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항암제 내성에 대한 라이소좀의 역할
The Functional Role of Lysosomes as Drug Resistance in Cancer 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.31 no.5, 2021년, pp.527 - 535  

우선민 (계명대학교 의과대학 면역학교실) ,  권택규 (계명대학교 의과대학 면역학교실)

초록
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라이소좀은 산성가수분해 효소를 가진 세포 내 소기관으로 단백질 및 고분자를 분해한다. 영양분 상태에 따라 세포 내 다양한 신호 전달 경로를 조절하는 신호 경로 중추로, 세포 항상성 조절에 중요한 역할을 한다. 따라서 이러한 라이소좀의 기능 이상은 라이소좀 저장질환, 퇴행성 신경질환 및 암을 발생시킬 수 있다. 암세포에서는 다양한 자극에 의한 lysosomal membrane permeabilization (LMP)가 일어날 수 있으며, 카텝신과 같은 라이소좀 내 효소 및 내용물이 세포질로 유출되어 다양한 형태의 라이소좀 의존적인 암세포사멸을 유도한다. 본 보고에서는 LMP 증가를 통한 다양한 형태의 세포사멸 유도 기전 및 항암제 민감성 증진에 대해 서술하였다. 미미한 LMP 유도는 일부 카텝신이 세포질로 유출되어 전형적인 세포사멸(apoptosis)을 일으키는 반면 강력한 LMP 유도는 라이소좀의 파열로 많은 카텝신 및 활성산소의 유출로 non-apoptotic 세포사멸을 일으킨다. 이러한 LMP 유도는 라이조솜 내에 포획된 항암제가 세포질로 유출되어 다른 타겟 소기관으로 작용하여 항암제에 대한 내성을 극복하고 민감성을 증진시킬 수 있다. 따라서, LMP 유도제 및 라이소좀 항성 작용제(lysosomotropic agent)에 의한 라이소좀 막 분열은 종양치료에 있어 새로운 전략이 될 수 있다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Lysosomes are organelles surrounded by membranes that contain acid hydrolases; they degrade proteins, macromolecules, and lipids. According to nutrient conditions, lysosomes act as signaling hubs that regulate intracellular signaling pathways and are involved in the homeostasis of cells. Therefore, ...

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AI 본문요약
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성능/효과

  • 암세포에서 LMP 유도 정도에 따라 발생하는 사멸의 형태가 다르며, 미미한 LMP의 경우 세포질로 일부 카텝신이 유출되어 apoptosis를 일으키는 반면 과도한 LMP의경우 활성산소의 생성으로 non-apoptotic cell death를 일으킨다. 따라서, LMP 유도제 및 lysosomotropic agent에 의한 라이소좀 막 분열 및 LMP에 의해 유도되는 다양한 형태의 암세포사멸은 효과적인 종양치료전략이 될 수 있다.
  • 암세포에서 항암제에 대한 내성을 극복하는 방안으로는 라이소좀의 막 손상을 초래하는 LMP 유도가 제시된다. 암세포에서 LMP 유도 정도에 따라 발생하는 사멸의 형태가 다르며, 미미한 LMP의 경우 세포질로 일부 카텝신이 유출되어 apoptosis를 일으키는 반면 과도한 LMP의경우 활성산소의 생성으로 non-apoptotic cell death를 일으킨다. 따라서, LMP 유도제 및 lysosomotropic agent에 의한 라이소좀 막 분열 및 LMP에 의해 유도되는 다양한 형태의 암세포사멸은 효과적인 종양치료전략이 될 수 있다.
  • 최근 라이소좀은 대사 신호, 유전자 발현, 세포 내 신호 전달 경로를 조절하는 신호 경로 중추로 작용하여 세포의 항상성 유지에 중요한 역할을 한다. 정상세포보다 암세포에서 상대적으로 라이소좀의 수가 많고 크기가 크며, 이로 인해 세포 내로 유입된 항암제들이 라이소좀 안에 포획되고 다른 타겟 소기관에 작용하지 못해 항암제에 대한 내성이 나타난다. 암세포에서 항암제에 대한 내성을 극복하는 방안으로는 라이소좀의 막 손상을 초래하는 LMP 유도가 제시된다.
  • 초기의 라이소좀은 다양한 가수분해 효소를 이용하여 외부로 들어온 고분자 물질, 지질, 탄수화물 및 단백질 등을 분해하는 세포 소기관으로 발견되었다. 최근 라이소좀은 대사 신호, 유전자 발현, 세포 내 신호 전달 경로를 조절하는 신호 경로 중추로 작용하여 세포의 항상성 유지에 중요한 역할을 한다.

