본 연구는 줄날도래(Hydropsyche kozhantschikovi) 에탄올 추출물이 산화적 스트레스에 미치는 영향을 알아보기 위해 활성산소에 의한 세포와 DNA의 손상 억제력을 조사하였다. 줄날도래 에탄올 추출물의 DPPH 유리 라디칼과 수산화 라디칼 제거능은 대조군에 비해 각각 60.4%, 60.0%로 나타났으며, $Fe^{2+}$-chelating 효과는 37.5%로 조사되었다. 줄날도래 추출물이 활성산소에 의해 유도되는 세포손상에 미치는 억제 효과를 조사하기 위해 지질과산화의 상대적 수준과 p21 단백질의 발현율을 해보면 줄날도래 추출물은 라디칼 처리군에 비해 지질과산화를 거의 완벽하게 억제하고 있으며, p21 단백질의 발현은 대조군의 92.2%로 회복되는 것으로 조사되었다. 또한 줄날도래 추출물의 DNA 분절화 억제 활성은 대조군에 비해 74.1%로 나타나 산화적 스트레스에 의해 유발되는 DNA 분절화를 효율적으로 억제하고 있으며, H2AX 단백질의 인산화비는 라디칼 처리군의 16.7%에 해당하는 수준으로 조사되어 줄날도래 추출물은 히스톤 단백질의 인산화를 83.3% 억제하는 것으로 확인되었다. 이러한 결과로 보아 줄날도래 추출물은 활성산소에 대한 항산화 효과 뿐만 아니라 세포와 DNA의 손상을 억제하는데 효과적인 것으로 사료된다.
본 연구는 줄날도래(Hydropsyche kozhantschikovi) 에탄올 추출물이 산화적 스트레스에 미치는 영향을 알아보기 위해 활성산소에 의한 세포와 DNA의 손상 억제력을 조사하였다. 줄날도래 에탄올 추출물의 DPPH 유리 라디칼과 수산화 라디칼 제거능은 대조군에 비해 각각 60.4%, 60.0%로 나타났으며, $Fe^{2+}$-chelating 효과는 37.5%로 조사되었다. 줄날도래 추출물이 활성산소에 의해 유도되는 세포손상에 미치는 억제 효과를 조사하기 위해 지질과산화의 상대적 수준과 p21 단백질의 발현율을 해보면 줄날도래 추출물은 라디칼 처리군에 비해 지질과산화를 거의 완벽하게 억제하고 있으며, p21 단백질의 발현은 대조군의 92.2%로 회복되는 것으로 조사되었다. 또한 줄날도래 추출물의 DNA 분절화 억제 활성은 대조군에 비해 74.1%로 나타나 산화적 스트레스에 의해 유발되는 DNA 분절화를 효율적으로 억제하고 있으며, H2AX 단백질의 인산화비는 라디칼 처리군의 16.7%에 해당하는 수준으로 조사되어 줄날도래 추출물은 히스톤 단백질의 인산화를 83.3% 억제하는 것으로 확인되었다. 이러한 결과로 보아 줄날도래 추출물은 활성산소에 대한 항산화 효과 뿐만 아니라 세포와 DNA의 손상을 억제하는데 효과적인 것으로 사료된다.
The present study aimed to investigate effects of ethanol extracts from Hydropsyche kozhantschikovi on cell and DNA damage caused by oxidative stress. In a radical scavenging assay, compared with ascorbic acid used as a control, the level of DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl) and that of hydroxyl ...
