RAW 246.7 대식세포 모델에서 고삼, 감초, 백선피 에탄올 추출물 및 추출복합물의 항염증 효능 비교 Comparison of Anti-inflammatory Activities among Ethanol Extracts of Sophora flavescens, Glycyrrhiza uralensis and Dictamnus dasycarpus, and their Mixtures in RAW 246.7 Murine Macrophages원문보기
고삼, 감초 및 백선피는 염증성 질환 치료를 위한 목적으로 오랜 동안 사용되어 온 한약제이다. 본 연구에서는 이들 한약제의 에탄올 추출물과 각 한약제 추출물의 복합물에 대한 항염증 효능을 LPS에 의하여 활성화되는 RAW 264.7 대식세포 모델을 사용하여 평가하였다. 이를 위하여 고삼 추출물(EESF), 감초 추출물(EEGU), 백선피추출물(EEDD) 및 추출복합물(MHMIXs)을 준비하였으며, 항염증 효능 평가를 위한 인자로서 대표적인 염증 매개인자로서 NO와 $PGE_2$를, 염증성 cytokine 중에서는 $IL-1{\beta}$와 $TNF-{\alpha}$를 선정하였다. 본 연구의 결과에 의하면, 각 한약제 단독 추출물 및 추출복합물은 LPS로 활성화된 RAW 264.7 대식세포에서 NO와 $PGE_2$ 및 염증성 cytokine의 생성을 모두 억제하였으며, 이러한 생성 억제는 해당 단백질의 발현 억제를 통해 이루어졌다. 비록 각각의 단일 추출물과 추출복합물이 항염증 효과가 우수하다고 평가되지만, 세포 독성과 다양한 염증성 매개인자 및 cytokine의 억제 효과를 전체적으로 고려할 경우 EESF, EEGU 및 EEDD가 3:1:1로 혼합된 MHMIX-1이 항염증 관련약품 및 소재 개발에 보다 효과임을 제안하며, 이는 과도하게 활성화된 대식세포에 의한 염증성 질환 조절에 매우 유용하게 사용될 수 있을 것으로 추정된다.
고삼, 감초 및 백선피는 염증성 질환 치료를 위한 목적으로 오랜 동안 사용되어 온 한약제이다. 본 연구에서는 이들 한약제의 에탄올 추출물과 각 한약제 추출물의 복합물에 대한 항염증 효능을 LPS에 의하여 활성화되는 RAW 264.7 대식세포 모델을 사용하여 평가하였다. 이를 위하여 고삼 추출물(EESF), 감초 추출물(EEGU), 백선피추출물(EEDD) 및 추출복합물(MHMIXs)을 준비하였으며, 항염증 효능 평가를 위한 인자로서 대표적인 염증 매개인자로서 NO와 $PGE_2$를, 염증성 cytokine 중에서는 $IL-1{\beta}$와 $TNF-{\alpha}$를 선정하였다. 본 연구의 결과에 의하면, 각 한약제 단독 추출물 및 추출복합물은 LPS로 활성화된 RAW 264.7 대식세포에서 NO와 $PGE_2$ 및 염증성 cytokine의 생성을 모두 억제하였으며, 이러한 생성 억제는 해당 단백질의 발현 억제를 통해 이루어졌다. 비록 각각의 단일 추출물과 추출복합물이 항염증 효과가 우수하다고 평가되지만, 세포 독성과 다양한 염증성 매개인자 및 cytokine의 억제 효과를 전체적으로 고려할 경우 EESF, EEGU 및 EEDD가 3:1:1로 혼합된 MHMIX-1이 항염증 관련약품 및 소재 개발에 보다 효과임을 제안하며, 이는 과도하게 활성화된 대식세포에 의한 염증성 질환 조절에 매우 유용하게 사용될 수 있을 것으로 추정된다.
Sophora flavescens, Glycyrrhiza uralensis and Dictamnus dasycarpus have been widely used in folk medicine for several inflammatory disorders in Korea and China. In this study, we compared the anti-inflammatory effects of the ethanol extracts of S. flavescens (EESF), G. uralensis (EEGU) and D. dasyca...