후속연구

  • 정상세포보다 암세포에서 상대적으로 라이소좀의 수가 많고 크기가 크며, 이로 인해 세포 내로 유입된 항암제들이 라이소좀 안에 포획되고 다른 타겟 소기관에 작용하지 못해 항암제에 대한 내성이 나타난다. 암세포에서 항암제에 대한 내성을 극복하는 방안으로는 라이소좀의 막 손상을 초래하는 LMP 유도가 제시된다. 암세포에서 LMP 유도 정도에 따라 발생하는 사멸의 형태가 다르며, 미미한 LMP의 경우 세포질로 일부 카텝신이 유출되어 apoptosis를 일으키는 반면 과도한 LMP의경우 활성산소의 생성으로 non-apoptotic cell death를 일으킨다.
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참고문헌 (68)

  1. Assaraf, Y. G. 2006. The role of multidrug resistance efflux transporters in antifolate resistance and folate homeostasis. Drug Resist. Updat. 9, 227-246. 

  2. Ballabio, A. and Bonifacino, J. S. 2020. Lysosomes as dynamic regulators of cell and organismal homeostasis. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 21, 101-118. 

  3. Boya, P., Gonzalez-Polo, R. A., Poncet, D., Andreau, K., Vieira, H. L., Roumier, T., Perfettini, J. L. and Kroemer, G. 2003. Mitochondrial membrane permeabilization is a critical step of lysosome-initiated apoptosis induced by hydroxychloroquine. Oncogene 22, 3927-3936. 

  4. Boya, P. and Kroemer, G. 2008. Lysosomal membrane permeabilization in cell death. Oncogene 27, 6434-6451. 

  5. Bruchard, M., Mignot, G., Derangere, V., Chalmin, F., Chevriaux, A., Vegran, F., Boireau, W., Simon, B., Ryffel, B., Connat, J. L., Kanellopoulos, J., Martin, F., Rebe, C., Apetoh, L. and Ghiringhelli, F. 2013. Chemotherapy-triggered cathepsin b release in myeloid-derived suppressor cells activates the nlrp3 inflammasome and promotes tumor growth. Nat. Med. 19, 57-64. 

  6. Burgener, S. S., Leborgne, N. G. F., Snipas, S. J., Salvesen, G. S., Bird, P. I. and Benarafa, C. 2019. Cathepsin g inhibition by serpinb1 and serpinb6 prevents programmed necrosis in neutrophils and monocytes and reduces gsdmd-driven inflammation. Cell Rep. 27, 3646-3656. 

  7. Burger, A. M., Jenkins, T. C., Double, J. A. and Bibby, M. C. 1999. Cellular uptake, cytotoxicity and DNA-binding studies of the novel imidazoacridinone antineoplastic agent c1311. Br. J. Cancer 81, 367-375. 

  8. Cesen, M. H., Pegan, K., Spes, A. and Turk, B. 2012. Lysosomal pathways to cell death and their therapeutic applications. Exp. Cell Res. 318, 1245-1251. 

  9. Chapuy, B., Koch, R., Radunski, U., Corsham, S., Cheong, N., Inagaki, N., Ban, N., Wenzel, D., Reinhardt, D., Zapf, A., Schweyer, S., Kosari, F., Klapper, W., Truemper, L. and Wulf, G. G. 2008. Intracellular abc transporter a3 confers multidrug resistance in leukemia cells by lysosomal drug sequestration. Leukemia 22, 1576-1586. 

  10. Chen, J. C., Uang, B. J., Lyu, P. C., Chang, J. Y., Liu, K. J., Kuo, C. C., Hsieh, H. P., Wang, H. C., Cheng, C. S., Chang, Y. H., Chang, M. D., Chang, W. S. and Lin, C. C. 2010. Design and synthesis of alpha-ketoamides as cathepsin s inhibitors with potential applications against tumor invasion and angiogenesis. J. Med. Chem. 53, 4545-4549. 

