[논문]발효 미생물에 따른 포도가공 부산물의 항산화 활성 및 항균활성

김경희; 윤영식; 천세영; 육홍선

doi:10.3746/jkfn.2012.41.8.1049

발효 미생물에 따른 포도가공 부산물의 항산화 활성 및 항균활성
Antioxidant and Antibacterial Activities of Grape Pomace Fermented by Various Microorganisms 원문보기

한국식품영양과학회지 = Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, v.41 no.8, 2012년, pp.1049 - 1056

김경희 (충남대학교 식품영양학과) , 윤영식 (충남대학교 식품영양학과) , 천세영 (충남대학교 식품영양학과) , 육홍선 (충남대학교 식품영양학과)

초록
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본 연구에서는 여러 영양성분 및 생리활성 물질 함량이 높은 포도박의 이용가치를 증진시키기 위한 연구의 일환으로 Bacillus subtilis(BS), Lactobacillus plantarum(LP), L. casei(LC), Candida utilis(CU), Saccharomyces cerevisiae strain CHY1011(Y1), S. cerevisiae strain ZP 541(Y2), 혼합 발효(M) 등의 여러 유용 미생물을 이용하여 포도박을 발효시킨 후 미생물별 포도박 발효물에 대한 항산화 활성 변화 및 항균활성을 탐색하였다. 포도박 발효물의 추출수율은 BS(10.74%) 발효물이 가장 높았고, M(9.71%), Y2(9.60%), CU(9.55%), LC(8.68%), Y1(7.49%%), LP(7.36%) 순이었다. 총 phenol 함량 측정 결과 대조군은 발효한 포도박에 비해 유의적(p<0.05)으로 높은 값을 보였으며, 발효 균주 중에서는 LP로 발효한 발효물이 가장 큰 값을 나타내었다. 포도박 발효물의 DPPH radical 소거능을 측정한 결과, 대조군의 $IC_{50}$값이 0.16 mg/mL로 나와 가장 높은 항산화 활성을 보였다. 포도박 발효물의 경우 LP 발효물이 0.28 mg/mL로 가장 높은 항산화 활성은 나타내었다. ABTS radical 소거능은 대조군의 $IC_{50}$값이 0.22 mg/mL로 가장 높게 나왔고, 포도박 발효물의 경우 LP 발효물이 0.53 mg/mL로 가장 높은 활성을 나타내었다. FRAP value(5 mg/mL)는 LP로 발효한 시료가 2.44 mM로 가장 높게 나왔으나 대조군의 $12.27{\pm}0.16mM$과는 유의차를 보이지 않았다. 항균활성은 대조군에서 항균활성을 나타내지 않은데 반해 LC로 발효시킨 포도박 발효액이 5 mg/disc의 농도에서 항균활성에 사용된 모든 균주에 대해 10.5~11 mm의 항균활성을 나타내어 LC배양이 항균활성을 나타내는 물질을 생산해내는 것으로 사료되었다. 따라서 여러 유용미생물을 이용한 포도박 발효의 경우 유산균을 이용한 발효 시 기능성 물질 생산 증진에 우수한 효과를 나타내리라 사료되며, 특히 L. casei를 이용한 포도박 발효는 항균활성과 같은 기능성 증가를, L. plantarum을 이용한 발효는 항산화 활성에 긍정적인 효과를 나타내었다.