The present study aimed to investigate effects of ethanol extracts from Hydropsyche kozhantschikovi on cell and DNA damage caused by oxidative stress. In a radical scavenging assay, compared with ascorbic acid used as a control, the level of DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl) and that of hydroxyl radicals in H. kozhantschikovi extracts were 60.0% and 43.7%, respectively. The ferrous iron chelating level was 37.5% compared to the chelating value of EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) as a positive control at the same concentration. To verify inhibitory effects of oxidative cell damage induced by reactive oxygen species (ROS), the relative level of lipid peroxidation and the expression level of the p21 protein were compared in extracts-treated and untreated groups. Lipid peroxidation was completely inhibited in the extracts-treated group compared with the radical-only treated group. The level of p21 protein expression was restored to 92.2% of p21 protein expression in the control sample. In addition, DNA cleavage inhibition in the H. kozhantschikovi extracts was 74.1% compared with that of the control group, suggesting that H. kozhantschikovi extracts repress DNA cleavage induced by ROS. Moreover, the phosphorylation ratio of the H2AX protein was 16.7% in the radical-treated group, indicating that the ethanol extracts inhibited 83.3% of DNA damage. Our findings suggest that ethanol extracts from H. kozhantschikovi are effective not only in repressing the oxidation of free radicals and highly toxic hydroxyl radicals, but also in decreasing cell and DNA damage caused by oxidative stress.
The present study aimed to investigate effects of ethanol extracts from Hydropsyche kozhantschikovi on cell and DNA damage caused by oxidative stress. In a radical scavenging assay, compared with ascorbic acid used as a control, the level of DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl) and that of hydroxyl radicals in H. kozhantschikovi extracts were 60.0% and 43.7%, respectively. The ferrous iron chelating level was 37.5% compared to the chelating value of EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) as a positive control at the same concentration. To verify inhibitory effects of oxidative cell damage induced by reactive oxygen species (ROS), the relative level of lipid peroxidation and the expression level of the p21 protein were compared in extracts-treated and untreated groups. Lipid peroxidation was completely inhibited in the extracts-treated group compared with the radical-only treated group. The level of p21 protein expression was restored to 92.2% of p21 protein expression in the control sample. In addition, DNA cleavage inhibition in the H. kozhantschikovi extracts was 74.1% compared with that of the control group, suggesting that H. kozhantschikovi extracts repress DNA cleavage induced by ROS. Moreover, the phosphorylation ratio of the H2AX protein was 16.7% in the radical-treated group, indicating that the ethanol extracts inhibited 83.3% of DNA damage. Our findings suggest that ethanol extracts from H. kozhantschikovi are effective not only in repressing the oxidation of free radicals and highly toxic hydroxyl radicals, but also in decreasing cell and DNA damage caused by oxidative stress.
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문제 정의
따라서 새로운 생물자원으로 부각되고 있는 곤충류에서 새로운 생리활성물질에 대한 추적은 매우 필요한 연구 분야가 되고 있다. 따라서 본 연구에서는 우리나라의 하천에 매우 풍부하게 분포하고 있으며, 수질오염에 대한 내성이 매우 강한 수서 곤충인 줄날도래(Hydropsyche kozhantschikovi)를 사용하여 이의 항산화능과 세포와 DNA의 산화적 손상에 따른 보호효과를 조사하였다.
제안 방법
따라서 산화적 반응을 억제하거나 감소시키는 항산화능은 호기성 생물의 노화와 질병에 관련되어 매우 중요한 역할을 하고 있다. 본 연구에서는 줄날도래 추출물의 항산화 효과를 확인하기 위하여 농도에 따른 DPPH 유리 라디칼과 수산화 라디칼 제거능 및 Fe2+-chelating 효과를 분석하였다. 최근 연구에 따르면 사마귀(Tenodera angustipennis Saussure)와 늦반딧불이(Pyrocoela rupa Olivier) 메탄올 추출물의 DPPH 유리 라디칼 소거능은 약 200 mg/ml의 농도에서 80%로 나타났으며, 산제비나비(Papilio maackii Mntris)와 팥중이(Oedaleus infernalis Saussure) 추출물은 70% 이상의 DPPH 유리 라디칼 제거 활성을 보여 우수한 항산화 효과를 가진다고 보고된 바 있다[15].
