora brassicae) in Brassica oleracea. I. Analysis of symptom grades. Euphytica 93: 41-48.
Williams, P. H. 1966. A system for the determination of races of Plasmodiophora brassicae that infect cabbage and rutabaga. Phytopathology 56: 624-626.
Yoshikawa, H. 1981. Breeding for clubroot resistance in Chinese cabbage. In : Chinese Cabbage, eds. by N. S. Talekar and T. D. Griggs, pp. 405-413. AVRDC, Tainan.
Yoshigawa, H. 1983. Breeding for clubroot resistance of crucifer crop in Japan. Jpn. Agr. Res. Quart. 17: 6-11.
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