[논문]긴병꽃풀(Glechoma hederacea var. longituba) ethyl acetate 분획물의 항염증 활성 및 B16F10 세포의 멜라닌 생성에 미치는 영향

염현지; 오민정; 채정우; 이진영

doi:10.5352/jls.2022.32.3.222

긴병꽃풀(Glechoma hederacea var. longituba) ethyl acetate 분획물의 항염증 활성 및 B16F10 세포의 멜라닌 생성에 미치는 영향
The Effects on Melanogenesis in B16F10 Melanoma Cells and the Anti-inflammatory Activities of an Ethyl Acetate Fraction from Glechoma hederacea var. longituba 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.32 no.3, 2022년, pp.222 - 231

염현지 (호서대학교 화장품생명공학부) , 오민정 (호서대학교 화장품생명공학부) , 채정우 (경기도산림환경연구소) , 이진영 (호서대학교 화장품생명공학부)

초록
AI-Helper

본 연구는 긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물의 미백 및 항염증 활성 검증을 통해 화장품 소재로서의 활용 가능성을 확인하고자 하였다. 전자공여능과 ABTS⁺ radical 소거능 측정 결과 최고 농도인 1,000 ㎍/ml에서 각각 89.6%, 88.7%의 활성을 확인할 수 있었다. Tyrosinase 저해활성 측정 결과 최고 농도인 1,000 ㎍/ml에서 ethyl acetate 분획물은 22.3%의 억제활성을 나타내었다. 세포 생존율 측정 결과, 멜라노마 세포와 대식세포에 대해 긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물을 처리한 모든 구간에서 80% 이상의 생존율을 보였다. 긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물의 단백질 및 mRNA 발현량을 측정하기 위한 western blot과 RT-PCR의 농도구간은 25, 50, 100 ㎍/ml으로 설정하였다. 그 결과 분획물의 농도가 증가함에 따라 발현양이 감소됨을 확인하였으며 미백관련 인자 MITF와 TRP-2의 단백질 발현 억제율이 대조군인 kojic acid에 비해 우수하였고, tyrosinase에 대해서는 100 ㎍/ml에서 29.1%의 가장 낮은 발현량을 보여 매우 뛰어난 mRNA 발현 억제를 확인할 수 있었다. Pro-inflammatory cytokine인 IL-1β, IL-6 및 TNF-α의 단백질 및 mRNA 발현량에 미치는 영향을 확인한 결과, IL-6와 TNF-α의 인자가 같은 농도의 대조군인 Vit. C에 비해 높은 단백질 및 mRNA 억제율을 나타내었다. 이러한 실험결과를 기반으로 긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물이 기능성 소재로서의 활용 가능성을 확인함으로써 화장품에 천연 소재로서 응용할 수 있을 것이라 판단되었다.

Abstract ▼ AI-Helper

This study aimed to confirm the possibility of being used as a cosmetic material material through the verification of the whitening and anti-inflammatory activities of an ethyl acetate fraction from Glechoma hederacea var. longituba (GHEA). The observed electron donating and ABTS+ radical scavenging abilities of GHEA were 89.6% and 88.7%, respectively, at 1,000 ㎍/ml concentration, with a tyrosinase inhibitory effect of 22.3% at the same concentration. For cell viability, a rate of 80% or more was observed in all concentrations that treated GHEA on melanoma and macrophage cells. Protein and mRNA expression inhibition was measured by Western blot and RT-PCR for 25, 50, and 100 ㎍/ ml concentrations, and it was confirmed that expression decreases in a concentration-dependent manner as GHEA concentration increases. The inhibition of the whitening-related factors MITF and TRP-2 were superior following GHEA treatment than those of the control group treated with kojic acid of 100 ㎍/ml concentration. For tyrosinase, the lowest mRNA expression rate was 29.1% at 100 ㎍/ml which confirmed excellent inhibition. In analyzing the effects of pro-inflammatory cytokines IL-1β, IL-6, and TNF-α on protein and mRNA expression, IL-6 and TNF-α showed high protein and mRNA inhibition compared to a vitamin C control group. Based on these experimental results, GHEA could be applied as a natural cosmetic material.