Sophora flavescens, Glycyrrhiza uralensis and Dictamnus dasycarpus have been widely used in folk medicine for several inflammatory disorders in Korea and China. In this study, we compared the anti-inflammatory effects of the ethanol extracts of S. flavescens (EESF), G. uralensis (EEGU) and D. dasycarpus (EEDS), and their mixtures (medicinal herber mixtures, MHMIXs) on production of inflammatory mediators and cytokines in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated RAW 264.7 murine macrophages. Our data indicated that treatment with EESF, EEGU and EEDD significantly inhibited the excessive production of pro-inflammatory mediators such as nitric oxide (NO) and prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) in LPS-stimulated RAW 264.7 cells. The ethanol extracts and MHMIXs also attenuated the production of pro-inflammatory cytokines, including interleukin-$1{\beta}$ ($IL-1{\beta}$) and tumor necrosis $factor-{\alpha}$ ($TNF-{\alpha}$) by suppressing their protein expression, respectively. Interestingly, MHMIX-1, which basic ingredients are EESF, EEGU and EEDS in the proportion 3:1:1, more safely and effectively inhibits the LPS-induced inflammatory status in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages compared to ethanol extracts of each medicinal herb and other MHMIXs without causing any cytotoxic effects. Our study provides scientific evidence to support that a berbal mixture, MHMIX-1 may be useful in the treatment of inflammatory diseases by inhibiting inflammatory regulator responses in activated macrophages.
Sophora flavescens, Glycyrrhiza uralensis and Dictamnus dasycarpus have been widely used in folk medicine for several inflammatory disorders in Korea and China. In this study, we compared the anti-inflammatory effects of the ethanol extracts of S. flavescens (EESF), G. uralensis (EEGU) and D. dasycarpus (EEDS), and their mixtures (medicinal herber mixtures, MHMIXs) on production of inflammatory mediators and cytokines in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated RAW 264.7 murine macrophages. Our data indicated that treatment with EESF, EEGU and EEDD significantly inhibited the excessive production of pro-inflammatory mediators such as nitric oxide (NO) and prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) in LPS-stimulated RAW 264.7 cells. The ethanol extracts and MHMIXs also attenuated the production of pro-inflammatory cytokines, including interleukin-$1{\beta}$ ($IL-1{\beta}$) and tumor necrosis $factor-{\alpha}$ ($TNF-{\alpha}$) by suppressing their protein expression, respectively. Interestingly, MHMIX-1, which basic ingredients are EESF, EEGU and EEDS in the proportion 3:1:1, more safely and effectively inhibits the LPS-induced inflammatory status in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages compared to ethanol extracts of each medicinal herb and other MHMIXs without causing any cytotoxic effects. Our study provides scientific evidence to support that a berbal mixture, MHMIX-1 may be useful in the treatment of inflammatory diseases by inhibiting inflammatory regulator responses in activated macrophages.
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문제 정의
7 대식세포 모델에서 비교하였다. 아울러 각 에탄올 추출물의 혼합비율을 달리한 추출혼합물들(medicinal herber mixtures, MHMIXs)을 이용하여 보다 안전하고 항염증 효능이 우수한 혼합의 비율을 발굴하고자 본 연구를 실시하였다.
제안 방법
EIA kit는 Cayman Chemicals (Ann Arbor, MI, USA)에서 구입하였다. RAW 264.7 대식세포에 다양한 농도의 한약재 추출물 및 추출혼합물을 1시간 선 처리 후, LPS (100 ng/ml)를 처리한 배지에서 24시간동안 세포를 배양시킨 후 상층액만 이용하여 PGE2 EIA kit에 제시된 방법에 따라 처리한 다음 ELISA reader를 이용한 420 nm의 흡광도로 반응의 정도를 비교하였다.
각 한약재 추출물의 항염증 효능 실험조건을 설정하기 위하여 각 추출물 및 추출혼합물을 24시간 동안 적정 농도로 RAW 264.7 대식세포 처리한 후 MTT assay를 실시하여 세포 생존도 변화를 측정하였다. 고삼 추출물(EESF)은 20 μg/ml까지는 세포 생존도에 거의 영향을 없었으나, 30 μg/ml 이상에서부터는 농도 의존적으로 억제되었다(Fig.
본 실험에서 사용한 한약재인 고삼, 감초 및 백선피는 ㈜대한생약(부산, 한국)에서 파쇄된 상태로 구입하였다. 고삼 에탄올 추출물(ethanol extract of S. flavescens, EESF), 감초 에탄올 추출물(ethanol extract of G. uralensis, EEGU) 및 백선피 에탄올 추출물(ethanol extract of D. dasycarpus, EEDD)을 얻기 위하여 각 약재의 100 g을 100% 에탄올 1 l에 침지하여 추출하였다. 추출된 용매를 rotary evaporator (Eyela, A-1000, Japan)를 이용하여 농축시킨 후 dimethyl sulfoxide (DMSO, SigmaAldrich Chemical Co.