Abstract ▼ AI-Helper

The antioxidant activities and antibacterial activities of grape pomace fermented using a variety of useful microorganisms were analyzed. There were several experimental groups: the control, with non-fermented grape pomace; the BS group, fermented by Bacillus subtilis; the LP group, fermented by Lactobacillus plantarum; the LC group, fermented by L. casei; the CU group, fermented by Candida utilis; the Y1 group, fermented by Saccharomyces cerevisiae strain CHY1011; the Y2 group, fermented by S. cerevisiae strain ZP 541; and the M group, fermented by a mixed strain culture of LP, LC, and CU. The yield of freeze-dried powder of fermented grape pomace by BS, LP, LC, CU, Y1, Y2, and M was 10.74%, 9.36%, 8.68%, 9.55%, 7.49%, 9.60%, and 9.71% w/w, respectively. The total polyphenol content of grape pomace showed the highest value in the control, but the fermented LP had higher total polyphenol content than those of other fermented grape pomace. The control and fermented LP had 0.16 mg/mL and 0.28 mg/mL as $IC_{50}$ values on DPPH radical scavenging, and 0.22 mg/mL and 0.53 mg/mL of ABTS radical scavenging activity, respectively. The FRAP value (5 mg/mL) showed the highest value on fermented LP (2.44 mM) but did not show a significant difference in the control group (12.27 mM). The fermented LC showed the antimicrobial activities against B. cereus (11 mm), B. subtilis (11 mm), Staphylococcus aureus (12 mm), Escherichia coli (12 mm), Enterobacter cloacae (10.5 mm), Salmonella enterica (11.5 mm), and Pseudomonas aerugionsa (11 mm) at 5 mg/disc, but the control and other fermented grape pomace did not show antimicrobial activities. Thus, fermented grape pomace by LC is shown to be producing a material that has antibacterial activity. In conclusion, grape pomace fermentation using various lactic acid bacteria strains showed excellent effects in promoting the production of functional materials. Especially, using L. casei exhibited an increase in antibacterial activity, and using L. plantarum exhibited antioxidant activity.

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

따라서 본 연구에서는 여러 영양성분 및 생리활성 물질 함량이 높은 포도박의 이용가치를 증진시키기 위한 연구의 일환으로 여러 유용 미생물을 이용하여 포도박을 발효시킨 후 여러 미생물별 포도박 발효에 따른 항산화 활성 변화를 조사하여 향후 화장품 및 의약품 등의 산업원료 소재 및 사료 첨가재로서의 이용 가능성을 탐색하고자 하였다.
본 연구에서는 여러 영양성분 및 생리활성 물질 함량이 높은 포도박의 이용가치를 증진시키기 위한 연구의 일환으로 Bacillus subtilis(BS), Lactobacillus plantarum(LP), L. casei(LC), Candida utilis(CU), Saccharomyces cerevisiae strain CHY1011(Y1), S. cerevisiae strain ZP 541(Y2), 혼합 발효(M) 등의 여러 유용 미생물을 이용하여 포도박을 발효시킨 후 미생물별 포도박 발효물에 대한 항산화 활성 변화및 항균활성을 탐색하였다. 포도박 발효물의 추출수율은 BS(10.

가설 설정

3)Different letters within a same column differ significantly (p<0.05).
3)Different letters within a total sample differ significantly (p<0.05).