주제어

표/그림 (10)

표 Table 1. Sequence of the primers used for RT-PCR
$Fig. 1. Electron donating ability of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction. Electron donating ability for Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction from various concentration was determined with 0.2 mM DPPH ethanolic solution. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.$ 그림 Fig. 1. Electron donating ability of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction. Electron donating ability for Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction from various concentration was determined with 0.2 mM DPPH ethanolic solution. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.
$Fig. 2. ABTS+ radical scavenging activity of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction. ABTS+ radical scavenging activity for Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction from various concentration was determined with ABTS+ radical solution. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.$ 그림 Fig. 2. ABTS⁺ radical scavenging activity of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction. ABTS⁺ radical scavenging activity for Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction from various concentration was determined with ABTS⁺ radical solution. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.
$Fig. 3. Inhibition rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on tyrosinase. Inhibition rate of tyrosinase for Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction from various concentration was determined with 200 U/ml mushroom tyrosinase solution. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.$ 그림 Fig. 3. Inhibition rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on tyrosinase. Inhibition rate of tyrosinase for Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction from various concentration was determined with 200 U/ml mushroom tyrosinase solution. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.
$Fig. 4. Cell viability of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on melanoma cell (B16F10). B16F10 cells were incubated for 24 hr in DMEM containing 10% FBS, were treated with various concentrations of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and cell viability was measured by MTT reagent. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.$ 그림 Fig. 4. Cell viability of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on melanoma cell (B16F10). B16F10 cells were incubated for 24 hr in DMEM containing 10% FBS, were treated with various concentrations of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and cell viability was measured by MTT reagent. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.
$Fig. 5. Cell viability of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on macrophage cell (Raw 264.7). Raw 264.7 cells were incubated for 24 hr in DMEM containing 10% FBS, were treated with various concentrations of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and cell viability was measured by MTT reagent. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.$ 그림 Fig. 5. Cell viability of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on macrophage cell (Raw 264.7). Raw 264.7 cells were incubated for 24 hr in DMEM containing 10% FBS, were treated with various concentrations of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and cell viability was measured by MTT reagent. Each values represents mean ± SD of three individual experiments.
$Fig. 6. MITF, TRP-1, TRP-2 and tyrosinase protein expression rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on melanoma cell (B16F10). B16F10 cells were incubated for 24 hr in DMEM, were treated with 25, 50 and 100 μg/ml concentration of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and then total protein was isolated. MITF, TRP-1, TRP-2 and tyrosinase protein level was determined by Western blot. CON: control, treated with α-MSH; NOR: normal, not treated with α-MSH. The results were expressed as the average of triplicate samples.$ 그림 Fig. 6. MITF, TRP-1, TRP-2 and tyrosinase protein expression rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on melanoma cell (B16F10). B16F10 cells were incubated for 24 hr in DMEM, were treated with 25, 50 and 100 μg/ml concentration of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and then total protein was isolated. MITF, TRP-1, TRP-2 and tyrosinase protein level was determined by Western blot. CON: control, treated with α-MSH; NOR: normal, not treated with α-MSH. The results were expressed as the average of triplicate samples.
$Fig. 7. IL-1β, IL-6, TNF-α protein expression rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on macrophage cell (Raw 264.7). Raw 264.7 cells were incubated for 24 hr in DMEM, were treated with 25, 50 and 100 μg/ml concentration of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and then total protein was isolated. IL-1β, IL-6, TNF-α protein level was determined by Western blot. CON: control, treated with LPS; NOR: normal, not treated with LPS. The results were expressed as the average of triplicate samples.$ 그림 Fig. 7. IL-1β, IL-6, TNF-α protein expression rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on macrophage cell (Raw 264.7). Raw 264.7 cells were incubated for 24 hr in DMEM, were treated with 25, 50 and 100 μg/ml concentration of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and then total protein was isolated. IL-1β, IL-6, TNF-α protein level was determined by Western blot. CON: control, treated with LPS; NOR: normal, not treated with LPS. The results were expressed as the average of triplicate samples.
$Fig. 8. MITF, TRP-1, TRP-2 and tyrosinase mRNA expression rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on melanoma cell (B16F10). B16F10 cells were incubated for 24 hr in DMEM, were treated with 25, 50 and 100 μg/ml concentration of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and then total RNA was isolated. MITF, TRP-1, TRP-2 and tyrosinase mRNA level was determined by RT-PCR. CON: control, treated with α-MSH; NOR: normal, not treated with α-MSH. The results were expressed as the average of triplicate samples.$ 그림 Fig. 8. MITF, TRP-1, TRP-2 and tyrosinase mRNA expression rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on melanoma cell (B16F10). B16F10 cells were incubated for 24 hr in DMEM, were treated with 25, 50 and 100 μg/ml concentration of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and then total RNA was isolated. MITF, TRP-1, TRP-2 and tyrosinase mRNA level was determined by RT-PCR. CON: control, treated with α-MSH; NOR: normal, not treated with α-MSH. The results were expressed as the average of triplicate samples.
$Fig. 9. IL-1β, IL-6, TNF-α mRNA expression rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on macrophage cell (Raw 264.7). Raw 264.7 cells were incubated for 24 hr in DMEM, were treated with 25, 50 and 100 μg/ml concentration of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and then total RNA was isolated. IL-1β, IL-6, TNF-α mRNA level was determined by RT-PCR. CON: control, treated with LPS; NOR: normal, not treated with LPS. The results were expressed as the average of triplicate samples.$ 그림 Fig. 9. IL-1β, IL-6, TNF-α mRNA expression rate of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction on macrophage cell (Raw 264.7). Raw 264.7 cells were incubated for 24 hr in DMEM, were treated with 25, 50 and 100 μg/ml concentration of Glechoma hederacea var. longituba ethyl acetate fraction for 24 hr and then total RNA was isolated. IL-1β, IL-6, TNF-α mRNA level was determined by RT-PCR. CON: control, treated with LPS; NOR: normal, not treated with LPS. The results were expressed as the average of triplicate samples.

