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인체 전립선 암세포에서 재배 와송의 항암효과
Anticancer Effects of Cultivated Orostachys japonicus on Human Prostate Cancer Cells 원문보기

한국식품영양과학회지 = Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, v.43 no.1, 2014년, pp.67 - 73  

원영선 (순천대학교 식품영양학과) ,  이주혜 (순천대학교 기초과학연구소) ,  권순재 (경북대학교 식품공학과) ,  안동욱 (아이오와주립대학교 동물과학과) ,  신동영 (순천대학교 자원식물개발학과) ,  서권일 (순천대학교 식품영양학과)

초록
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재배 와송과 천연 와송의 항암효과 및 apoptosis 유도효과를 입증하기 위하여 RC-58T/h/SA#4 primary 인체 전립선 암세포를 이용하여 다양한 실험을 실시하였다. 그 결과 재배 와송과 천연 와송은 전립선암세포에서 농도 의존적으로 높은 암세포 증식 억제효과를 나타내었으며, 대조군과 비교하여 와송 메탄올 추출물 처리 시 세포의 형태가 수축되고 세포의 수가 감소한 것을 형태학적 관찰을 통해 확인할 수 있었다. 또한 와송 메탄올 추출물의 처리에 따른 RC-58T/h/SA#4 세포에서의 apoptosis 유도효과는 sub-G1기의 함량 증가와 hoechst 염색을 통한 apoptotic bodies 형성 및 핵형태 변화를 관찰을 통해 확인할 수 있었다. 한편 재배 와송과 천연 와송은 dioxin과 bisphenol A와 같은 환경호르몬 처리에 의해 비정상적으로 증가된 전립선암세포의 성장을 억제하는 것으로 나타났다. 본 연구 결과, 재배 와송과 천연와송은 RC-58T/h/SA#4 전립선암 세포에서 유사한 암세포 성장 억제효과와 apoptosis 유도효과를 가지고 있음을 확인하였으며, 환경호르몬에 의해 유발될 수 있는 암에 대해서도 유사한 보호 효과를 가지고 있음을 증명하였다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

This study was performed to determine the anticancer effects of cultivated Orostachys japonicus (COJ) and wild Orostachys japonicus (WOJ) on primary human prostate cancer cells (RC-58T/h/SA#4 cells). The morphology of cells treated with COJ and WOJ was distorted to shrunken cell masses. In addition,...

주제어

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문제 정의

  • 따라서 본 연구에서는 전이되기 전의 형태인 primary cancer 조직으로부터 분리된 전립선암세포인 RC-58T/h/SA#4 세포를 이용하여 천연 와송과 재배 와송의 처리에 따른 항암효과 및 apoptosis 유도효과를 확인하였으며, dioxin 및 bisphenol A와 같은 환경호르몬에 의해 성장이 유도된 전립선암세포에서 천연 와송과 재배 와송 처리가 세포 성장을 효과적으로 억제하는지를 알아보았다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
와송이란 무엇인가? 와송(Orostachys japonicus)은 돌나무과의 다년생 초본 식물로 오래된 기와지붕이나 산 위의 바위에서 자란다(8). 한국, 중국, 일본 등지에 분포하며 면역(9), 항산화(10,11), 항균(12,13), 항고지혈증(14) 및 항당뇨 효과(15) 등 다양한 약리적 효과를 가지고 있는 것으로 보고되고 있다.
재배 와송과 천연 와송 메탄올 추출물의 처리 농도에 따른 암세포 억제 효과는 어떻게 관찰되는가? 1, 2). 천연 와송과 재배 와송의 메탄올 추출물은 처리 농도에 비례하여 암세포의 증식을 억제하였다. 특히 600 μg/mL 농도에서 가장 높은 세포 증식 억제능을 나타내었다. 또한 재배 와송과 천연 와송 메탄올 추출물의 처리에 따른 RC-58T/h/SA#4 전립선 암세포를 형태학적 변화 관찰을 통하여 확인한 결과, control에서는 culture plate에 안정적으로 부착되어 정상적인 증식이 이루어진 모습을 보였으나 재배 와송과 천연 와송을 처리한 세포는 추출물의 농도가 높아질수록 세포가 부착되어 있지 않고 부유하였으며 세포의 수가 감소한 것을 관찰할 수 있었다(Fig.
전립선암의 발병요인으로 알려진 것은? 전립선암은 서구사회에서 남성에게 흔하게 발생하는 암으로 알려져 있으며, 최근 우리나라에서도 서구화된 생활방식과 노년층 인구의 증가에 따라 전립선암의 발생이 급격하게 증가하고 있다(1). 전립선암의 발병요인으로는 인종, 고령, 비만, 남성 호르몬, 동물성 지방의 섭취 증가 등이 있다(2-4). 통계에 따르면 전립선암의 발생 빈도가 50세 이후부터 높아져 전립선암의 발생률이 30%이고 80세 이상에서는 80% 정도인 것으로 보고되어 있다(5).
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참고문헌 (29)