줄날도래 추출물의 항산화 활성을 분석하기 위하여 DPPH 유리 라디칼과 수산화 라디칼의 제거 활성 및 Fe2+-chelating 효과를 조사하였다. 줄날도래 추출물의 DPPH 유리 라디칼 제거능은 농도가 높아짐에 따라 활성이 증가하여 3.
5). 줄날도래 추출물이 DNA 손상에 미치는 항산화 효과를 조사하기 위하여 H2AX 단백질의 인산화비를 분석하였다. 줄날도래 추출물 처리에 따른 phospho-H2AX 발현수준은 Fe2+와 H2O2 만을 처리한 라디칼 처리군에 비해 3.
줄날도래 추출물이 수산화 라디칼에 의한 2차 산화물 생성에 미치는 영향을 조사하기 위한 지질과산화 억제능은 NIH 3T3 세포(2×105 cells/ml)에 시료와 FeSO4, H2O2를 처리하여 배양한 후 회수하여 1.15% KCl로 균질화시켰으며, 0.2 ml sodium dodecyl sulfate (8.1%), 1.5 ml acetic acid (20%) 및 1.5 ml thiobarbituric acid (0.8%)를 첨가하여 95℃에서 2시간 반응시켰다. 반응 후 5 ml n-butanol/pyridine mixture (15:1, v/v)로 분획을 통해 얻은 상등액의 흡광도를 532 nm에서 측정하였다[7].
줄날도래 추출물이 유리 라디칼에 의한 유전정보의 손상을 유발하는 DNA 분절에 미치는 영향을 조사하기 위하여 먼저 ΨX-174 RF I plasmid DNA (New England BioLabs, County Road Ipswich, MA) 분석을 실시하였다. ΨX-174 RF I plasmid DNA (100 μg/ml) 5 μl, 3.
대상 데이터
본 연구에 사용된 줄날도래(Hydropsyche kozhantschikovi)는 낙동강 상류 반변천 주변에서 채집, 동정하여 사용하였다. 줄날도래로부터 시료를 추출하기 위해 공시충 10 g에 1,000 ml의 70% ethanol을 혼합하여 25℃에서 총 3회 환류 추출 후 여과하여 농축하였다.
본 연구에 사용한 NIH 3T3 마우스 섬유아 세포주는 한국세포주은행(KRIBB, Taejeon, Korea)에서 분양 받았으며 Dulbecco’s modified eagle medium (DMEM, Gibco Inc., USA)에 10% fetal bovine serum (FBS, Gibco Inc., USA)을 첨가한 배지를 이용하여 37℃, 5% CO2 배양기에서 배양하였다.
데이터처리
모든 실험은 독립적으로 3회 이상 실시하였으며 각 실험에서 얻어진 결과는 평균±표준편차로 나타내었다. 통계처리는 SPSS version 12.
모든 실험은 독립적으로 3회 이상 실시하였으며 각 실험에서 얻어진 결과는 평균±표준편차로 나타내었다. 통계처리는 SPSS version 12.0로 분석한 후 t-검정을 실시하여 분산과 평균의 동일성 여부를 검정하였으며, 분석결과는 일원분산분석(one way ANOVA)에 의한 Duncan 검정을 실시하여 p값이 0.05 미만일 때 유의한 것으로 간주하였다.
이론/모형
DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl, Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA) 라디칼 제거능의 측정은 Hsu 등[3]의 방법에 따라 DMSO (dimethyl sulfoxide, Sigma-Aldrich, USA)로 희석한 농도별 줄날도래 추출물 40 μl와 300 mM DPPH 760 μl를 혼합하여 37℃에서 반응시킨 후 515 nm 에서 흡광도를 측정하였다. 또한 수산화 라디칼 제거 활성은 1.