  11. de Duve, C., de Barsy, T., Poole, B., Trouet, A., Tulkens, P. and Van Hoof, F. 1974. Commentary. Lysosomotropic agents. Biochem. Pharmacol. 23, 2495-2531. 

  12. De Mei, C., Ercolani, L., Parodi, C., Veronesi, M., Lo Vecchio, C., Bottegoni, G., Torrente, E., Scarpelli, R., Marotta, R., Ruffili, R., Mattioli, M., Reggiani, A., Wade, M. and Grimaldi, B. 2015. Dual inhibition of rev-erbbeta and autophagy as a novel pharmacological approach to induce cytotoxicity in cancer cells. Oncogene 34, 2597-2608. 

  13. Duvel, K., Yecies, J. L., Menon, S., Raman, P., Lipovsky, A. I., Souza, A. L., Triantafellow, E., Ma, Q., Gorski, R., Cleaver, S., Vander Heiden, M. G., MacKeigan, J. P., Finan, P. M., Clish, C. B., Murphy, L. O. and Manning, B. D. 2010. Activation of a metabolic gene regulatory network downstream of mtor complex 1. Mol. Cell 39, 171-183. 

  14. Fairn, G. D. and Grinstein, S. 2012. How nascent phagosomes mature to become phagolysosomes. Trends Immunol. 33, 397-405. 

  15. Feng, Y., He, D., Yao, Z. and Klionsky, D. J. 2014. The machinery of macroautophagy. Cell Res. 24, 24-41. 

  16. Ferrao, P., Sincock, P., Cole, S. and Ashman, L. 2001. Intracellular p-gp contributes to functional drug efflux and resistance in acute myeloid leukaemia. Leuk. Res. 25, 395-405. 

  17. Firestone, R. A., Pisano, J. M. and Bonney, R. J. 1979. Lysosomotropic agents. 1. Synthesis and cytotoxic action of lysosomotropic detergents. J. Med. Chem. 22, 1130-1133. 

  18. Gao, C., Ding, Y., Zhong, L., Jiang, L., Geng, C., Yao, X. and Cao, J. 2014. Tacrine induces apoptosis through lysosomeand mitochondria-dependent pathway in hepg2 cells. Toxicol. In Vitro 28, 667-674. 

  19. Gillet, J. P. and Gottesman, M. M. 2011. Advances in the molecular detection of abc transporters involved in multidrug resistance in cancer. Curr. Pharm. Biotechnol. 12, 686-692. 

  20. Goldman, S. D., Funk, R. S., Rajewski, R. A. and Krise, J. P. 2009. Mechanisms of amine accumulation in, and egress from, lysosomes. Bioanalysis 1, 1445-1459. 

  21. Guntuku, L., Gangasani, J. K., Thummuri, D., Borkar, R. M., Manavathi, B., Ragampeta, S., Vaidya, J. R., Sistla, R. and Vegi, N. G. M. 2019. Iitz-01, a novel potent lysosomotropic autophagy inhibitor, has single-agent antitumor efficacy in triple-negative breast cancer in vitro and in vivo. Oncogene 38, 581-595. 

  22. Huang, C. C., Chen, K. L., Cheung, C. H. A. and Chang, J. Y. 2013. Autophagy induced by cathepsin s inhibition induces early ros production, oxidative DNA damage, and cell death via xanthine oxidase. Free Radic. Biol. Med. 65, 1473-1486. 

  23. Jensen, A. B., Wynne, C., Ramirez, G., He, W., Song, Y., Berd, Y., Wang, H., Mehta, A. and Lombardi, A. 2010. The cathepsin k inhibitor odanacatib suppresses bone resorption in women with breast cancer and established bone metastases: Results of a 4-week, double-blind, randomized, controlled trial. Clin. Breast Cancer 10, 452-458. 

  24. Kagedal, K., Johansson, A. C., Johansson, U., Heimlich, G., Roberg, K., Wang, N. S., Jurgensmeier, J. M. and Ollinger, K. 2005. Lysosomal membrane permeabilization during apoptosis--involvement of bax? Int. J. Exp. Pathol. 86, 309-321. 