  1. Hwang ES, Bowen PE. 2004. Effects of tomatoes and lycopene on prostate cancer prevention and treatment. J Korean Soc Food Sci Nutr 33: 455-462. 

  2. Gomez SL, Noone AM, Lichtensztajn DY, Scoppa S, Gibson JT, Liu L, Morris C, Kwong S, Fish K, Wilkens LR, Goodman MT, Deapen D, Miller BA. 2013. Cancer incidence trends among Asian American populations in the United States, 1990 to 2008. J Natl Cancer Inst 105: 1096-1110. 

  3. Kalish LA, McDougal WS, McKinlay JB. 1995. Family history and the risk of prostate cancer. Urology 56: 803-806. 

  4. American Institute for Cancer Research. 1997. Food, Nutrition and the Prevention of Cancer: A Global Perspective. Banta Book Group, Manasha, WI, USA. 

  5. Burks D, Littleton R. 1992. The epidemiology of prostate cancer in black men. Henry Ford Hosp Med J 40: 89-92. 

  6. Kang HI, Kim JY, Cho HD, Park KW, Kang JS, Seo KI. 2010. Resveratrol induces apoptosis in primary human prostate cancer cells. J Korean Soc Food Sci Nutr 39: 1119-1125. 

  7. Yasunaga Y, Nakamura K, Ko D, Srivastava S, Moul JW, Sesterhenn IA, McLeod DG, Rhim JS. 2001. A novel human cancer culture model for the study of prostate cancer. Oncogene 20: 8036-8041. 

  8. Lee SJ, Song EJ, Lee SY, Kim KBWR, Kim SJ, Yoon SY, Lee CJ, Ahn DH. 2009. Antioxidant activity of leaf, stem and root extracts from Orostachys japonicus and their heat and pH stabilities. J Korean Soc Food Sci Nutr 38: 1571-1579. 

  9. Kwon J, Han KS. 2004. Effects of Orostachys japonicus A. Berger on the immune system. Korean J Medicinal Crop Sci 12: 315-320. 

  10. Choi SY, Chung MJ, Sung NJ. 2008. Studies on the antioxidative ability of methanol and water extracts from Orostachys japonicus A. Berger according to harvest times. J Korean Soc Food Sci Nutr 21: 157-164. 

  11. Lee SJ, Seo JK, Shin JH, Lee HJ, Sung NJ. 2008. Antioxidant activity of Wa-song (Orostachys japonicus A. Berger) according to drying methods. J Korean Soc Food Sci Nutr 37: 605-611. 

  12. Yoon SY, Lee SY, Kim KBWR, Song EJ, Kim SJ, Lee SJ, Lee CJ, Ahn DH. 2009. Antimicrobial activity of the solvent extract from different parts of Orostachys japonicus. J Korean Soc Food Sci Nutr 38: 14-18. 

  13. Ryu DS, Baek GO, Kim EY, Kim KH, Lee DS. 2010. Effects of polysaccharides derived from Orostachys japonicus on induction of cell cycle arrest and apoptotic cell death in human colon cancer cells. BMB Reports 43: 750-755. 