AI 본문요약
AI-Helper

문제 정의

현재 긴병꽃풀의 정유에 대한 연구 결과[17, 26]와 금전초 관련으로는 항산화 및 세포보호 효과[10], 염증성 세포 활성들 의 생성 조절에 관한 연구[20] 등의 다양한 연구결과가 있으나, 긴병꽃풀의 특정 분획물에 대한 기능성 활성 관련 연구는 미 흡한 실정으로 본 연구에서는 긴병꽃풀의 ethyl acetate 분획 물을 이용하여 피부 미백 및 항염증 활성을 확인함으로써 기 능성 화장품의 천연 소재로서의 활용 가능성을 알아보고자 하였다.

제안 방법

긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물이 melanin 합성에 관계된 인자인 MITF, TRP-1, TRP-2 및 tyrosinase에 미치는 영향을 알아보기 위하여 B16F10 mouse melanoma cell에 25, 50, 100 μg/ml의 분획물을 농도별로 처리한 후 control은 자극제인 α-MSH를 처리하여 melanin을 과발현시키고, normal 부분에 는 α-MSH를 처리하지 않는 구간으로 설정하였다
미백관련 인자인 MITF, TRP-1, TRP-2 및 tyrosinase 인자에 대해 긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물이 mRNA 발현양에 미치 는 영향을 측정하기 위해 reverse transcription-PCR을 진행하 였으며 이때 GAPDH을 positive control로 사용하였다. Melanoma cell인 B16F10에 분획물을 25, 50, 100 μg/ml의 농도로 처리하여 진행하였으며, 그 결과 Fig.
염증유발 인자인 LPS로 염증이 유도된 Raw 264.7 cell에서 긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물이 IL-1β, IL-6 및 TNF-α 인자의 mRNA 발현량에 미치는 영향을 RT-PCR을 통해 확인하였다
전자공여능(electron donating ability, EDA)은 Blois의 방법 [1]을 변형하여 측정하였다. 각각의 농도별로 조제한 추출물 120 μl와 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH)를 100% ethanol에 용해한 용액을 60 μl씩 96-well plate에 넣고 혼합한 후 실온의 암실에서 15분간 반응시켜 microplate reader를 이용 하여 517 nm에서 흡광도를 측정하였다.