제안 방법

균주의 성장에 따른 배양액의 pH의 변화는 24시간 배양 후 여과지(Whatman No. 4, Middlesex, UK)에 여과한 다음 pH meter를 사용하여 측정하였다. 혼탁도 측정은 24시간 배양 후 여과된 발효액의 흡광도를 spectrophotometer로 600 nm에서 측정하여 미생물의 발효 정도를 확인하였다.
)용액 1 mL를 넣은 후 DPPH용액 1 mL를 가하고 실온에서 30분간 반응시켜 517 nm에서 spectrophotometer(UV-1800 spectrophotometer, Shimadzu, Kyoto, Japan)로 흡광도를 측정하였다. 대조군은 시료희석액 1 mL에 DPPH용액 1 mL를 가한 후 상온에서 30분간 방치 후 시료와 같은 조건에서 흡광도를 측정하였다. DPPH radical 소거능은 다음과 같은 계산식에 의해 환산하여, 대조군에 대한 50% 흡광도의 감소를 나타내는 검체의 농도(IC₅₀)로 표시하였다.
미생물에 의한 포도박의 발효 정도를 확인하기 위하여 미생물 별로 24시간 발효시킨 포도박 발효액의 pH 변화를 측정하였다. Table 2에서와 같이, pH 값은 발효하지 않은 배지에서 6.
생균수 측정은 24시간 배양한 포도박 발효액을 여과하여 멸균된 생리식염수에 희석해 측정하였다. 발효 희석액을 충분히 혼합한 후, plate count agar(PCA) 및 potato dextrose agar(PDA) 배지에 분주한 후 각각 37℃, 30℃에서 24시간 배양하여 생균수를 측정하였으며, 모든 실험구는 4회 반복으로 실험하였다.
혼탁도 측정은 24시간 배양 후 여과된 발효액의 흡광도를 spectrophotometer로 600 nm에서 측정하여 미생물의 발효 정도를 확인하였다. 생균수 측정은 24시간 배양한 포도박 발효액을 여과하여 멸균된 생리식염수에 희석해 측정하였다. 발효 희석액을 충분히 혼합한 후, plate count agar(PCA) 및 potato dextrose agar(PDA) 배지에 분주한 후 각각 37℃, 30℃에서 24시간 배양하여 생균수를 측정하였으며, 모든 실험구는 4회 반복으로 실험하였다.
항균시험용 평판배지는 계대 배양된 각 균주를 멸균 면봉을 이용하여 100 μL씩 도말하여 준비하였고, 시료를 disc 당 5, 10 mg이 되도록 paper disc(8 mm)에 천천히 흡수시킨뒤 건조과정을 거쳐 용매를 휘발시킨 후 평판배지 위에 밀착시킨 상태로 30～37℃에서 24시간 배양한 후 disc 주변에 생성된 저해환(clear zone, mm)을 측정하여 항균활성을 비교하였다.
4, Middlesex, UK)에 여과한 다음 pH meter를 사용하여 측정하였다. 혼탁도 측정은 24시간 배양 후 여과된 발효액의 흡광도를 spectrophotometer로 600 nm에서 측정하여 미생물의 발효 정도를 확인하였다. 생균수 측정은 24시간 배양한 포도박 발효액을 여과하여 멸균된 생리식염수에 희석해 측정하였다.

대상 데이터

BS, CU, Y1, Y2는 30℃, LP, LC는 37℃에서 24시간 주기로 3회 계대 배양 후 600 nm에서 흡광도 값이 0.4～0.6(1×105 CFU/mL) 범위 안에 들게 하여 발효 균주로 사용하였다(Table 1).
포도박 발효에 사용된 균주는 Bacillus subtilis KCTC 1022(BS), Lactobacillus plantarum KCTC 3104(LP), Lactobacillus casei KCTC 2180(LC), Candida utilis KCCM 50342(CU)로 생물자원센터(Korean Collection for Type Culture, Daejeon, Korea) 및 한국미생물보존센터(Korean Culture Center of Microorganisms, Seoul, Korea)에서 분양받아 사용하였다. Saccharomyces cerevisiae 균주들(S. cerevisiae strain CHY1011: Y1, S. cerevisiae strain ZP 541: Y2)은 빵 발효에 이용되는 효모를 사용하였으며, 18S rRNA 서열의 유사성에 근거하여 가장 가까운 종을 표시하였다. BS는 nutrient broth에서, LP 및 LC는 Lactobacilli MRS broth에서, CU, Y1, Y2는 YM broth에서 배양하였다.
각 추출물의 항균활성은 각 균주를 대상으로 disc diffusion assay로 측정하였으며, 측정에 사용된 균주는 그램 양성균 3종류와 그램 음성균 4종류로 한국생명공학연구원에서 분양받아 사용하였고 사용된 배지 조건은 Table 1과 같다. 항균시험용 평판배지는 계대 배양된 각 균주를 멸균 면봉을 이용하여 100 μL씩 도말하여 준비하였고, 시료를 disc 당 5, 10 mg이 되도록 paper disc(8 mm)에 천천히 흡수시킨뒤 건조과정을 거쳐 용매를 휘발시킨 후 평판배지 위에 밀착시킨 상태로 30～37℃에서 24시간 배양한 후 disc 주변에 생성된 저해환(clear zone, mm)을 측정하여 항균활성을 비교하였다.
본 연구에 사용된 포도가공 부산물(이하 포도박)은 2011년 충북 영동에서 수확된 것으로 영동대벤처식품(주)에서 캠벨포도로 포도즙을 착즙하고 남은 포도 부산물을 제공받아 사용하였으며, 사용된 포도가공 부산물의 일반성분은 동결건조시료 기준으로 탄수화물 73.41±2.16, 조단백 11.51±0.96, 조지방 6.91±0.99, 조회분 1.75±0.12, 수분 6.42±0.56%이었다.
멸균된 배양액을 -75℃ deep freezer에 12시간 두었다가 freeze dryer에 넣고 동결건조 하여 실험에 사용하였다. 포도박 무발효 대조군으로는, 포도박 100 g당 10배량(w/v)의 DW로 24시간 동안 3회 추출한 후 여과지(Whatman No. 4)로 여과한 다음 동결건조 하여 얻은 포도박 물 추출물(이하 무발효 추출물)을 사용하였다. 각 시료 분획물은 50% ethanol에 용해하여 실험에 사용하였다.
포도박 발효에 사용된 균주는 Bacillus subtilis KCTC 1022(BS), Lactobacillus plantarum KCTC 3104(LP), Lactobacillus casei KCTC 2180(LC), Candida utilis KCCM 50342(CU)로 생물자원센터(Korean Collection for Type Culture, Daejeon, Korea) 및 한국미생물보존센터(Korean Culture Center of Microorganisms, Seoul, Korea)에서 분양받아 사용하였다. Saccharomyces cerevisiae 균주들(S.