  14. Kim SG, Choi JW, Park HJ, Lee SM, Jung HJ. 2009. Antihyperlipidemic effects of the flavonoid-rich fraction from the methanol extract of Orostachy japonicus in rats. Korean J Pharmacogn 40: 51-58. 

  15. Zhang GF. 2008. Anti-diabetic potential of Orostachys japonicus in streptozotocin induced diabetes mellitus rats. MS Thesis. Gyeongsang National University, Jinju, Korea. 

  16. Kim JY, Jung EJ, Won YS, Lee JH, Shin DY, Seo KI. 2012. Cultivated Orostachys japonicus induces apoptosis in human colon cancer cells. Korean J Food Sci Technol 44:317-323. 

  17. Oh CH, Bae JB, Kim NS, Jeon H, Han KS. 2009. Effect of Orostachys japonicus A. Berger on apoptosis induction of human leukemia HL60 Cells. Korean J Pharmacogn 40:118-122. 

  18. Choi SD, Nam SH. 2005. Cytotoxicities of Orostachys japonicus A. Berger against cancer cell lines. J Industrial Technology Res Inst 12: 25-30. 

  19. Ryu DS, Baek GO, Kim EY, Kim KH, Lee DS. 2010. Effects of polysaccharides derived from Orostachys japonicus on induction of cell cycle arrest and apoptotic cell death in human colon cancer cells. BMB Reports 43: 750-755. 

  20. Ryu DS, Lee HS, Lee GS, Lee DS. 2012. Effects of the ethylacetate extract of Orostachys japonicus on induction of apoptosis through the p53-mediated signaling pathway in human gastric cancer cells. Biol Pharm Bull 35: 660-665. 

  21. Kim KH, Kim EY, Kim YO, Baek GO, Kim HB, Lee DS. 2004. Studies on biological activities of the polysaccharides and oligosaccharides of Orostachys japonicus. Korean J Microbiology 40: 334-341. 

  22. Kwon SH, Kwon SJ, Kim JY, Park KW, Shim KH, Seo KI. 2009. Protective effect of Corni fructus ethanol extracts against environmental hormones in human prostate cancer cells. J Korean Soc Food Sci Nutr 38: 663-666. 

  23. Shin DY, Lee YM, Kim HJ. 1994. Anatomy and artificial seed propagation in anti-cancer plant Orostachys japonicus A. Berher. Korean J Crop Sci 39: 146-157. 

  24. Papazisis KT, Geromichalos GD, Dimitriadis KA, Kortsaris AH. 1997. Optimization of the sulforhodamine B colorimetric assay. J Immunol Methods 208: 151-158. 

  25. Song Z, Steller H. 1999. Death by design: mechanism and control of apoptosis. Trends Cell Biol 9: M49-M52. 

  26. Lee JH, Won YS, Park KH, Lee MK, Tachibana H, Yamada K, Seo KI. 2012. Celastrol inhibits growth and induces apoptotic cell death in melanoma cells via the activation ROS-dependent mitochondrial pathway and the suppression of PI3K/AKT signaling. Apoptosis 17: 1275-1286. 

  27. Poland A, Knutson JC. 1982. 2,3,7,8-Tetrachlorodibenzo-pdioxin and related halogenated aromatic hydrocarbons; examination of the mechanism of toxicity. Ann Rev Pharmacol Toxicol 22: 517-554. 

  28. Banerjee SK, Banerjee S, Li SA, Li JJ. 1994. Induction of chromosome aberrations in Syrian hamster renal cortical cells by various estrogens. Mutat Res 311: 191-197. 

  29. Park KW, Choi SR, Yang HS, Cho HW, Kang KS, Seo KI. 2007. Anti-proliferation effects of decursin from Angelica gigas Nakai in the MCF-7 cells treated with environmental hormones. J Korean Soc Food Sci Nutr 36: 825-831. 

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