대상 데이터

본 실험에 사용된 melanoma cell인 B16F10과 macrophage cell인 Raw 264.7은 American Type Culture Collection (ATCC, USA)에서 분양받아 사용하였다. 10%의 FBS와 1%의 penicillin/streptomycin (100 U/ml)을 첨가한 DMEM 배지를 사용하여 37℃의 온도와 5% CO2 조건 하의 incubator에서 계 대 배양하였다.
본 실험에 사용된 긴병꽃풀은 경기도 오산시에 위치한 물향 기수목원 내에 자생하고 있는 것을 5~9월경에 채취하였으며 세척 후 건조한 뒤 파쇄하여 시료 중량의 10배수에 해당하는 70% ethanol을 넣고 24시간 실온에서 침지하여 추출하였다. 이후 침전물과 상등액을 분리하여 3회 반복 추출하였으며 여 과지(Whatman No.
본 연구에서 세포 배양 및 세포 독성 측정에 사용된 melanoma cell인 B16F10와 macrophage cell인 Raw 264.7은 American Type Culture Collection (ATCC, USA)에서 구입하여 사용하였다. 세포 배양을 위해 사용한 penicillin/streptomycin, fetal bovine serum (FBS), dulbecco`s modified eagle medium (DMEM), phosphate buffered saline (PBS)와 trypsin 은 Thermo Fisher Scientific (HyCloneTM, USA)에서 구입하였으며, dimethyl sulfoxide (DMSO)는 BioShop (Canada)에서 구입하였고 3-[4,5-dimethylthiazol-2-yl]-2,5-diphenyl-tetrazolium bromide (MTT)는 Sigma-Aldrich Corporation (USA)에서 구입하여 사용하였다.

이론/모형

ABTS+ radical이 탈색되는 원리를 이용한 항산화 활성 측정 방법인 ABTS+ decolorization assay [27]에 의하여 측정하였 다. 7 mM의 2,2-azino-bis(3-ethyl-benthiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS) 용액에 2.
Tyrosinase 저해활성 측정은 Yagi 등의 방법[30]에 따라 실 험을 실시하였다. 반응구는 농도별 시료용액 40 μl와 67 mM의 sodium phosphate buffer (pH 6.
대식세포인 Raw 264.7 세포에서 긴병꽃풀 ethyl acetate 분 획물이 pro-inflammatory cytokine인 IL-1β, IL-6 및 TNF-α의 단백질 발현량에 미치는 영향을 알아보기 위하여 Western blot을 진행하였다
세포에 대한 시료의 독성을 확인하기 위하여 Carmichael의 방법[2]에 따라 실험을 실시하였다. Melanoma cell (B16F10)과 macrophage cell (Raw 264.

