$\require{mediawiki-texvc}$

연합인증

연합인증 가입 기관의 연구자들은 소속기관의 인증정보(ID와 암호)를 이용해 다른 대학, 연구기관, 서비스 공급자의 다양한 온라인 자원과 연구 데이터를 이용할 수 있습니다.

이는 여행자가 자국에서 발행 받은 여권으로 세계 각국을 자유롭게 여행할 수 있는 것과 같습니다.

연합인증으로 이용이 가능한 서비스는 NTIS, DataON, Edison, Kafe, Webinar 등이 있습니다.

한번의 인증절차만으로 연합인증 가입 서비스에 추가 로그인 없이 이용이 가능합니다.

다만, 연합인증을 위해서는 최초 1회만 인증 절차가 필요합니다. (회원이 아닐 경우 회원 가입이 필요합니다.)

연합인증 절차는 다음과 같습니다.

최초이용시에는
ScienceON에 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 로그인 (본인 확인 또는 회원가입) → 서비스 이용

그 이후에는
ScienceON 로그인 → 연합인증 서비스 접속 → 서비스 이용

연합인증을 활용하시면 KISTI가 제공하는 다양한 서비스를 편리하게 이용하실 수 있습니다.

고콜레스테롤 식이 섭취 쥐에서 quercetin의 간 AMPK 및 microRNA-21 조절을 통한 지질대사 개선 효과
Effects of quercetin on the improvement of lipid metabolism through regulating hepatic AMPK and microRNA-21 in high cholesterol diet-fed mice 원문보기

Journal of nutrition and health, v.55 no.1, 2022년, pp.36 - 46  

이막순 (이화여자대학교 식품영양학과) ,  김양하 (이화여자대학교 식품영양학과)

초록
AI-Helper 아이콘AI-Helper

Quercetin의 지질대사 개선 효과에 대한 작용기전을 확인하기 위해 C57BL/6J mouse를 사용하여 실험을 수행하였다. 고콜레스테롤혈증을 유도하기 위해 6주간 1% 콜레스테롤과 0.5% cholic acid를 함유하는 고콜레스테롤 식이를 급여하였으며, quercetin은 0.05%와 0.1%의 수준으로 고콜레스테롤 식이에 추가하여 같은 기간 동안 제공하였다. Quercetin은 혈청과 간의 중성지방 및 콜레스테롤 수준을 용량 의존적으로 감소하는 것으로 나타났다. 고콜레스테롤 식이를 섭취한 쥐의 간에서 지방 합성을 촉진하는 SREBP-1c, ACC1 및 FAS 유전자 발현이 quercetin 섭취에 의해 억제되는 것을 확인하였다. Quercetin은 간세포 내에서 에너지 대사를 조절하는 AMPK 활성을 증가시켰다. 이에 반해 암세포 증식을 촉진하고 지방간에서 높게 발현되는 miR-21 발현은 quercetin 섭취에 의해 감소되었다. 본 연구의 결과는 quercetin이 고콜레스테롤 식이 섭취 쥐에서 혈청과 간의 지질 수준을 낮추는 지질대사 개선 효과가 있으며, 이러한 효과의 일부는 간 내 지방합성 유전자 (SREBP-1c, ACC1 및 FAS) 발현, AMPK 활성 및 miR-21 조절을 통해 매개된다는 것을 시사한다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Purpose: Quercetin is a polyphenolic flavonoid abundant in many fruits and vegetables. It has potential health-beneficial properties, such as antioxidant, anti-obesity, anti-cancer, anti-diabetic and anti-inflammatory effects. The purpose of this study was to investigate whether the lipid metabolism...

주제어

표/그림 (6)

참고문헌 (39)

  1. Wald NJ, Law MR. Serum cholesterol and ischaemic heart disease. Atherosclerosis 1995; 118 Suppl: S1-S5. 

  2. Barquera S, Pedroza-Tobias A, Medina C, Hernandez-Barrera L, Bibbins-Domingo K, Lozano R, et al. Global overview of the epidemiology of atherosclerotic cardiovascular disease. Arch Med Res 2015; 46(5): 328-338. 

  3. Stone NJ, Robinson JG, Lichtenstein AH, Bairey Merz CN, Blum CB, Eckel RH, et al. 2013 ACC/AHA guideline on the treatment of blood cholesterol to reduce atherosclerotic cardiovascular risk in adults: a report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines. J Am Coll Cardiol 2014; 63(25 Pt B): 2889-2934. 

  4. Canto C, Gerhart-Hines Z, Feige JN, Lagouge M, Noriega L, Milne JC, et al. AMPK regulates energy expenditure by modulating NAD+ metabolism and SIRT1 activity. Nature 2009; 458(7241): 1056-1060. 