데이터처리

유의적 차이가 있는 항목에 대해서는 분산분석(ANOVA)을 실시하여 Duncan's multiple range test로 p<0.05 수준에서 유의차 검정을 실시하였다.

이론/모형

DPPH radical 소거능은 Blois(16)의 방법에 준하여 농도 별로 제조한 시료 1 mL에 DPPH(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl, Sigma Chemical Co.)용액 1 mL를 넣은 후 DPPH용액 1 mL를 가하고 실온에서 30분간 반응시켜 517 nm에서 spectrophotometer(UV-1800 spectrophotometer, Shimadzu, Kyoto, Japan)로 흡광도를 측정하였다. 대조군은 시료희석액 1 mL에 DPPH용액 1 mL를 가한 후 상온에서 30분간 방치 후 시료와 같은 조건에서 흡광도를 측정하였다.
FRAP 측정 방법은 Benzie와 Strain(18)의 방법을 참고하여 측정하였다. FRAP reagent는 25 mL acetate buffer(300 mM, pH 3.
총 폴리페놀 화합물 함량은 Folin-Ciocalteu's의 방법(15)에 따라 측정하였다.
총 항산화력 측정은 Pellegrin 등(17)의 ABTS radical 소거능에 따라서 측정하였다. 7 mM ABTS와 140 mM potassium persulfate 용액을 혼합하여 하루 동안 어두운 곳에 방치하여 ABTS⁺·를 형성시킨 후 이 용액을 734 nm에서 흡광도 값이 0.