성능/효과

이러한 방법으로 긴병꽃풀 70% ethanol 추출물을 이용하여 ethyl acetate 분획을 통해 얻은 분획물의 항산화 활성을 확인하기 위해 전자공여능을 측정한 결과, Fig. 1과 같이 나타났으며 ethyl acetate 분획물의 농도가 증가함에 따라 전자공여능이 증가하는 것을 확인할 수 있었 다. 100 μg/ml에서 50% 이상의 활성을 나타내었고 최고 농도 인 1,000 μg/ml에서 89.
6과 같이 긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물 을 25, 50, 100 μg/ml의 농도별로 처리한 B16F10 군에서 αMSH에 의해 증가된 MITF, TRP-1, TRP-2 및 tyrosinase의 단 백질 발현양이 분획물의 농도가 증가함에 따라 감소된 것을 확인할 수 있었다
7과 같이 긴병꽃풀 ethyl acetate 분획물이 농도 의존적으로 단백질이 억제됨을 보였으 며, LPS에 의해 증가된 IL-1β, IL-6 및 TNF-α의 단백질 발현양 이 감소된 것을 확인할 수 있었다
MITF, TRP-1, TRP-2 및 tyrosinase의 mRNA 발현 양이 분획물의 농도가 증가함에 따라 억제됨을 확인하였으며 대조군인 kojic acid에 비해 MITF와 TRP-1 인자에서 우수한 mRNA 억제를 보였고 tyrosinase에 대해서는 100 μg/ml에서 가장 낮은 29.1%의 발현량을 보여 매우 뛰어난 mRNA 발현 억제를 나타내어 미백 기능성화장품 소재로서의 활용 가능성 을 확인할 수 있었다.
따라서 긴병꽃풀 ethyl actate 분획물은 melanoma cell과 macrophage cell에 대해 독 성이 미비하다고 판단하였으며, 이하의 Western blot과 RT-PCR의 실험에서는 melanoma cell과 macrophage cell에서 모 두 90% 이상의 생존율을 나타낸 25, 50, 100 μg/ml의 농도구간 으로 설정하여 실험을 진행하였다.
C에 비해 높은 억제율을 나타내었다. 본 연구 결과에 의해 긴 병꽃풀 ethyl acetate 분획물이 염증 억제에 대한 활용 가능성 이 있음을 확인할 수 있었다.
분획물의 농도가 증가함에 따라 ABTS+ radical 소거활성이 증가하였으 며 최고 농도인 1,000 μg/ml에서 88.7%의 소거능을 나타냈다
5와 같 이 나타났다. 시료용액의 농도가 증가함에 따라 세포의 생존 율이 감소하였으나, 모든 농도구간에서 80% 이상의 세포 생존 율을 확인할 수 있었으며, 특히 macrophage cell에서 95% 이 상의 높은 생존율을 확인할 수 있었다. 따라서 긴병꽃풀 ethyl actate 분획물은 melanoma cell과 macrophage cell에 대해 독 성이 미비하다고 판단하였으며, 이하의 Western blot과 RT-PCR의 실험에서는 melanoma cell과 macrophage cell에서 모 두 90% 이상의 생존율을 나타낸 25, 50, 100 μg/ml의 농도구간 으로 설정하여 실험을 진행하였다.

참고문헌 (32)

Blois, M. S. 1958. Antioxidant determination by the use of a stable free radical. Nature 181, 1199-1120.

상세보기
Carmichael, J., DeGraff, W. G., Gazdar, A. F., Minna, J. D. and Mitchell, H. B. 1987. Evaluation of a tetrazolium based semiautomated colorimetric assay: assessment of chemosensitivity testing. Cancer Res. 47, 936-942.

상세보기
Cho, Y. H., Kim, H. J., Kim, D. I., Jang, J. Y., Kwak, J. H., Shin, Y. H., Cho, Y. G. and An, B. J. 2015. Effect of garlic (Allium sativum L.) stems on inflammatory cytokines, iNOS and COX-2 expressions in Raw 264.7 cells induced by lipopolysaccharide. Kor. J. Food Preserv. 22, 613-621.

원문보기 상세보기
Chun, H. J., Hwang, S. G., Lee, J. S., Baek, S. H., Jeon, B. H. and Woo, W. H. 2002. Inhibitory effects of butyl alcohol extract from Caesalpinia sappan L. on melanogenesis in melan-a cells. Kor. J. Pharmacogn. 33, 130-136.
Hwang, C. R., Shin, J. H., Kang, M. J., Lee, S. J. and Sung, N. J. 2012. Antioxidant and antiobesity activity of solvent fractions from red garlic. J. Life Sci. 22, 950-957

원문보기 상세보기
Hyun, J. M., Park, K. J., Kim, S. S., Park, S. M., Lee, Y. J. and An, H. J. 2015. Antioxidant and anti-inflammatory effects of solvent fractions from the peel of the native Jeju citrus 'Hongkyool' and 'Pyunkyool'. J. Life Sci. 25, 1132-1138.