다음은 동일한 조건에서 또 다른 중요한 염증 매개인자인 PGE2 [4, 22]의 생성에 미치는 각 한약재의 단독 추출물 및 추출혼합물의 영향을 조사하였다. Fig.
동일한 조건에서 배양된 RAW 264.7 세포의 배양액을 이용하여 IL-1β 및 TNF-α의 생성 양을 제시된 방법에 따라 처리한 다음 ELISA reader를 이용한 450 nm의 흡광도로 반응의 정도를 측정하였다.
배양액 100 μl와 동량의 Griess Reagent를 상온에서 반응 시킨 후 ELISA reader로 540 nm에서 흡광도를 측정하였는데, sodium nitrite (NaNO2)의 농도 별 표준곡선을 이용하여 배양액 내의 NO 농도를 결정하였다.
이러한 측면에서 성공적인 기능성 식의약 소재 발굴을 위한 약재들에 대한 과학적인 근거 제공이 우선적으로 이루어져야 할 것이다. 본 연구에서는 한의학의 본초학적 이론에 근거하여, 항염증에 효과가 있을 것으로 보이는 고삼(Sophora flavescens Ait, 苦蔘), 감초 (Glycyrrhiza uralensis Fischer, 甘草) 및 백선피(Dictamnus dasycarpus Turcz, 白鮮皮)의 에탄올 추출물에 대한 항염증 효능을 RAW 264.7 대식세포 모델에서 비교하였다. 아울러 각 에탄올 추출물의 혼합비율을 달리한 추출혼합물들(medicinal herber mixtures, MHMIXs)을 이용하여 보다 안전하고 항염증 효능이 우수한 혼합의 비율을 발굴하고자 본 연구를 실시하였다.
세포 배양액 내의 pro-inflammatory cytokine (IL-1β 및 TNF-α)의 양을 측정하기 위한 Quantikine ELISA kit는 R&D systems (Minneapolis, MN, USA)에서 구입하였다.
이 결과를 바탕으로 각 추출물의 항염증 효능 상대적 비교를 위하여 20 μg/ml로 농도를 설정하였다.
이를 위하여 RAW 264.7 세포에 20 μg/ml의 고감, 감초, 백선피 추출물과 동량의 추출혼합물을 1시간 전 처리한 후 100 ng/ml의 lipopolysaccharide (LPS)를 처리하여 24시간 배양한 후 세포 배양액을 수거하였다.
이를 위해 6 well plate에 2×105/well의 RAW 264.7세포를 분주하고 각 추출물을 농도별(0, 10, 20, 30, 40, 50 μg/ ml)로 24 시간 동안 처리하였다.
이상의 결과를 바탕으로 검증 농도(20 μg/ml)를 설정한 후, RAW 264.7 대식세포에서 LPS에 의해 유도되는 염증 매개인 자인 NO의 생성과 NO 생성에 관여하는 iNOS 단백질의 발현 증가에 미치는 각 추출물 및 추출혼합물의 영향을 조사하였다.
1% Tween 20을 함유한 PBS 용액)에서 1시간 동안 반응시킨 후, 각 검증 단백질에 대한 항체(Santa Cruz Biotechnology, Santa Cruz, CA, USA)를 가하여 4℃에서 overnight 반응시켰다. 이어서 0.1% Tween 20을 함유한 PBST 용액으로 10분간 3회 세척한 다음, 이차 항체 (Amersham Corp., Arlington Heights, IL, USA)로 실온에서 1시간 반응 후 PBST 용액으로 10분간 3회 세척한 다음, enhanced chemiluminescence (ECL) detection kit (Amersham Corp.)를 이용하여 X-ray film 상에서 단백질을 확인하였다.
전기영동을 위한 단백질 시료의 추출을 위해 세포를 PBS로 1회 세척한 후, lysis buffer (0.5% Triton, 50 mM β-glycerophosphate (pH 7.2), 0.1 mM sodium vanadate, 2 mM MgCl2, 1 mM EGTA, 1 mM dithiothreitol, 2 μg/ml leupeptin, 0.1 mM phenylmethylsulfonylurea 및 4 μg/ml aprotinin)를 넣어 4℃에서 30분간 반응시키고 12,000× g에서 10분간 원심분리하고, 단백질 정량은 Bradford protein assay kit를 사용하여 595 nm에서 흡광도를 측정하여 실시하였다.