성능/효과

Table 2에서와 같이, pH 값은 발효하지 않은 배지에서 6.27±0.02인 반면(data not shown), 발효한 배지에서는 3.55～4.27이 되어 발효에 의해 pH가 낮아져 모든 실험군에서 모두 발효가 일어났음을 확인하였다.
균주별 발효 포도박의 추출물의 항균활성실험을 수행한 결과를 Table 7에 나타내었다. 대조군의 경우 실험에 사용된 모든 균주에 대해 항균활성을 나타내지 않았으며, 발효 포도박 추출물에서도 L. casei와 혼합균주로 발효시킨 포도박 발효액을 제외하고는 항균활성을 나타내지 않았다. LC로 발효시킨 포도박 발효액의 경우 5 mg/disc의 농도에서 B.
대조군의 수율은 3.03±0.37%를 나타내었으며, 발효에 의해 수율이 증가하였다.
59 log CFU/mL로 가장 낮은 생균수를 나타내었다. 따라서 BS, LP, CU, 효모 및 혼합균주를 사용하여 포도박을 발효했을 때 사용된 미생물들이 포도박을 효과 적으로 이용하여 자기 증식에 이용하는 것으로 여겨지며, 발효가 잘 진행되었음을 확인하였다.
발효차의 경우 phenol 화합물의 하나인 gallic acid는 발효과정중 benzotropolone 구조를 가지는 purpurogallin 유도체를 새롭게 만드는 것으로 알려져 있으며(24), 포도박에 함유된 주요 phenol 화합물인 malvidin 3-O-glucoside 및 malvidin 3-O-p-coumaroylglucoside 등의 anthocyanins류, gallic acid, 5-(hydroxymethyl) furfural, caffeic acid, fertaric acid, syringic acid, p-coumaric acid, sinapic acid, ferulic acid 등의 phenolic acids, quercetin, kaempferol, procyanidin B1 등의 anthoxanthins 및 stilbenes 등(25)은 발효 중 구조가 일부 변경될 것으로 사료된다. 따라서 본 연구에서 포도박 발효에 의해 polyphenol 함량이 감소한 것은 발효에 의하여 기존의 페놀 화합물의 구조 변화에 의한 것이나 또는 당 성분의 제거로 인해 여과가 잘되어 추출 수율이 높아졌고 추출액이 많아져 희석에 따라 발효물질의 폴리페놀 함량이 감소한 것으로 여겨진다.
5～11 mm의 항균활성을 나타내어 LC배양이 항균활성을 나타내는 물질을 생산해내는 것으로 사료되었다. 따라서 여러 유용미생물을 이용한 포도박 발효의 경우 유산균을 이용한 발효 시 기능성 물질 생산 증진에 우수한 효과를 나타내리라 사료되며, 특히 L. casei를 이용한 포도박 발효는 항균활성과 같은 기능성 증가를, L. plantarum을 이용한 발효는 항산화 활성에 긍정적인 효과를 나타내었다.
따라서 포도박 발효물의 경우 발효 중에 생산된 radical 소거활성 물질들이 많지 않고, 산화에 의한 항산화 화합물 등의 감소로 대조군보다 낮은 항산화 활성을 나타낸 것으로 여겨지며, 만일 포도박을 발효하여 이용할 경우 유산균인 LP 및 효모인 Y2를 이용하여 발효할 때 포도박 발효 시 항산화 활성 유지에 도움이 될 것으로 사료되었다.
발효 후 미생물 생장에 의한 혼탁도 분석 결과(Table 2) 포도박 발효액의 혼탁도는 1.07～1.78을 나타내었고 LC에서 1.07±0.01의 가장 낮은 수치를 나타내었다.
발효물 중 BS에서는 10.74±0.28%로 가장 높게 나타났으나 LP, Y1 및 LC 균주 발효물을 제외하고는 유의차를 보이지 않았으며, 혼합균주(9.71±0.39%), Y2(9.60±0.56%), CU(9.55±0.58%), LC(8.68±0.59%), Y1(7.49±0.56%) 그리고 LP(7.36±0.47%) 순으로 낮은 수율을 나타내었다.