원문보기 상세보기
Jeong, S. J., Kim, K. H. and Yook, H. S. 2015. Whitening and antioxidant activities of solvent extracts from hot-air dried Allium hookeri. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 44, 832-839.

원문보기 상세보기
Jo, J. B., Kim, M. U., Lee, E. H., Kim, Y. J., Cho, E. B., Kang, I. K. and Cho, Y. J. 2018. Whitening effect of extracts from Matricaria chamomilla L. with B16F10 melanoma cells. J. Appl. Biol. Chem. 61, 267-273.

원문보기 상세보기
Jun, Y. J., Lee, S., Heo, S. and Jin, B. S. 2019. Functional characterization of the extracts from Nipa palm, Molokhia, and Finger root for cosmetic ingredients. J. Kor. Appl. Sci. Technol. 36, 821-829.
Kim, A. R., Jung, M. C., Jeong, H. I., Song, D. G., Seo, Y. B., Jeon, Y. H., Park, S. H., Shin, H. S., Lee, S. L. and Park, S. N. 2018. Antioxidative and cellular protective effects of Lysimachia christinae Hance extract and fractions. Appl. Chem. Eng. 29, 176-184.

원문보기 상세보기
Kim, D. H., Moon, Y. S., Park, T. S., Hwang, J. Y. and Son, J. H. 2013. Potent whitening activity of Aruncus dioicus extract in B16F10 melanoma cell by suppression of melanin biosynthesis. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 31, 813-820.
Kim, H. S. and Ko, K. S. 2020. Antioxidant and anti-inflammatory effects of Ginseng berry ethanol extracts as a cosmetic ingredient. Asian J. Beauty Cosmetol. 18, 389-387.

상세보기
Kim, M. K. and Kim, D. Y. 2015. Anti-inflammatory effect of barley leaf ethanol extract in LPS-stimulated RAW264.7 macrophage. Kor. J. Food Preserv. 22, 735-743.

원문보기 상세보기
Kim, M. S., Kim, K. H. and Yook, H. S. 2012. Antioxidative effects of Campanula takesimana Nakai extract. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 41, 1331-1337.

원문보기 상세보기
Kim, O. K. 2004. Antidiabetic effect of Glechoma hederacea LINNAEUS in streptozotocin-induced diabetic rats. Kor. J. Pharmacogn. 34, 300-308.
Kim, P. K., Jung, K. I., Choi, Y. J. and Gal, S. W. 2017. Anti-inflammatory effects of lemon myrtle (Backhousia citriodora) leaf extracts in LPS-induced RAW 264.7 cells. J. Life Sci. 27, 986-993.

원문보기 상세보기
Kim, S., Kim, H. Y., Hwang, K. H. and Chun, I. J. 2008. Herbicidal activity of essential oil from Glechoma hederacea. Kor. J. Weed Sci. 28, 152-160.
Lee, E. J., Seo, Y. M., Kim, Y. H., Chung, C., Sung, H. J., Sohn, H. Y., Park, J. Y. and Kim, J. S. 2019. Anti-inflammatory activities of ethanol extracts of dried Lettuce (Lactuca sativa L.). J. Life Sci. 29, 325-331.

원문보기 상세보기
Lee, G. W., Lee, J. Y. and Cho, Y. H. 2010. Whitening effect of the extracts from Juglans mandshurica. KSBB J. 25, 18-24.
Lee, H. J. 2004. Inhibitory effect of nitric oxide productionof Lysimachiae christinae. Master's Thesis Dissertation, Wonkwang University, Jeonrabukdo, Korea.
Lee, H. J. and Lim, M. H. 2020. Whitening activities of extracts of seomaeyakssuk (Artemisia argyi H.). J. Kor. Appl. Sci. Technol. 37, 241-249.
Lim, S. B., Park, K. T., Lee, E. H., Kim, B. O., Lee, S. H., Kang, I. K. and Cho, Y. J. 2017. Quality characteristics and biological activity of Yanggaeng with Glechoma hederacea var. longituba Nakai powder. Kor. J. Food Preserv. 24, 206-214.