74%로 나타났다. 추출된 각 추출물은 Table 1에 제시된 비율로 혼합하여 추출혼합물(MHMIXs)을 조성한 후 단일 추출물과의 효능을 비교하였다.
대상 데이터
RAW 264.7 대식세포는 American Type Culture Collections (Manassas, VA, USA)에서 분양 받았으며, 세포배양을 위해 10% fetal bovine serum (FBS), 100 units/ml penicillin 및 100μg/ml streptomycin을 포함하는 Dulbecco's modified Eagle's minimum essential medium (DMEM)을 사용하였다.
본 실험에서 사용한 한약재인 고삼, 감초 및 백선피는 ㈜대한생약(부산, 한국)에서 파쇄된 상태로 구입하였다. 고삼 에탄올 추출물(ethanol extract of S.
데이터처리
다양한 실험으로부터 얻은 결과는 mean ± standard error로 기록하였고, 유의성 검증은 Student's T-test 분석법을 이용 하여 결정하였다.
이론/모형
세포는 37℃, 5% CO2 조건에서 배양하였다. 각 추출물 및 추출혼합물의 세포 생존도에 미치는 영향을 3-[4,5-dimethylthiazol-2-yl]-2,5 diphenyl tetrazolium bromide (MTT) assay 방법으로 분석하였다. 이를 위해 6 well plate에 2×105/well의 RAW 264.
성능/효과
7 대식세포에서 LPS에 의해 유도되는 염증 매개인 자인 NO의 생성과 NO 생성에 관여하는 iNOS 단백질의 발현 증가에 미치는 각 추출물 및 추출혼합물의 영향을 조사하였다. Fig. 2A의 결과에서 알 수 있듯이, 100 ng/ml의 LPS 처리에 의해 현저히 증가된 NO가 각 한약재 단독 추출물과 추출혼합물의 선 처리에 의하여 유의적으로 억제되었다. 비록 단독 한약재 추출물 중에서 백선피 추출물(EEDD)이 NO 생성 억제에 가장 효과가 좋았으나 백선피 추출물(EEDD)은 20 μg/ml 처리 농도에서 약간의 세포 독성이 확인되어 NO 생성 억제 효과가 세포 독성에 의한 복합적인 효과로 추정된다.
[4, 22]의 생성에 미치는 각 한약재의 단독 추출물 및 추출혼합물의 영향을 조사하였다. Fig. 2B의 결과에서 알 수 있듯이 LPS 단독 처리에 의해 현저히 증가된 PGE2가 각 한약재 추출물과 추출혼합물의 선 처리에 의해 모두 유의적으로 억제 되었는데, 단독 추출물 중 감초 추출물(EEGU)의 억제 효과가 가장 높게 나타났다. 그리고 추출혼합물 모두가 감초 추출물(EEGU) 보다는 PGE2 생성 억제력이 낮았지만, 추출혼합물(MHMIX)-1, -2 및 -3이 추출혼합물-4 및 고삼(EESF)과 백설피 추출물(EEDD)에 비하여 유의적인 PGE2 생성 감소 효능을 보여주었다.
LPS에 의하여 유도된 IL-1β는 단독 및 추출혼합물 모두에 의하여 유의적으로 억제되었는데(Fig. 3A), 단독 추출물의 경우 고삼 추출물(EESF)에서, 추출혼합물 중에서는 MHMIX-1이 가장 높은 억제력을 보여 주었다.
TNF-α 억제효과의 경우, 단독 추출물 중 고삼 추출물(EESF)이 가장 우수한 억제력으로 보였으며, 추출혼합물 중에서는 MHMIX-1이 다소 강한 TNF-α 생성 억제 효능을 보였다(Fig. 3B).
그리고 감초 추출물 (EEGU)은 20 μg/ml까지, 백선피 추출물(EEDD)은 20 μg/ml 처리군에서 약간의 세포독성 효과를 보였으며, 그 이상의 농도에서는 처리 농도 의존적으로 생존도가 억제되었다(Fig. 1B, Fig. 1C).