줄날도래 추출물의 NIH 3T3 세포 생존에 미치는 영향은 MTT (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl-tetrazolium bromide) 분석을 통해 실시하였다. NIH 3T3 세포(5×103 cells/well)를 96-well cell plate에 분주한 후 시료, FeSO4, H2O2를 각각 농도별로 처리하여 24시간 배양 후 MTT(Sigma-Aldrich, St.
성능/효과
5%로 나타났다. 따라서 줄날도래 추출물은 체내 대사과정에서 생성되는 유리 라디칼을 제거하고 Fe2+의 Fenton 반응을 억제하여 활성산소의 생성을 감소시키는 데 효과적인 것으로 생각된다.
9%의 세포 생존율을 나타내주고 있어 세포에 대한 줄날도래 추출물의 독성은 거의 없는 것으로 조사되었다. 또한 라디칼에 의한 지질과산화 반응에서 줄날도래 추출물은 95% 이상에 해당하는 억제 활성을 보였으며 세포의 비정상적 증식을 억제하는 p21단백질의 발현을 증가시켜 주고 있어 본 연구의 줄날도래 추출물은 산화적 스트레스로부터 세포의 손상을 감소시키는 데 효과적인 것으로 생각된다.
6%으로 나타나 세포 손상을 억제하는 데 효과적이라 한 바 있으며, Kim 등[9]은 동충하초(Cordyceps militaris) 열수 추출물의 경우 인체 간 암세포주인 HepG2 세포의 성장에 미치는 영향을 조사한 결과 처리 농도가 높아짐에 따라 p21의 발현 증가가 관찰되어 간암 세포의 증식 억제에 연관성을 지닐 수 있다고 보고한 바 있다. 본 연구에서 줄날도래 추출물이 세포의 산화적 손상에 미치는 영향을 조사한 결과 라디칼 처리군의 세포는 70.7%의 생존율을 보여주고 있으나, 시료를 처리한 실험군에서는 96.9%의 세포 생존율을 나타내주고 있어 세포에 대한 줄날도래 추출물의 독성은 거의 없는 것으로 조사되었다. 또한 라디칼에 의한 지질과산화 반응에서 줄날도래 추출물은 95% 이상에 해당하는 억제 활성을 보였으며 세포의 비정상적 증식을 억제하는 p21단백질의 발현을 증가시켜 주고 있어 본 연구의 줄날도래 추출물은 산화적 스트레스로부터 세포의 손상을 감소시키는 데 효과적인 것으로 생각된다.
64%로 나타나 뚜렷한 활성을 보이지 않는다고 보고된 바 있다[14]. 본 연구에서도 줄날도래 추출물의 DPPH 유리 라디칼과 수산화 라디칼 제거능은 각각 60.0%, 43.7%의 활성을 보였으며 Fe2+-chelating 효과는 37.5%로 나타났다. 따라서 줄날도래 추출물은 체내 대사과정에서 생성되는 유리 라디칼을 제거하고 Fe2+의 Fenton 반응을 억제하여 활성산소의 생성을 감소시키는 데 효과적인 것으로 생각된다.
또한 Jeong 등[4]에 의하면 보리(Hordeum vulgare) 씨앗에서 정제된 3,4-dihydroylvenzaldehyde는 DNA에 대한 H2AX의 인산화비 억제율은 200 μg/ml에서 80%로 나타난다고 보고되었다. 본 연구의 줄날도래 추출물은 supercoiled DNA로부터 open circular DNA로 전환되는 것을 74.1%로 감소시켰으며 phosphor-H2AX의 발현을 83.3%의 억제하였으므로 활성산소에 의한 DNA의 분절과 인산화를 억제하는 데 효과적인 것으로 생각된다.
6). 이러한 결과는 줄날도래 추출물 시료의 농도가 높아질수록 phospho-H2AX 발현을 억제하는 것으로 DNA 손상은 라디칼 처리군에 비해 역으로 줄날도래 추출물 시료의 농도가 80 μg/ml 인 경우 약 83.3%의 억제 효과를 나타내는 것으로 분석되었다.