원문보기 상세보기
Lee, S. H., Kim, S. Y., Kim, J. J., Jang, T. S. and Chung, S. R. 1999. The isolation of the inhibitory constitutents on melanin polymer formation from the leaves of Cercis chinensis. Kor. J. Pharmacogn. 30, 397-403.
Oh, H. K. 2020. Antioxidant and anti-inflammatory activities of different parts of Ixeris dentata according to extract methods. J. Kor. Appl. Sci. Technol. 37, 1567-1574.

원문보기 상세보기
Park, S. J., Kwon, S. P. and Rha, Y. A. 2017. Antioxidative activities and whitening effects of ethanol extract from Crataegus pinnatifida bunge fruit. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 46, 1158-1163.

원문보기 상세보기
Park, Y. H., Lim, S. H., Kim, H. Y., Kim, K. H. and Kim, S. 2009. Comparison of compounds on the essential oil in G. hederacea var. longituba Nakai by fertilizer treatment. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 27, 171.
Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M. and Rice-Evans, C. 1999. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic. Biol. Med. 26, 1231-1237.

상세보기
Sim, J. H., Lee, K. M., Park, T., Kang, M. S., Hong, H. and Kim, S. Y. 2021. Biorenovation-assisted modifiction of Ligustrum japonicum extract for skin-whitening effect. KSBB J. 36, 30-35.

상세보기
Woo, H. S., Lee, S. M., Heo, J. D., Lee, M. S., Kim, Y. S. and Kim, D. W. 2018. Anti-inflammatory activity of extracts of Hovenia dulcis on lipopolysaccharides-stimulated RAW 264.7 cells. Kor. J. Plant Res. 31, 466-477.

원문보기 상세보기
Yagi, A., Kanbara, T. and Morinobu, N. 1987. Inhibition of mushroom-tyrosinase by Aloe extract. Planta Med. 53, 515-517.

상세보기
You, S. H. 2017. Antioxidant activity and whitening activity of Psidium guajava leaf extract. J. Oil Appl. Sci. 34, 296-304.

원문보기 상세보기
Yu, H. A. and Kim, C. D. 2017. Applicability of Lindera obtusiloba flower extracts as cosmetic ingredients. Asian J. Beauty Cosmetol. 15, 132-144.

상세보기

저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

내보내기 구분	파일저장 인쇄 메일전송
구성항목	기본정보 상세정보 관리번호, 논문명, 저널/프로시딩명, 저자 , 발행년, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, 발행기관 관리번호, 논문명, 대등논문명, 저자 , 저널/프로시딩명, 발행기관, 발행년, 발행언어, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, ISBN, ISSN, 주제분야, 키워드, 초록(한글), 초록(영문), 저자(소속기관)
저장형식	Text(ASCII format) Excel format RefWorks Direct Export RIS format (for Reference Manager, ProCite, EndNote), Scholar's Aids, Mendeley
메일정보	받는사람 (필수) @ 보내는사람 (선택) @ 제목 내용 KISTI 검색결과 이메일 서비스
안내	총 건의 자료가 검색되었습니다. 다운받으실 자료의 인덱스를 입력하세요. (1-10,000) 검색결과의 순서대로 최대 10,000건 까지 다운로드가 가능합니다. 데이타가 많을 경우 속도가 느려질 수 있습니다.(최대 2~3분 소요) 다운로드 파일은 UTF-8 형태로 저장됩니다. 파일의 내용이 제대로 보이지 않을실 때는 웹브라우저 상단의 보기 -> 인코딩 -> 자동선택 여부를 확인하십시오. ~ Text(ASCII format) Excel format