  25. Kagedal, K., Zhao, M., Svensson, I. and Brunk, U. T. 2001. Sphingosine-induced apoptosis is dependent on lysosomal proteases. Biochem. J. 359, 335-343. 

  26. Kaur, J. and Debnath, J. 2015. Autophagy at the crossroads of catabolism and anabolism. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 16, 461-472. 

  27. Kaushik, S. and Cuervo, A. M. 2018. The coming of age of chaperone-mediated autophagy. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 19, 365-381. 

  28. Li, M. 2018. Enzyme replacement therapy: A review and its role in treating lysosomal storage diseases. Pediatr. Ann. 47, e191-e197. 

  29. Li, P., Gu, M. and Xu, H. 2019. Lysosomal ion channels as decoders of cellular signals. Trends Biochem. Sci. 44, 110-124. 

  30. Li, W. W., Li, J. and Bao, J. K. 2012. Microautophagy: Lesser-known self-eating. Cell. Mol. Life Sci. 69, 1125-1136. 

  31. Liu, S., Li, Y., Choi, H. M. C., Sarkar, C., Koh, E. Y., Wu, J. and Lipinski, M. M. 2018. Lysosomal damage after spinal cord injury causes accumulation of ripk1 and ripk3 proteins and potentiation of necroptosis. Cell Death Dis. 9, 476. 

  32. Logan, R., Funk, R. S., Axcell, E. and Krise, J. P. 2012. Drug-drug interactions involving lysosomes: Mechanisms and potential clinical implications. Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. 8, 943-958. 

  33. Luzio, J. P., Parkinson, M. D., Gray, S. R. and Bright, N. A. 2009. The delivery of endocytosed cargo to lysosomes. Biochem. Soc. Trans. 37, 1019-1021. 

  34. Luzio, J. P., Pryor, P. R. and Bright, N. A. 2007. Lysosomes: Fusion and function. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8, 622-632. 

  35. Luzio, J. P., Pryor, P. R., Gray, S. R., Gratian, M. J., Piper, R. C. and Bright, N. A. 2005. Membrane traffic to and from lysosomes. Biochem. Soc. Symp. 72, 77-86. 

  36. Manna, S. K., Zhang, H. J., Yan, T., Oberley, L. W. and Aggarwal, B. B. 1998. Overexpression of manganese superoxide dismutase suppresses tumor necrosis factor-induced apoptosis and activation of nuclear transcription factor-kappab and activated protein-1. J. Biol. Chem. 273, 13245-13254. 

  37. Mindell, J. A. 2012. Lysosomal acidification mechanisms. Annu. Rev. Physiol. 74, 69-86. 

  38. Molinari, A., Calcabrini, A., Meschini, S., Stringaro, A., Crateri, P., Toccacieli, L., Marra, M., Colone, M., Cianfriglia, M. and Arancia, G. 2002. Subcellular detection and localization of the drug transporter p-glycoprotein in cultured tumor cells. Curr. Protein Pept. Sci. 3, 653-670. 

  39. Morgan, A. J., Platt, F. M., Lloyd-Evans, E. and Galione, A. 2011. Molecular mechanisms of endolysosomal ca2+ signalling in health and disease. Biochem. J. 439, 349-374. 

  40. Nylandsted, J., Gyrd-Hansen, M., Danielewicz, A., Fehrenbacher, N., Lademann, U., Hoyer-Hansen, M., Weber, E., Multhoff, G., Rohde, M. and Jaattela, M. 2004. Heat shock protein 70 promotes cell survival by inhibiting lysosomal membrane permeabilization. J. Exp. Med. 200, 425-435. 

  41. Park, E. J., Min, K. J., Choi, K. S., Kubatka, P., Kruzliak, P., Kim, D. E. and Kwon, T. K. 2016. Chloroquine enhances trail-mediated apoptosis through up-regulation of dr5 by stabilization of mrna and protein in cancer cells. Sci. Rep. 6, 22921. 

  42. Perera, R. M. and Zoncu, R. 2016. The lysosome as a regulatory hub. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 32, 223-253. 