이와 더불어 유리 라디칼에 의한 DNA의 분절화와 DNA의 인산화를 억제시켜 DNA의 open circular form 전환과 phospho-H2AX의 발현을 감소시키는 것으로 조사되었다. 이러한 결과로 미루어보아 줄날도래 추출물은 산화적 스트레스로 인한 생체 독성으로부터 세포와 DNA를 보호하는 데 효과적일 것으로 생각된다.
만 처리한 라디칼 처리군에서는 DNA의 분절로 인하여 open circular (OC) DNA로 전환되고 있다. 이러한 조건에서 줄날도래 추출물을 처리하면 supercoiled DNA는 3.2 μg/ml에서 30.3%, 16 μg/ml에서 40.5%, 80 μg/ml에서 74.1%로 조사되어 시료의 농도가 높아질수록 supercoiled DNA로부터 open circular DNA로 전환되는 것을 억제하는 것으로 나타났다(Fig. 5).
이상의 결과를 종합해 보면 줄날도래 추출물은 산화적 스트레스를 유발하는 유리 라디칼과 생체 내 강한 독성을 나타내는 수산화 라디칼을 제거하는 데 매우 효과적인 것으로 나타났다. 또한 O2·-, H2O2, ROO·-등과 같은 2차 산화물의 생성을 억제할 뿐만 아니라 세포의 비정상적인 증식을 조절하는 것으로 알려진 p21 단백질의 발현을 증가시키는 것으로 나타났다.
줄날도래 추출물이 DNA 손상에 미치는 항산화 효과를 조사하기 위하여 H2AX 단백질의 인산화비를 분석하였다. 줄날도래 추출물 처리에 따른 phospho-H2AX 발현수준은 Fe2+와 H2O2 만을 처리한 라디칼 처리군에 비해 3.2 μg/ml에서 82.2%, 16 μg/ml에서 36.7%, 80 μg/ml에서 16.7%로 나타나 시료의 농도가 높아짐에 따라 인산화비는 감소하는 경향을 보여주고 있다(Fig. 6).
-chelating 효과를 조사하였다. 줄날도래 추출물의 DPPH 유리 라디칼 제거능은 농도가 높아짐에 따라 활성이 증가하여 3.2 μg/ml에서 17.4%, 16 μg/ml에서 30.5%, 80 μg/ml에서 48.6%, 400 μg/ml에서 60.0%의 제거 효과를 나타내었다. 또한 수산화 라디칼 제거능은 80 μg/ml의 저농도에서는 20% 이하의 활성을 보였으나 400 μg/ml 농도에서는 43.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
줄날도래 추출물에 의해 생성이 억제되는 인체 내 2차 산화물은 무엇인가?
이상의 결과를 종합해 보면 줄날도래 추출물은 산화적 스트레스를 유발하는 유리 라디칼과 생체 내 강한 독성을 나타내는 수산화 라디칼을 제거하는 데 매우 효과적인 것으로 나타났다. 또한 O2·-, H2O2, ROO·-등과 같은 2차 산화물의 생성을 억제할 뿐만 아니라 세포의 비정상적인 증식을 조절하는 것으로 알려진 p21 단백질의 발현을 증가시키는 것으로 나타났다. 이와 더불어 유리 라디칼에 의한 DNA의 분절화와 DNA의 인산화를 억제시켜 DNA의 open circular form 전환과 phospho-H2AX의 발현을 감소시키는 것으로 조사되었다.
산화스트레스에 의해 생성되는 활성산소가 직접적으로 인체에 미치는 영향은?