실험결과, 발효하지 않은 포도박 대조군의 IC50값이 0.16±0.10 mg/mL로 나와 가장 높은 항산화활성을 나타내었고 발효에 사용한 미생물들 중 LP가 0.28±0.04 mg/mL로 가장 항산화 활성이 높았고 다음으로 Y2(0.38±0.04 mg/mL), Y1(0.48±0.02 mg/mL), LC(0.50±0.03 mg/mL), CU(0.50±0.03 mg/mL), 혼합균주(0.65±0.01 mg/mL), BS(0.67±0.02 mg/mL) 순으로 IC50값이 낮아졌다.
이 중 BS 균주를 이용한 발효군에서 4.27±0.07로 가장 높은 pH 값을 보였으며, CU(3.85±0.02), Y2(3.84±0.02), Y1(3.79±0.02), M(3.55±0.01), LP(3.49±0.00) 및 LC(3.47±0.01)의 순서로 나타났다.
총 phenol 함량 측정 결과 대조군은 발효한 포도박에 비해 유의적(p<0.05)으로 높은 값을 보였으며, 발효 균주 중에서는 LP로 발효한 발효물이 가장 큰 값을 나타내었다.
05)으로 높은 값을 보였으며, 발효 균주 중에서는 LP로 발효한 발효물이 가장 큰 값을 나타내었다. 포도박 발효물의 DPPH radical 소거능을 측정한 결과, 대조군의 IC₅₀값이 0.16 mg/mL로 나와 가장 높은 항산화 활성을 보였다. 포도박 발효물의 경우 LP 발효물이 0.
포도박 발효물의 총 polyphenol 함량을 측정한 결과(Table 4), 대조군은 65.54±1.74 mg/g으로 발효한 포도박에 비해 유의적(p<0.05)으로 높은 값을 보였으며, 발효균주 중에서는 LP가 54.27±2.23 mg/g으로 가장 큰 값을 가졌고 다음으로 LC(43.35±0.82 mg/g), Y2(42.35±0.05 mg/g), Y1(42.08±1.41 mg/g), CU(36.96±3.43 mg/g), BS(31.04±0.71 mg/g), 혼합균주(29.12±0.27 mg/g) 순으로 함량을 나타내었다.
cerevisiae strain ZP 541(Y2), 혼합 발효(M) 등의 여러 유용 미생물을 이용하여 포도박을 발효시킨 후 미생물별 포도박 발효물에 대한 항산화 활성 변화및 항균활성을 탐색하였다. 포도박 발효물의 추출수율은 BS(10.74%) 발효물이 가장 높았고, M(9.71%), Y2(9.60%), CU(9.55%), LC(8.68%), Y1(7.49%%), LP(7.36%) 순이었다. 총 phenol 함량 측정 결과 대조군은 발효한 포도박에 비해 유의적(p<0.
포도박 발효액이 미생물 생장에 미치는 영향을 검토하기 위해 24시간 발효 후 생균수를 측정한 결과(Table 2), 6.87～8.60 log CFU/mL의 생균수를 나타내었으며 BS 처리구에서 8.60±0.30 log CFU/mL로 가장 높게 나타났으며, 혼합균주발효에서 6.87±0.59 log CFU/mL로 가장 낮은 생균수를 나타내었다.
포도박의 ABTS radical 소거능을 평가한 결과(Table 5), DPPH radical 소거능 결과와 같이 대조군으로 사용한 포도박의 ABTS radical 소거활성은 IC50값이 0.22 mg/mL로 가장 활성이 높았고, 발효물 중에서는 LP 발효물이 0.53 mg/mL로 높은 활성을 나타내었다. 혼합균주의 활성은 IC₅₀값이 0.
16 mM과는 유의차를 보이지 않았다. 항균활성은 대조군에서 항균활성을 나타내지 않은데 반해 LC로 발효시킨 포도박 발효액이 5 mg/disc의 농도에서 항균활성에 사용된 모든 균주에 대해 10.5～11 mm의 항균활성을 나타내어 LC배양이 항균활성을 나타내는 물질을 생산해내는 것으로 사료되었다. 따라서 여러 유용미생물을 이용한 포도박 발효의 경우 유산균을 이용한 발효 시 기능성 물질 생산 증진에 우수한 효과를 나타내리라 사료되며, 특히 L.