  43. Platt, F. M. 2018. Emptying the stores: Lysosomal diseases and therapeutic strategies. Nat. Rev. Drug Discov. 17, 133-150. 

  44. Sancak, Y., Bar-Peled, L., Zoncu, R., Markhard, A. L., Nada, S. and Sabatini, D. M. 2010. Ragulator-rag complex targets mtorc1 to the lysosomal surface and is necessary for its activation by amino acids. Cell 141, 290-303. 

  45. Saxton, R. A. and Sabatini, D. M. 2017. Mtor signaling in growth, metabolism, and disease. Cell 169, 361-371. 

  46. Seo, B. R., Min, K. J., Woo, S. M., Choe, M., Choi, K. S., Lee, Y. K., Yoon, G. and Kwon, T. K. 2017. Inhibition of cathepsin s induces mitochondrial ros that sensitizes trail-mediated apoptosis through p53-mediated downregulation of bcl-2 and c-flip. Antioxid. Redox Signal. 27, 215-233. 

  47. Seo, S. U., Min, K. J., Woo, S. M. and Kwon, T. K. 2018. Z-fl-cocho, a cathepsin s inhibitor, enhances oxaliplatin-mediated apoptosis through the induction of endoplasmic reticulum stress. Exp. Mol. Med. 50, 1-11. 

  48. Seo, S. U., Woo, S. M., Kim, M. W., Lee, H. S., Kim, S. H., Kang, S. C., Lee, E. W., Min, K. J. and Kwon, T. K. 2020. Cathepsin k inhibition-induced mitochondrial ros enhances sensitivity of cancer cells to anti-cancer drugs through usp27x-mediated bim protein stabilization. Redox Biol. 30, 101422. 

  49. Serrano-Puebla, A. and Boya, P. 2016. Lysosomal membrane permeabilization in cell death: New evidence and implications for health and disease. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1371, 30-44. 

  50. Shachar, T., Lo Bianco, C., Recchia, A., Wiessner, C., RaasRothschild, A. and Futerman, A. H. 2011. Lysosomal storage disorders and parkinson's disease: Gaucher disease and beyond. Mov. Disord. 26, 1593-1604. 

  51. Shahriyar, S. A., Seo, S. U., Min, K. J., Kubatka, P., Min, D. S., Chang, J. S., Kim, D. E., Woo, S. M. and Kwon, T. K. 2020. Upregulation of dr5 and downregulation of survivin by iitz-01, lysosomotropic autophagy inhibitor, potentiates trail-mediated apoptosis in renal cancer cells via ubiquitin-proteasome pathway. Cancers (Basel) 12, 2363. 

  52. Sudhan, D. R., Rabaglino, M. B., Wood, C. E. and Siemann, D. W. 2016. Cathepsin l in tumor angiogenesis and its therapeutic intervention by the small molecule inhibitor kgp94. Clin. Exp. Metastasis 33, 461-473. 

  53. Sukhai, M. A., Prabha, S., Hurren, R., Rutledge, A. C., Lee, A. Y., Sriskanthadevan, S., Sun, H., Wang, X., Skrtic, M., Seneviratne, A., Cusimano, M., Jhas, B., Gronda, M., MacLean, N., Cho, E. E., Spagnuolo, P. A., Sharmeen, S., Gebbia, M., Urbanus, M., Eppert, K., Dissanayake, D., Jonet, A., Dassonville-Klimpt, A., Li, X., Datti, A., Ohashi, P. S., Wrana, J., Rogers, I., Sonnet, P., Ellis, W. Y., Corey, S. J., Eaves, C., Minden, M. D., Wang, J. C., Dick, J. E., Nislow, C., Giaever, G. and Schimmer, A. D. 2013. Lysosomal disruption preferentially targets acute myeloid leukemia cells and progenitors. J. Clin. Invest. 123, 315-328. 

  54. Thelen, A. M. and Zoncu, R. 2017. Emerging roles for the lysosome in lipid metabolism. Trends Cell Biol. 27, 833-850. 