  5. Hardie DG, Ross FA, Hawley SA. AMPK: a nutrient and energy sensor that maintains energy homeostasis. Nat Rev Mol Cell Biol 2012; 13(4): 251-262. 

  6. Ojuka EO, Jones TE, Nolte LA, Chen M, Wamhoff BR, Sturek M, et al. Regulation of GLUT4 biogenesis in muscle: evidence for involvement of AMPK and Ca 2+ . Am J Physiol Endocrinol Metab 2002; 282(5): E1008-E1013. 

  7. Makinde AO, Gamble J, Lopaschuk GD. Upregulation of 5'-AMP-activated protein kinase is responsible for the increase in myocardial fatty acid oxidation rates following birth in the newborn rabbit. Circ Res 1997; 80(4): 482-489. 

  8. Mihaylova MM, Shaw RJ. The AMPK signalling pathway coordinates cell growth, autophagy and metabolism. Nat Cell Biol 2011; 13(9): 1016-1023. 

  9. Foretz M, Carling D, Guichard C, Ferre P, Foufelle F. AMP-activated protein kinase inhibits the glucoseactivated expression of fatty acid synthase gene in rat hepatocytes. J Biol Chem 1998; 273(24): 14767-14771. 

  10. Woods A, Azzout-Marniche D, Foretz M, Stein SC, Lemarchand P, Ferre P, et al. Characterization of the role of AMP-activated protein kinase in the regulation of glucose-activated gene expression using constitutively active and dominant negative forms of the kinase. Mol Cell Biol 2000; 20(18): 6704-6711. 

  11. Bartel DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell 2004; 116(2): 281-297. 

  12. Loyer X, Paradis V, Henique C, Vion AC, Colnot N, Guerin CL, et al. Liver microRNA-21 is overexpressed in non-alcoholic steatohepatitis and contributes to the disease in experimental models by inhibiting PPARα expression. Gut 2016; 65(11): 1882-1894. 

  13. Zhang J, Li D, Zhang R, Gao P, Peng R, Li J. The miR-21 potential of serving as a biomarker for liver diseases in clinical practice. Biochem Soc Trans 2020; 48(5): 2295-2305. 

  14. Boots AW, Haenen GR, Bast A. Health effects of quercetin: from antioxidant to nutraceutical. Eur J Pharmacol 2008; 585(2-3): 325-337. 

  15. Reyes-Farias M, Carrasco-Pozo C. The anti-cancer effect of quercetin: molecular implications in cancer metabolism. Int J Mol Sci 2019; 20(13): 3177. 

  16. Eid HM, Haddad PS. The antidiabetic potential of quercetin: underlying mechanisms. Curr Med Chem 2017; 24(4): 355-364. 

  17. Dong J, Zhang X, Zhang L, Bian HX, Xu N, Bao B, et al. Quercetin reduces obesity-associated ATM infiltration and inflammation in mice: a mechanism including AMPKα1/SIRT1. J Lipid Res 2014; 55(3): 363-374. 

  18. Chen S, Jiang H, Wu X, Fang J. Therapeutic effects of quercetin on inflammation, obesity, and type 2 diabetes. Mediators Inflamm 2016; 2016(28): 9340637. 

  19. Pei Y, Otieno D, Gu I, Lee SO, Parks JS, Schimmel K, et al. Effect of quercetin on nonshivering thermogenesis of brown adipose tissue in high-fat diet-induced obese mice. J Nutr Biochem 2021; 88: 108532. 

  20. Eid HM, Nachar A, Thong F, Sweeney G, Haddad PS. The molecular basis of the antidiabetic action of quercetin in cultured skeletal muscle cells and hepatocytes. Pharmacogn Mag 2015; 11(41): 74-81. 

  21. Alshammari GM, Al-Qahtani WH, AlFaris NA, Alzahrani NS, Alkhateeb MA, Yahya MA. Quercetin prevents cadmium chloride-induced hepatic steatosis and fibrosis by downregulating the transcription of miR-21. Biofactors 2021; 47(3): 489-505. 

  22. Nozari E, Moradi A, Samadi M. Effect of atorvastatin, curcumin, and quercetin on miR-21 and miR-122 and their correlation with TGFβ1 expression in experimental liver fibrosis. Life Sci 2020; 259: 118293. 

  23. American Institute of Nutrition. Report of the American Institute of Nutrition ad hoc committee on standards for nutritional studies. J Nutr 1997; 107(7): 1340-1348. 