후속연구

casei로 발효시킨 포도박 발효액보다 낮은 항균활성을 나타내었으며 혼합 균주에 대한 항균활성은 발효에 사용된 균주들 중 LC에 의한 것으로 사료된다. 이러한 결과로 볼 때 L. casei가 포도박을 발효시킬 때 항균활성을 나타내는 물질을 대사산물로 생산해내는 것으로 여겨지며 이때 생산되어지는 물질에 대한 연구가 더 진행되어져야 할 것이다. Cho 등(31)은 자연 발효한 오미자 발효액에서 원래는 항균활성이 없는 오미자액이 발효에 의해 E.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	포도박 발효물의 총 폴리페놀 화합물 함량을 측정한 방법은 무엇인가?	총 폴리페놀 화합물 함량은 Folin-Ciocalteu's의 방법(15)에 따라 측정하였다. 시료를 증류수에 녹여 추출한 뒤 시료 0.2 mL에 Folin-Ciocalteu's phenol reagent(Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA)와 증류수를 1:2로 섞은 혼합액 0.2 mL를 첨가하고 암실에서 3분 방치 후 10% Na2CO3 3 mL를 가하여 1시간 다시 암실에 방치 후 765 nm에서 흡광도를 측정하였으며, 표준곡선은 gallic acid를 이용한 표준 검량식에 적용하여 1 g에 대한 mg gallic acid equivalents(GAE)로 나타내었다.
	포도박의 기능성 성분은 무엇인가?	한국의 경우 2010년 생산량은 약 30만 6천톤으로 그중 9천톤이 가공되고 있으며 이에 따라 수천톤의 포도박이 발생하고 있는 실정이다(4). 가공과정 중에 나오는 포도박은 phenolic acids, phenolic alcohol, flavan-3-ols, flavonoids 등의 폴리페놀류, anthocyanins, resveratrol 등의 생리활성물질을 높은 수준으로 함유하고 있는 것으로 보고되고 있으며(5-7), 포도박이 포도와 포도즙보다 플라보노이드, 식이섬유, 비타민 A 및 E의 함량이 더 높다는 보고도 있다(8). 한편 effective microorganisms(EM)은 일본의 류큐대학(가고시마 연합대학교)의 히가데루오 교수가 발명한 것으로 항산화물질을 생성하는 일련의 유용미생물군(광합성세균, 유산균, 효모 등)이며, 현재는 농업, 축산업, 의료, 환경 등의 분야에서 활발히 이용되고 있다(9,10).
	EM제제의 유산균의 역할은 무엇인가?	한편 effective microorganisms(EM)은 일본의 류큐대학(가고시마 연합대학교)의 히가데루오 교수가 발명한 것으로 항산화물질을 생성하는 일련의 유용미생물군(광합성세균, 유산균, 효모 등)이며, 현재는 농업, 축산업, 의료, 환경 등의 분야에서 활발히 이용되고 있다(9,10). EM제제의 유산균은 유산을 생성하여 발효초기에 pH를 급격히 강하시킴으로써 부패균의 생장을 억제하고 불용성 무기성분(인산 등)을 가용화하며, 효모균은 생리활성물질을 합성하여(비타민, 호르몬 등) 다른 EM균의 성장을 촉진하며, 사상균은 고분자물질을 저분자화시켜 이용 가능케 하며, 방선균은 항균물질을 생성하여 토양병원균의 증식억제 효과를 나타내고, 광합성세균은 부패발효 시 발생하는 이산화탄소 및 황화수소를 흡수 이용하며 유기물을 고정태로 이용하여 오염 및 악취의 방지효과를 나타낸다고 한다(11). 미생물에 의한 발효는 냄새의 개선과 바람직한 대사산물 생성을 증진시키며 (12), Mathew 등(13) 및 Kamm 등(14)의 연구에서도 효모 생성물 및 효모발효가 돼지 사료 산업에 있어 성장률, 영양소 소화률 및 건강 조건을 향상시켰다고 보고하였다.

참고문헌 (32)

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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