활성산소(reactive oxygen species, ROS)는 산화스트레스에 의해 생성되며, 직접적으로 지질, 단백질, DNA 등을 손상시켜 동맥경화증, 암, 노화 등 여러 질병을 유발하고 있다[23]. 이러한 산화촉진물질은 생체 내 산화억제물질과 적절한 균형을 유지하고 있으나, 흡연, 각종 환경오염물질, 알코올, 약물, 방사선, 격렬한 운동 등 여러 물리, 화학적 요인에 의해 산화촉진과 산화억제의 균형상태가 무너지게 되면 활성산소의 과다 발생으로 세포 내 여러 구성성분인 지질, 단백질의 산화로 인해 다양한 퇴행성 질환의 유발되고 유전독성에 따른 생체 기능이 저하되게 된다[16, 21, 23].
줄날도래 추출물의 항산화 효과를 확인하기 위한, DPPH 유리 라디칼과 수산화 라디칼 제거능 측정 결과는?
64%로 나타나 뚜렷한 활성을 보이지 않는다고 보고된 바 있다[14]. 본 연구에서도 줄날도래 추출물의 DPPH 유리 라디칼과 수산화 라디칼 제거능은 각각 60.0%, 43.7%의 활성을 보였으며 Fe2+-chelating 효과는 37.5%로 나타났다.
참고문헌 (26)
Hong, S. C., Jeong, J. B. and Jeong, J. H. 2008. Buddleja officinalis prevents the normal cells from oxidative damage via antioxidant activity. Korean J Plant Res 21, 449-456.
Heo, J. C., Park, J. Y., Hwang, J. S., Park, H. C., Kang, S. W., Hwang, S. J., Yun, C. Y., Kwon, T. K. and Lee, S. H. 2006. Comparison of in vitro antioxidant activity and Cyclooxygenase-2 promoter inhibitory activity in Harmonia axyridis Pallas and Coccinella septempunctata Linne. Korean J Food Preserv 13, 513-518.
Hsu, B., Coupar, I. M. and Ng, K. 2006. Antioxidant activity of hot water extract from the fruit of the doum palm, Hyphaene thebaica. Food Chem 98, 317-328.
Jeong, J. B., Hong, S. C. and Jeong, H. J. 2009a. 3, 4-Dihydroxybenzaldehyde purified from the barley seeds (Hordeum vulgare) inhibits oxidative DNA damage and apoptosis via its antioxidant activity. Phytomedicine 16, 85-94.
Jeong, I. Y., Lee, J. S., Oh, H., Jeong, U. H., Park, H. R. and Jo, S. K. 2003. Inhibitory effect of hot-water extracts of Paeonia japonica on oxidative stress and identification of its active components. J Korean Soc Food Sci Nutr 32, 739-744.
Jeong, J. B., Park, J. H., Lee, H. K., Ju, S. Y., Hong, S. C., Lee, J. R., Chung, G. Y., Lim, J. H. and Jeong, H. J. 2009. Protective effect of the extracts from Cnidium officinale against oxidative damage induced by hydrogen peroxide via antioxidant effect. Food Chem Toxicol 47, 525-529.
Kang, K. A., Zhang, R., Piao, M. J., Ko, D. O., Wang, Z. H., Kim, B. J., Park, J. W., Kim, H. S., Kim, D. H. and Hyun, J. W. 2008. Protective effect of irisolidone, a metabolite of kakkalide, against hydrogen peroxide induced cell damage via antioxidant effect. Bioorg Med Chem 16, 1133-1141.
Kim, J. W., Moon, B. S., Park, Y. M., Yoo, N. H., Ryoo, I. J., Nguyen, T. C., Yoo, I. D. and Kim, J. P. 2005. Structures and antioxidant activity of diketopiperazines isolated from the mushroom Sarcodon aspratus. J Korean Soc Appl Biol Chem 48, 93-97.
Kim, K. M., Park, C., Choi, Y. H. and Lee, W. H. 2008. Induction of apoptosis by water extract of Cordyceps militaris (WECM) in human hepatocellular carcinoma HepG2 Cells. J Life Sci 18, 804-813.