그리고 추출혼합물 모두가 감초 추출물(EEGU) 보다는 PGE2 생성 억제력이 낮았지만, 추출혼합물(MHMIX)-1, -2 및 -3이 추출혼합물-4 및 고삼(EESF)과 백설피 추출물(EEDD)에 비하여 유의적인 PGE2 생성 감소 효능을 보여주었다. 그리고 염증 반응에서 PGE2 생성에 중요한 유도성 효소인 COX-2의 발현[4, 22]에 미치는 영향을 조사한 결과(Fig. 2D)에서, LPS 처리에 의한 PGE2의 생성 및 각 단독 한약제 추출물의 효과와 유사하게 COX-2의 발현이 증가되거나 억제되었다. 그러나 추출혼합물 처리군들에서 PGE2의 생성 억제 효과가 있었음에도 불구하고 COX-2의 발현은 LPS 처리군에 비하여 감소되지는 않았다.
2B의 결과에서 알 수 있듯이 LPS 단독 처리에 의해 현저히 증가된 PGE2가 각 한약재 추출물과 추출혼합물의 선 처리에 의해 모두 유의적으로 억제 되었는데, 단독 추출물 중 감초 추출물(EEGU)의 억제 효과가 가장 높게 나타났다. 그리고 추출혼합물 모두가 감초 추출물(EEGU) 보다는 PGE2 생성 억제력이 낮았지만, 추출혼합물(MHMIX)-1, -2 및 -3이 추출혼합물-4 및 고삼(EESF)과 백설피 추출물(EEDD)에 비하여 유의적인 PGE2 생성 감소 효능을 보여주었다. 그리고 염증 반응에서 PGE2 생성에 중요한 유도성 효소인 COX-2의 발현[4, 22]에 미치는 영향을 조사한 결과(Fig.
본 연구에서는 세 가지 한약제 추출물 및 다양한 비율로 조성된 추출혼합물의 항염증 효능을 조사하였으며, 각각의 단일 추출물과 추출복합물 모두 항염증 조절제로서의 발굴 가능성이 있음을 확인하였다. 아울러 비록 추가적인 기전 연구 및 동물 실험을 통한 확인이 요구되지만, 고삼 추출물(EESF), 감초 추출물(EEGU) 및 백선피 추출물(EEDD)이 3:1:1로 혼합된 추출복합물 MHMIX-1이 항염증 관련 식의약 소재 개발에 보다 효과적임을 제안한다.
아울러 4종의 추출혼합물(MHMIX-1, -2, -3 및 -4) 20 μg/ml를 24시간 동안 대식세포에 처리한 결과, 4종의 혼합추출물들은 모두 유의적인 세포 독성을 보이지 않아 단일 한약재 추출물에 비해 추출 혼합물이 세포 생존도에 미치는 영향, 즉 세포 독성이 현저히 낮음을 확인하였다.
아울러 MHMIX-1의 IL-1β 생산 억제력은 고삼 추출물(EESF) 보다 다소 높게 나타났으며, 이는 IL-1β 단백질 발현 측면에서도 매우 유사한 결과로 나타났다(Fig. 3C).
특히 백선피 자체가 간 독성을 유발할 수 있다는 임상적 사례[8]를 고려할 경우, 약간의 세포 독성이라 할지라도 유해성 검증 측면에서 제고되어야 할 부분이다. 염증성 반응에 따른 NO의 생성에 중요한 역할을 하는 iNOS 단백질[7, 15]의 발현 변화를 Western blotting을 통하여 확인해 본 결과, NO 생성 억제와 유사하게 단백질의 발현이 억제 되는 것이 확인되었다(Fig. 2C). 이상의 결과에서 염증 반응에 중요한 매개체로 작용하는 NO 생성 억제 효과는 한약재 단독 추출물들에 비해서 추출혼합물이 오히려 우수하다는 점을 확인하였으며, 이는 iNOS 발현 억제를 통하여 이루어지고 있음을 알 수 있었다.
2C). 이상의 결과에서 염증 반응에 중요한 매개체로 작용하는 NO 생성 억제 효과는 한약재 단독 추출물들에 비해서 추출혼합물이 오히려 우수하다는 점을 확인하였으며, 이는 iNOS 발현 억제를 통하여 이루어지고 있음을 알 수 있었다.
