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N,N-Dimethylformamide와 Dimethylsulfoxide를 이용한 감귤 잎의 엽록소 측정방법 확립
Establishment of Analytical Method for Chlorophyll Using the N,N-Dimethylformamide and Dimethylsulfoxide in Citrus Leaves 원문보기

한국환경농학회지 = Korean journal of environmental agriculture, v.33 no.4, 2014년, pp.344 - 349  

한승갑 (국립원예특작과학원 감귤시험장) ,  강석범 (국립원예특작과학원 감귤시험장) ,  문영일 (국립원예특작과학원 감귤시험장) ,  박재호 (국립원예특작과학원 감귤시험장) ,  박경진 (국립원예특작과학원 감귤시험장) ,  최영훈 (국립원예특작과학원 감귤시험장)

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

BACKGROUND: Purpose of the study was to establish the extinction coefficients of chlorophyll a and b in N,N-dimethylformamide(DMF) and Dimethylsulfoxide(DMSO) solvents and to find out the conditions of optimal extraction temperature and time in citrus leaves. METHODS AND RESULTS: Chlorophyll a and b...

주제어

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문제 정의

  • 그러나 DMSO로 추출할 경우에는 80% acetone 추출 방법과 같은 환산식을 이용하고 있으므로 이에 대한 검토가 필요하다. 또한 낙엽과수(Park et al., 1996), 솔잎(Hiscox and Israelstam, 1979), 잣나무(Seo et al., 2005) 등 작물 잎의 특성에 따라 적정한 추출 온도와 시간이 달라지므로 큐티클층이 매우 발달된 감귤 잎의 효율적인 추출 조건과 용매별 환산식을 설정하고자 수행하였다.
본문요약 정보가 도움이 되었나요?

질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
엽록소의 비파괴적 추출방법에 사용되는 유기용매는 무엇이 있고, 이를 이용하면 어떤 좋은 점이 있는가? , 1977) 신속하고 간편한 비파괴적 추출방법이 개발되었다. 주로 유기용매인 Dimethylsulfoxide(DMSO, Shoaf and Lium, 1976)와 N,N-dimethylformamide (DMF, Moran and Porath, 1980)를 이용하였으며, 이들 용매로 추출한 엽록소는 빛에도 안정적인 특성을 보였다 (Inskeep and Bloom, 1985; Barnes et al., 1992).
엽록소 추출에 사용하던 80% acetone 용액의 문제점은? 엽록체의 그라나 속에서 빛에너지와 이산화탄소를 이용하여 탄수화물을 합성하는데 중요한 역할을 하는 엽록소의 추출은 80% acetone 용액을 이용하였으나(Mackinney, 1941), 과도한 시료 전처리 노력과 추출된 엽록소의 안정성의 문제로(Knudson et al., 1977) 신속하고 간편한 비파괴적 추출방법이 개발되었다.
chlorophyll a와 b의 최고 흡광 파장은 DMF, DMSO 용매에서 각각 얼마로 측정되었는가? 본 연구는 DMF와 DMSO를 이용하여 chlorophyll을 추출 시 흡광계수와 환산식를 구하였고, 이들 용매를 이용하여 감귤 잎의 chlorophyll을 추출할 경우의 적정 온도 조건과 추출시간을 구명하였다. DMF 용매를 이용할 경우 chlorophyll a와 b의 최고 흡광 파장은 663.8과 647.2 nm, DMSO는 665.8과 649.0 nm로 나타났다. 이 파장을 기준으로 흡광 상수를 구하고 DMF와 DMSO 용매를 사용할 경우 chlorophyll 함량식은 각각 Total Chl = 19.
질의응답 정보가 도움이 되었나요?

참고문헌 (10)

  1. Arnon, D.I., 1949. Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxides in Beta vulgaris, Plant Physiol. 24, 1-15. 

  2. Barnes, J.D., Balaguer, L., Manrique, E., Elivira, S., Davision, A.W., 1992. A reappraisal of the use of DMSO for the extraction and determination of chlorophyll a and b in lichens and higher plants, Environ. Exp. Bot. 32, 85-100. 

  3. Hiscox, J.D., Israelstam, G.F., 1979. A method for the extraction of chlorophyll from leaf tissue without maceration, Can. J. Bot. 57, 1332-1334. 

  4. Inskeep, W.P., Bloom, P.R., 1985. Extinction coefficients of chlorophyll a and b in N,N -dimethylformamide and 80% acetone, Plant physiol. 77, 483-485. 

  5. Knudson, L.L., Tibbitts, T.W., Edwards, G.E., 1977. Measurement of ozone injury by determination of leaf chlorophyll concentration, Plant Physiol. 60, 606-608. 

  6. Mackinney, G., 1941. Absorption of light by chlorophyll solutions, J. Biol. Chem. 140, 315-322. 

  7. Moran, R., Porath, D., 1980. Chlorophyll determination in intact tissues using N, N -dimethylformamide, Plant Physiol. 65, 478-479. 

  8. Park, J.M., Ro, H.M., Kim, Y.M., Seong, K.C., 1996. Chlorophyll determination in horticultural crops using dimethyl sulphoxide, RDA. J. Agri. Sci. 38, 552-557. 

  9. Seo, K.Y., Yi, M.J., Son, Y.H., Koo, J.W., Noh, N.J., Yi, M.J., 2005. Extraction and Determination of Chlorophyll Contents of Korean Pine Needles Using Acetone and DMSO(Dimethylsulfoxide), J. Korean For. Soc. 94, 264-268. 

  10. Shoaf, T.W.T., Lium, B.W., 1976. Improved extraction of chlorophyll a and b from algae using demethylsulfoxide, Limnol. Oceanogr. 21, 926-928. 

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