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아그로박테리움 형질전환법을 이용한 수량증대 유채 식물체 개발
Agrobacterium-mediated transformation produces transgenic oilseed rape with a high-yield trait 원문보기

Journal of plant biotechnology = 식물생명공학회지, v.50, 2023년, pp.63 - 69  

김종보 (건국대학교 글로컬캠퍼스 의료생명대학 생명공학과)

초록
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본 연구는 유채(Brassica napus L.)의 배축을 이용하여 수량 증대 유전자인 ORE7 그리고 선발유전자로 제초제저항성을 나타내는 bar 유전자를 Agrobacterium 기법을 이용하여 형질전환 하였다. 효율적인 유채형질전환 기법을 확립하기 위해 한국 유채 '영산' 품종의 배축 절편체를 이용하여 Agrobacterium 접종 시, 20분간의 접종시간 그리고 3일간의 공동배양기간을 적용할 때 100개의 접종된 배축 절편체들로부터 약 32-36개 개체가 PPT (Phosphinothrixin) 20 mg/l 첨가된 선발배지에서 생존하여 높은 형질전환 효율을 보여주었다. 또한 본 연구에서 도입된 선발 및 생산성 증대 유전자 도입 여부를 확인하기 위해 PCR을 수행하여 도입여부를 확인하였다. 또한 생산성 증대 유전자 ORE 7 유전자와 같이 도입된 bar 유전자의 발현여부를 확인하기 위해 0.5% Basta 용액에 처리한 결과, 제초제저항성 형질이 발현됨을 확인하였다. 본 연구결과를 통해 향후 국내 유채품종을 대상으로 Agrobacterium을 이용하여 제초제 저항성, 건조저항성. 생산성 증대 형질 그리고 오일함량 증대 등의 유용형질 개량에 이용되리라 판단된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study includes the transformation of genes such as ORE7, the increase of gene expression, and the use of the bar gene as a selectable marker that shows herbicide resistance with Agrobacterium tumefaciens using hypocotyls from the oilseed rape "Youngsan" cultivar. To establish an Agrobacterium t...

주제어

참고문헌 (31)

  1. Boszoradova, Eva, Libantova, Jana, Matusikova, Ildiko, Poloniova, Zuzana, Jopcik, Martin, Berenyi, Maria, Moravcikova, Jana. Agrobacterium-mediated genetic transformation of economically important oilseed rape cultivars. Plant cell, tissue and organ culture, vol.107, no.2, 317-323.

  2. Burbulis, Natalija, Kuprienė, Ramunė, Blinstrubienė, Aušra. Callus induction and plant regeneration from somatic tissue in spring rapeseed (Brassica napus L.). Biologija = Biology, vol.54, no.4, 258-263.

  3. Cardoza, V., Stewart Jr., C. N.. Increased Agrobacterium-mediated transformation and rooting efficiencies in canola (Brassica napus L.) from hypocotyl segment explants. Plant cell reports, vol.21, no.6, 599-604.

  4. Cegielska-Taras, Teresa, Pniewski, Tomasz, Szała, Laurencja. Transformation of microspore-derived embryos of winter oilseed rape (Brassica napus L.) by usingAgrobacterium tumefaciens. Journal of applied genetics, vol.49, no.4, 343-347.

  5. De Block, Marc, De Brouwer, Dirk, Tenning, Paul. Transformation of Brassica napus and Brassica oleracea Using Agrobacterium tumefaciens and the Expression of the bar and neo Genes in the Transgenic Plants. Plant physiology, vol.91, no.2, 694-701.

  6. Fry, Joyce, Barnason, Arlene, Horsch, Robert B.. Transformation of Brassica napus with Agrobacterium tumefaciens based vectors. Plant cell reports, vol.6, no.5, 321-325.

  7. Jonoubi, P., Mousavi, A., Majd, A., Salmanian, A.H., Jalali Javaran, M., Daneshian, J.. Efficient regeneration of Brassica napus L. hypocotyls and genetic transformation by Agrobacterium tumefaciens. Biologia plantarum, vol.49, no.2, 175-180.

  8. Kahrizi, Danial, Salmanian, Ali Hatef, Afshari, Afsoon, Moieni, Ahmad, Mousavi, Amir. Simultaneous substitution of Gly96 to Ala and Ala183 to Thr in 5-enolpyruvylshikimate-3-phosphate synthase gene of E. coli (k12) and transformation of rapeseed (Brassica napus L.) in order to make tolerance to glyphosate. Plant cell reports, vol.26, no.1, 95-104.

  9. Kim CS, Lee SH (2006) Economic analysis of a Rape production for Biodiesel. Kor J Organ Agri 14(3):237-249 

  10. 김효진, 이혜진, 고영삼, 노경희, 이영화, 장영석, 서미정. 한국 고유의 품종을 이용한 제초제 저항성 유채 개발. Journal of plant biotechnology = 식물생명공학회지, vol.37, no.3, 319-326.

  11. Kim KM, Sohn JK, Chung JD (1997) Transformation of Brassica napus via Agrobacterium vector: plant regeneration and progeny analysis. Kor J Plant Tiisue Cult 24(5):269-272 

  12. Knutzon, D S, Thompson, G A, Radke, S E, Johnson, W B, Knauf, V C, Kridl, J C. Modification of Brassica seed oil by antisense expression of a stearoyl-acyl carrier protein desaturase gene.. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, vol.89, no.7, 2624-2628.