Lightfoot, T., Skibola, C. F., Smith, A. G., Forrest, M. S., Adamson, P. J., Morgan, G. J., Bracci, P. M., Roman, E., Smith, M. T. and Holly, E. Z. 2006. Polymorphisms in the oxidative stress genes, superoxide dismutase, glutathione peroxidase and catalase and risk of non-Hodgkin’s lymphoma. Br J Haematol 91, 1222-1227.
Looi, M. L., Mohd Dali, A. Z., Md Ali, S. A., Wan Ngah, W. Z. and Mohd Yusof, Y. A. 2008. Oxidative damage and antioxidant status in patients with cervical intraepithelial neoplasia and carcinoma of the cervix. Eur J Cancer Prev 17, 555-560.
Martinez, G. R., Loureiro, A. P. M., Marques, S. A., Miyamoto, S., Yamaguchi, L. F., Onuki, J., Almeida, E. A., Garcia, C. C. M., Barbosa, L. F., Medeiros, M. H. G. and Di Mascio, P. 2003. Oxidative and alkylating damage in DNA. Mutat Res 544, 115-127.
McKee, T. and McKee, J. R. 2002. Biochemistry: the molecular basis of life. McGraw-Hill, New York.
Park, S. Y. and Chin, K. B. 2007. Evaluation of antioxidant activity in pork patties containing bokbunja (Rubus coreanus) extract. Korean J Food Sci Ani Resour 27, 432-439.
Park, J. Y., Heo, J. C., An, S. M., Yun, E. Y., Han, S. M., Hwang, J. S., Kang, S. W., Yun, C. Y. and Lee, S. H. 2005. High throughput-compatible screening of anti-oxidative substances by insect extract library. Korean J Food Preserv 12, 482-488.
Park, M. H., Kang, S. M., Jung, H. Y. and Hong, S. G. 2003. Protecting effects of vitamine E against immobilization stress-induced oxidative damage in rat brain. Korean J Nutr 36, 570-576.
Park, J. Y., Heo, J. C., Woo, S. U., Yun, C. Y., Kang, S. W., Hwang, J. S. and Lee, S. H. 2006. Anti-inflammatory and cellular protective effects on hydrogen peroxide-induced cytotoxicity of grasshopper extracts. Korean J Food Preserv 13, 796-802.
Park, Y. M., Jeong, J. B., Seo, J. H., Lim, J. H., Jeong, H. J. and Seo, E. W. 2011. Inhibitory effect of red bean (Phaseolus angularis) hot water extracts on oxidative DNA and cell damage. Korean J Plant Res 24, 130-138.
Park, Y. M., Kim, J. I., Lee, C. H., Lim, J. H. and Seo, E. W. 2011. Effect of Dendranthema indicum extracts on cell and DNA damage induced by oxidative stress. J Life Sci 21, 1698-1704.
Punchard, N. A. and Kelly, F. J. 1996. A practical approach, pp. 1-8, In Punchard, N. A. and F. J. Kelly (eds.), Free radicals. Oxford University Press, New York.
Smirnoff, N. and Cumbes, Q. J. 1989. Hydroxyl radical scavenging activity of compatible solutes. Phytochemistry 28, 1057-1060.
Valko, M., Leibfritz, D., Moncol, J., Cronin, M. T., Mazur, M. and Telser, J. 2007. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. Int J Biochem Cell Biol 39, 44-84.
Yoon, W. J., Lee, J. A., Kim, J. Y., Kim, S. B. and Park, S. Y. 2007. Antioxidant activity and physiological function of the Anomala albopilosa extracts. J Korean Soc Food Sci Nutr 36, 670-677.
You, H. J., Oh, D. H, Choi, C. Y., Lee, D. G., Hahm, K. S., Moon, A. R. and Jeong, H. G. 2002. Protective effect of metallothionein-III on DNA damage in response to reactive oxygen species. Biochim Biophys Acta 1573, 33-38.
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