후속연구
비록 고삼 추출물(EESF)과의 비교에서 MHMIX-1이 다소 낮은 TNF-α 생성 억제력을 보였으나 IL-1β생성 억제 효능을 복합적으로 고려할 경우, MHMIX-1의 염증성 cytokine 생성 억제력은 본 연구에서 조사한 4가지 추출혼합물 및 단독 추출물 중에서 가장 우수할 것으로 기대된다.
본 연구에서는 세 가지 한약제 추출물 및 다양한 비율로 조성된 추출혼합물의 항염증 효능을 조사하였으며, 각각의 단일 추출물과 추출복합물 모두 항염증 조절제로서의 발굴 가능성이 있음을 확인하였다. 아울러 비록 추가적인 기전 연구 및 동물 실험을 통한 확인이 요구되지만, 고삼 추출물(EESF), 감초 추출물(EEGU) 및 백선피 추출물(EEDD)이 3:1:1로 혼합된 추출복합물 MHMIX-1이 항염증 관련 식의약 소재 개발에 보다 효과적임을 제안한다.
일반적으로 COX-2의 발현이 증가되면 PGE2를 비롯한 다양한 PGs의 생성이 증가 되지만, PGs 생성 증가를 위해서는 COX-2 단백질 발현보다는 COX-2의 효소적 활성이 더 중요하다[9, 12]. 아울러 세포가 처한 다양한 환경에 따른 COX-2의 발현이 전사 및 번역 수준에서, 또한 mRNA 및 단백질 반감기의 차이가 나타날 수 있다는 점[16, 18] 등을 고려하여 추출혼합물 처리에 의한 PGE2의 생성이 감소하였음에도 불구하고 COX-2의 발현이 증가된 점에 관해서는 부가적인 연구가 요구된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
염증 작용은 인체내에서 어떠한 영향을 미치는가?
염증은 세균 감염 같은 외부자극에 대한 면역방어기전의 일종으로 혈류량 및 체온의 증가, 홍조 현상, 종창 및 통증을 동반하는 것으로 알려져 있다. 염증 작용은 외부 감염에 대한 면역 방어기전과 같은 생리적 작용에 중요하게 작용하지만, 류마티스 관절염, 알츠하이머병 등과 같은 자가면역 질환 및 여러 가지 만성적 질환의 중요한 발병 및 진행 요인으로 작용한다[7, 17]. 이러한 염증 반응에서는 일반적으로 대식세포 (macrophage)가 외부 침입 병원체에 반응하여 tumor necrotic factor-ɑ (TNF-ɑ), interleukin-1β (IL-1β)와 같은 염증 유발 cytokine (pro-inflammatory cytokine)을 생성하고, inducible nitric oxide (NO) synthase (iNOS)와 cyclooxygenase-2 (COX-2)의 합성을 증대시켜 NO 및 prostaglandin E2 (PGE2)의 과도한 생성을 동반한다[10, 15, 20, 23].
염증은 무엇인가?
염증은 세균 감염 같은 외부자극에 대한 면역방어기전의 일종으로 혈류량 및 체온의 증가, 홍조 현상, 종창 및 통증을 동반하는 것으로 알려져 있다. 염증 작용은 외부 감염에 대한 면역 방어기전과 같은 생리적 작용에 중요하게 작용하지만, 류마티스 관절염, 알츠하이머병 등과 같은 자가면역 질환 및 여러 가지 만성적 질환의 중요한 발병 및 진행 요인으로 작용한다[7, 17].
염증이 유도된 대식세포에서 iNOS 단백질의 발현 증가에 한약재 단독 추출물(고삼, 감초, 백선피)과 추출혼합물이 미치는 영향은?
2C). 이상의 결과에서 염증 반응에 중요한 매개체로 작용하는 NO 생성 억제 효과는 한약재 단독 추출물들에 비해서 추출혼합물이 오히려 우수하다는 점을 확인하였으며, 이는 iNOS 발현 억제를 통하여 이루어지고 있음을 알 수 있었다.
참고문헌 (23)
Botting, R. M. 2006. Inhibitors of cyclooxygenases: mechanisms, selectivity and uses. J Physiol Pharmacol 5, S113-124.
Brynskov, J., Foegh, P., Pedersen, G., Ellervik, C., Kirkegaard, T., Bingham, A. and Saermark, T. 2002. Tumour necrosis factor alpha converting enzyme (TACE) activity in the colonic mucosa of patients with inflammatory bowel disease. Gut 51, 37-43.