  55. Torii, S., Shintoku, R., Kubota, C., Yaegashi, M., Torii, R., Sasaki, M., Suzuki, T., Mori, M., Yoshimoto, Y., Takeuchi, T. and Yamada, K. 2016. An essential role for functional lysosomes in ferroptosis of cancer cells. Biochem. J. 473, 769-777. 

  56. Trivedi, P. C., Bartlett, J. J. and Pulinilkunnil, T. 2020. Lysosomal biology and function: Modern view of cellular debris bin. Cells 9, 1131-1165. 

  57. Wang, F., Gomez-Sintes, R. and Boya, P. 2018. Lysosomal membrane permeabilization and cell death. Traffic 19, 918-931. 

  58. Wang, F., Zhang, Z., Leung, W. T., Chen, J., Yi, J., Ying, C., Yuan, M., Wang, M., Zhang, N., Qiu, X., Wang, L. and Wei, H. 2019. Hydroxychloroquine reverses the drug resistance of leukemic k562/adm cells by inhibiting autophagy. Mol. Med. Rep. 20, 3883-3892. 

  59. Wang, J. H., Redmond, H. P., Watson, R. W. and Bouchier-Hayes, D. 1997. Induction of human endothelial cell apoptosis requires both heat shock and oxidative stress responses. Am. J. Physiol. 272, C1543-1551. 

  60. Yamagishi, T., Sahni, S., Sharp, D. M., Arvind, A., Jansson, P. J. and Richardson, D. R. 2013. P-glycoprotein mediates drug resistance via a novel mechanism involving lysosomal sequestration. J. Biol. Chem. 288, 31761-31771. 

  61. Yang, Y., Lim, S. K., Choong, L. Y., Lee, H., Chen, Y., Chong, P. K., Ashktorab, H., Wang, T. T., Salto-Tellez, M., Yeoh, K. G. and Lim, Y. P. 2010. Cathepsin s mediates gastric cancer cell migration and invasion via a putative network of metastasis-associated proteins. J. Proteome Res. 9, 4767-4778. 

  62. Yu, L., McPhee, C. K., Zheng, L., Mardones, G. A., Rong, Y., Peng, J., Mi, N., Zhao, Y., Liu, Z., Wan, F., Hailey, D. W., Oorschot, V., Klumperman, J., Baehrecke, E. H. and Lenardo, M. J. 2010. Termination of autophagy and reformation of lysosomes regulated by mtor. Nature 465, 942-946. 

  63. Zhang, L., Wang, H., Xu, J., Zhu, J. and Ding, K. 2014. Inhibition of cathepsin s induces autophagy and apoptosis in human glioblastoma cell lines through ros-mediated pi3k/akt/mtor/p70s6k and jnk signaling pathways. Toxicol. Lett. 228, 248-259. 

  64. Zhang, Y., Liao, Z., Zhang, L. J. and Xiao, H. T. 2015. The utility of chloroquine in cancer therapy. Curr. Med. Res. Opin. 31, 1009-1013. 

  65. Zheng, X., Chu, F., Chou, P. M., Gallati, C., Dier, U., Mirkin, B. L., Mousa, S. A. and Rebbaa, A. 2009. Cathepsin l inhibition suppresses drug resistance in vitro and in vivo: A putative mechanism. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 296, C65-74. 

  66. Zhitomirsky, B. and Assaraf, Y. G. 2016. Lysosomes as mediators of drug resistance in cancer. Drug Resist. Updat. 24, 23-33. 

  67. Zhu, X., Sun, Y., Chen, D., Li, J., Dong, X., Wang, J., Chen, H., Wang, Y., Zhang, F., Dai, J., Pirraco, R. P., Guo, S., Marques, A. P., Reis, R. L. and Li, W. 2017. Mastocarcinoma therapy synergistically promoted by lysosome dependent apoptosis specifically evoked by 5-fu@nanogel system with passive targeting and ph activatable dual function. J. Control. Release 254, 107-118. 

  68. Zou, J., Kawai, T., Tsuchida, T., Kozaki, T., Tanaka, H., Shin, K. S., Kumar, H. and Akira, S. 2013. Poly ic triggers a cathepsin d- and ips-1-dependent pathway to enhance cytokine production and mediate dendritic cell necroptosis. Immunity 38, 717-728. 

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