  24. Friedewald WT, Levy RI, Fredrickson DS. Estimation of the concentration of low-density lipoprotein cholesterol in plasma, without use of the preparative ultracentrifuge. Clin Chem 1972; 18(6): 499-502. 

  25. Bligh EG, Dyer WJ. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem Physiol 1959; 37(8): 911-917. 

  26. Lee MS, Kim Y. Mulberry fruit extract ameliorates adipogenesis via increasing AMPK activity and downregulating microRNA-21/143 in 3T3-L1 adipocytes. J Med Food 2020; 23(3): 266-272. 

  27. Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2 -ΔΔC(T) method. Methods 2001; 25(4): 402-408. 

  28. Lee MS, Kim Y. Chrysanthemum morifolium flower extract inhibits adipogenesis of 3T3-L1 cells via AMPK/SIRT1 pathway activation. Nutrients 2020; 12(9): 2726. 

  29. Jia Q, Cao H, Shen D, Li S, Yan L, Chen C, et al. Quercetin protects against atherosclerosis by regulating the expression of PCSK9, CD36, PPARγ, LXRα and ABCA1. Int J Mol Med 2019; 44(3): 893-902. 

  30. Jeong SM, Kang MJ, Choi HN, Kim JH, Kim JI. Quercetin ameliorates hyperglycemia and dyslipidemia and improves antioxidant status in type 2 diabetic db/db mice. Nutr Res Pract 2012; 6(3): 201-207. 

  31. Li X, Wang R, Zhou N, Wang X, Liu Q, Bai Y, et al. Quercetin improves insulin resistance and hepatic lipid accumulation in vitro in a NAFLD cell model. Biomed Rep 2013; 1(1): 71-76. 

  32. Kamohara T, Koshiguchi M, Maeda-Yamamoto M, Shinoda Y, Kametani N, Hirai S, et al. The combination of 'Benifuuki' with quercetin suppresses hepatic fat accumulation in high-fat high-cholesterol diet-fed rats. J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo) 2019; 65(2): 196-201. 

  33. Jayachandran M, Zhang T, Wu Z, Liu Y, Xu B. Isoquercetin regulates SREBP-1C via AMPK pathway in skeletal muscle to exert antihyperlipidemic and anti-inflammatory effects in STZ induced diabetic rats. Mol Biol Rep 2020; 47(1): 593-602. 

  34. Zhang F, Feng J, Zhang J, Kang X, Qian D. Quercetin modulates AMPK/SIRT1/NF-κB signaling to inhibit inflammatory/oxidative stress responses in diabetic high fat diet-induced atherosclerosis in the rat carotid artery. Exp Ther Med 2020; 20(6): 280. 

  35. Lu J, Wu DM, Zheng YL, Hu B, Zhang ZF, Shan Q, et al. Quercetin activates AMP-activated protein kinase by reducing PP2C expression protecting old mouse brain against high cholesterol-induced neurotoxicity. J Pathol 2010; 222(2): 199-212. 

  36. Najjary S, Mohammadzadeh R, Mokhtarzadeh A, Mohammadi A, Kojabad AB, Baradaran B. Role of miR-21 as an authentic oncogene in mediating drug resistance in breast cancer. Gene 2020; 738: 144453. 

  37. Seeger T, Fischer A, Muhly-Reinholz M, Zeiher AM, Dimmeler S. Long-term inhibition of miR-21 leads to reduction of obesity in db/db mice. Obesity (Silver Spring) 2014; 22(11): 2352-2360. 

  38. Cao Y, Hu J, Sui J, Jiang L, Cong Y, Ren G. Quercetin is able to alleviate TGF-β-induced fibrosis in renal tubular epithelial cells by suppressing miR-21. Exp Ther Med 2018; 16(3): 2442-2448. 

  39. Yang FQ, Liu M, Li W, Che JP, Wang GC, Zheng JH. Combination of quercetin and hyperoside inhibits prostate cancer cell growth and metastasis via regulation of microRNA-21. Mol Med Rep 2015; 11(2): 1085-1092. 

저자의 다른 논문 :

관련 콘텐츠

오픈액세스(OA) 유형

GOLD

오픈액세스 학술지에 출판된 논문

이 논문과 함께 이용한 콘텐츠

저작권 관리 안내
섹션별 컨텐츠 바로가기

AI-Helper ※ AI-Helper는 오픈소스 모델을 사용합니다.

AI-Helper 아이콘
AI-Helper
안녕하세요, AI-Helper입니다. 좌측 "선택된 텍스트"에서 텍스트를 선택하여 요약, 번역, 용어설명을 실행하세요.
※ AI-Helper는 부적절한 답변을 할 수 있습니다.

선택된 텍스트

맨위로