Cheung, C. Y., Poon, L. L. and Lau, A. S. 2002. Induction of proinflammatory cytokines in human macrophages by influenza A (H5N1) viruses: a mechanism for the unusual severity of human disease? Lancet 360, 1831-1837.
Dempke, W., Rie, C., Grothey, A. and Schmoll, H. J. 2001. Cyclooxygenase-2: a novel target for cancer chemotherapy? J Cancer Res Clin Oncol 127, 411-417.
Dowlati, Y., Herrmann, N., Swardfager, W., Liu, H., Sham, L., Reim, E. K. and Lanctot, K. L. 2010. A meta-analysis of cytokines in major depression. Biol Psychiatry 67, 446-457.
Gonzalez-Periz, A. and Claria, J. 2007. New approaches to the modulation of the cyclooxygenase-2 and 5-lipoxygenase pathways. Curr Top Med Chem 7, 297-309.
Guzik, T. J., Korbut, R. and Adamek-Guzik, T. 2003. Nitric oxide and superoxide in inflammation and immune regulation. J Physiol Pharmacol 54, 469-487.
Jang, J. S., Seo, E. G., Han, C., Chae, H. B., Kim, S. J., Lee, J. D. and Wang, J. H. 2008. Four cases of toxic liver injury associated with Dictamnus dasycarpus. Korean J Hepatol 14, 206-212.
Jerde, T. J., Mellon, W. S., Bjorling, D. E. and Nakada, S. Y. 2006. Evaluation of urothelial stretch-induced cyclooxygenase-2 expression in novel human cell culture and porcine in vivo ureteral obstruction models. J Pharmacol Exp Ther 317, 965-972.
Jin, H. J., Kim, J. S., Kang, S. S., Son, K. H., Chang, H. W. and Kim, H. P. 2010. Anti-inflammatory and anti-arthritic activity of the roots of Sophora flavescens. J Ethnopharmacol 127, 589-595.
Liu, D., Ji, L., Wang, Y. and Zheng, L. 2012. Cyclooxygenase-2 expression, prostacyclin production and endothelial protection of high-density lipoprotein. Cardiovasc Hematol Disord Drug Targets 12, 98-105.
Masters, S. L., Simon, A., Aksentijevich, I. and Kastner, D. L. 2009. Horror autoinflammaticus: the molecular pathophysiology of autoinflammatory disease. Ann Rev Immunol 27, 621-668.
Moncada, S., Palmer, R. M. and Higgs, E. A. 1991. Nitric oxide: physiolohy, pathophysiolohy, and pharmacology. Pharmacol Rev 43, 109-142.
Newton, R., Seybold, J., Kuitert, L. M., Bergmann, M. and Barnes, P. J. 1998. Repression of cyclooxygenase-2 and prostaglandin E2 release by dexamethasone occurs by transcriptional and post-transcriptional mechanisms involving loss of polyadenylated mRNA. J Biol Chem 273, 32312-32321.
Patel, T. N., Shishehbor, M. H. and Bhatt, D. L. 2007. A review of high-dose statin therapy: targeting cholesterol and inflammation in atherosclerosis. Eur Heart J 28, 664-672.
Ristimaki, A., Garfinkel, S., Wessendorf, J., Maciag, T. and Hla, T. 1994. Induction of cyclooxygenase-2 by interleukin-1 alpha. Evidence for post-transcriptional regulation. J Biol Chem 269, 11769-11775.
Sarkar, D., Saha, P., Gamre, S., Bhattacharjee, S., Hariharan, C. and Ganguly, S. 2008. Anti-inflammatory effect of allylpyrocatechol in LPS-induced macrophages is mediated by suppression of iNOS and COX-2 via the NF- ${\kappa}B$ pathway. Int Immunopharmacol 8, 1264-1271.
Storck, M., Schilling, M., Burkhardt, K., Prestel, R., Abendroth, D. and Hammer, C. 1994. Production of proinflammatory cytokines and adhesion molecules in ex-vivo xenogeneic kidney perfusion. Transpl Int 7, 647-649.
Swardfager, W., Lanctot, K., Rothenburg, L., Wong, A., Cappell, J. and Herrmann, N. 2010. A meta-analysis of cytokines in Alzheimer's disease. Biol Psychiatry 68, 930-941.
Wink, D. A. and Mitchell, J. B. 1998. Chemical biology of nitric oxide: Insights into regulatory, cytotoxic, and cytoprotective mechanisms of nitric oxide. Free Radic Biol Med 25, 434-456.
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