  13. Lee, Kyeong-Ryeol, Kim, Eun-Ha, Roh, Kyung Hee, Kim, Jong-Bum, Kang, Han-Chul, Go, Young Sam, Suh, Mi Chung, Kim, Hyun Uk. High-oleic oilseed rapes developed with seed-specific suppression of FAD2 gene expression. Applied Biological Chemistry = 한국응용생명화학회지, vol.59, no.4, 669-676.

  14. 이상일, 김윤혜, 이동희, 이유미, 박서준, 김종보. 유채 조직배양 및 형질전환 연구동향. Journal of plant biotechnology = 식물생명공학회지, vol.37, no.4, 379-387.

  15. Lehmann, Przemyslaw, Jenner, Carol E., Kozubek, Edward, Greenland, Andrew J., Walsh, John A.. Coat protein-mediated resistance to Turnip mosaic virus in oilseed rape (Brassica napus). Molecular breeding : new strategies in plant improvement, vol.11, no.2, 83-94.

  16. Xu, Li, Zeng, Lingyi, Ren, Li, Chen, Wang, Liu, Fan, Yang, Huan, Yan, Ruibing, Chen, Kunrong, Fang, Xiaoping. Marker-free lines of phytase-transgenic Brassica napus show enhanced ability to utilize phytate. Plant cell, tissue and organ culture, vol.140, no.1, 11-22.

  17. Lim, Pyung Ok, Kim, Yumi, Breeze, Emily, Koo, Ja Choon, Woo, Hye Ryun, Ryu, Jong Sang, Park, Don Ha, Beynon, Jim, Tabrett, Alex, Buchanan-Wollaston, Vicky, Nam, Hong Gil. Overexpression of a chromatin architecture-controlling AT-hook protein extends leaf longevity and increases the post-harvest storage life of plants. The Plant journal : for cell and molecular biology, vol.52, no.6, 1140-1153.

  18. Moloney, Maurice M., Walker, Janis M., Sharma, Kiran K.. High efficiency transformation ofBrassica napus usingAgrobacterium vectors. Plant cell reports, vol.8, no.4, 238-242.

  19. Murashige, Toshio, Skoog, Folke. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures. Physiologia plantarum, vol.15, no.3, 473-497.

  20. Ovesná, J., Ptáček, L., Opatrný, Z.. Factors influencing the regeneration capacity of oilseed rape and cauliflower in transformation experiments. Biologia plantarum, vol.35, no.1,

  21. Pechan, Paul M.. Successful cocultivation of Brassica napus microspores and proembryos with Agrobacterium. Plant cell reports, vol.8, no.7, 387-390.

  22. Radke, S. E., Andrews, B. M., Moloney, M. M., Crouch, M. L., Kridl, J. C., Knauf, V. C.. Transformation of Brassica napus L. using Agrobacterium tumefaciens: developmentally regulated expression of a reintroduced napin gene. TAG. Theoretical and applied genetics. Theoretische und angewandte Genetik, vol.75, no.5, 685-694.

  23. Stewart Jr, C. N., Adang, M. J., All, J. N., Raymer, P. L., Ramachandran, S., Parrott, W. A.. Insect Control and Dosage Effects in Transgenic Canola Containing a Synthetic Bacillus thuringiensis cryIAc Gene. Plant physiology, vol.112, no.1, 115-120.

  24. Thomzik, J.E., Hain, R.. Transgenic Brassica napus plants obtained by cocultivation of protoplasts with Agrobacterium tumefaciens. Plant cell reports, vol.9, no.5,

  25. Voelker, TA, Worrell, AC, Anderson, L, Bleibaum, J, Fan, C, Hawkins, DJ, Radke, SE, Davies, HM. Fatty acid biosynthesis redirected to medium chains in transgenic oilseed plants. Science, vol.257, no.5066, 72-74.

  26. Voelker, Toni A., Hayes, Thomas R., Cranmer, Ann M., Turner, Joann C., Davies, H. Maelor. Genetic engineering of a quantitative trait: metabolic and genetic parameters influencing the accumulation of laurate in rapeseed. The Plant journal : for cell and molecular biology, vol.9, no.2, 229-241.

  27. Wallbraun, M., Sonntag, K., Eisenhauer, C., Krzcal, G., Wang, Y. P.. Phosphomannose-isomerase (pmi) gene as a selectable marker for Agrobacterium-mediated transformation of rapeseed. Plant cell, tissue and organ culture, vol.99, no.3, 345-351.

  28. Wang, Jin, Guo, Cui, Dai, Qilin, Feng, Bin, Zuo, Kaijing, Lin, Min. Salt tolerance conferred by expression of a global regulator IrrE from Deinococcus radiodurans in oilseed rape. Molecular breeding : new strategies in plant improvement, vol.36, no.7, 88-.

  29. Wang, Y. P., Sonntag, K., Rudloff, E., Han, J.. Production of fertile transgenic Brassica napus by Agrobacterium-mediated transformation of protoplasts. Plant breeding : Zeitschrift für Pflanzenzüchtung, vol.124, no.1, 1-4.

  30. Zhang, F.-L., Takahata, Y., Watanabe, M., Xu, J.-B.. Agrobacterium -mediated transformation of cotyledonary explants of Chinese cabbage ( Brassica campestris L. ssp. pekinensis ). Plant cell reports, vol.19, no.6, 569-575.

  31. 10.1007/BF02914068 Zhang Y, Hu J, Han L, Wei W, Guan Z, Cong L, Chai T (2006) Efficient shoot regeneration and Agrobacterium-mediated transformation of Brassica juncea. Plant Mol Bio Rep 24:255a-255i 

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