이 논문은 Callyspongia elegans에서 서식하는 세균군집에 관한 내용이다. 해양세균은 marine agar를 사용하여 해면동물 C. elelgans에서 분리하였다. 그 결과 112균주를 분리하였으며, 본 연구에 사용하였다. 현미경 및 그람 염색을 통해 형태학적 표현형질을 측정하였다. 분리균주의 집락 색소는 노란색, 갈색, 아이보리색, 흰색으로 나타났다. 그람염색 결과 37균주는 그람양성균이였으며, 75균주는 그람 음성균이었다. 균주의 형태는 분리균주 중 79균주는 구균형태로 관찰되었고, 16균주는 간균이었다. 16S rDNA 유전자 염기서열 분석을 통해 분리균주들의 계통학적 특성을 파악하였다. 그 결과, 분리된 112균주는 5개의 주요 계통군이 확인되었으며, Alphaproteobacteria는 39%, Gammaproteobacteria는 22%, Acinobacteria는 14%, Firmicutes는 9%, Bacteroidetes는 6%에 속하는 것으로 나타났다. 그리고 16S rDNA 유전자 염기서열을 통해 계통분석 결과 15균주가 새로운 속 또는 종으로 분류될 가능성을 나타났으며, 앞으로 추가적인 실험이 필요한 실정이다.
이 논문은 Callyspongia elegans에서 서식하는 세균군집에 관한 내용이다. 해양세균은 marine agar를 사용하여 해면동물 C. elelgans에서 분리하였다. 그 결과 112균주를 분리하였으며, 본 연구에 사용하였다. 현미경 및 그람 염색을 통해 형태학적 표현형질을 측정하였다. 분리균주의 집락 색소는 노란색, 갈색, 아이보리색, 흰색으로 나타났다. 그람염색 결과 37균주는 그람양성균이였으며, 75균주는 그람 음성균이었다. 균주의 형태는 분리균주 중 79균주는 구균형태로 관찰되었고, 16균주는 간균이었다. 16S rDNA 유전자 염기서열 분석을 통해 분리균주들의 계통학적 특성을 파악하였다. 그 결과, 분리된 112균주는 5개의 주요 계통군이 확인되었으며, Alphaproteobacteria는 39%, Gammaproteobacteria는 22%, Acinobacteria는 14%, Firmicutes는 9%, Bacteroidetes는 6%에 속하는 것으로 나타났다. 그리고 16S rDNA 유전자 염기서열을 통해 계통분석 결과 15균주가 새로운 속 또는 종으로 분류될 가능성을 나타났으며, 앞으로 추가적인 실험이 필요한 실정이다.
The aim of this study was to investigate the bacterial community inhabited in Callyspongia elegans. Marine bacteria were isolated from the marine sponge C. elegans using marine agar. The resulting 112 isolated pure cultures were then used for further study. They were characterized by determining mor...
The aim of this study was to investigate the bacterial community inhabited in Callyspongia elegans. Marine bacteria were isolated from the marine sponge C. elegans using marine agar. The resulting 112 isolated pure cultures were then used for further study. They were characterized by determining morphological characteristics through Gram's staining and morphological observation. The colony pigments of bacterial isolates were characterized as yellow, brown, ivory, and white. Thirty-seven strains were found to be Gram-positive and 75 strains were Gram-negative. Seventy-nine strains were coccus-shaped, while 16 strains were rod-shaped. On the basis of the results of the comparative analyses of 16S rDNA gene sequences, the 112 isolated bacteria were divided into 5 major groups: Alphaproteobacteria (39%), Gammaproteobacteria (22%), Actinobacteria (14%), Fimicutes (9%), and Bacteroidetes (6%). It is strongly suggested that fifteen isolates are candidates for a new genera or species, based on the analyses of 16S rDNA gene sequences.
The aim of this study was to investigate the bacterial community inhabited in Callyspongia elegans. Marine bacteria were isolated from the marine sponge C. elegans using marine agar. The resulting 112 isolated pure cultures were then used for further study. They were characterized by determining morphological characteristics through Gram's staining and morphological observation. The colony pigments of bacterial isolates were characterized as yellow, brown, ivory, and white. Thirty-seven strains were found to be Gram-positive and 75 strains were Gram-negative. Seventy-nine strains were coccus-shaped, while 16 strains were rod-shaped. On the basis of the results of the comparative analyses of 16S rDNA gene sequences, the 112 isolated bacteria were divided into 5 major groups: Alphaproteobacteria (39%), Gammaproteobacteria (22%), Actinobacteria (14%), Fimicutes (9%), and Bacteroidetes (6%). It is strongly suggested that fifteen isolates are candidates for a new genera or species, based on the analyses of 16S rDNA gene sequences.
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문제 정의
본 연구에서는 Demospongiae 강에 속하는 해면 Callyspongia elegans에서 배양가능한 세균을 분리·배양하여 탐색하고, 16S rDNA를 비교하여 세균의 군집 구조를 분석하고자 한다.
제안 방법
16S rDNA gene 염기서열로부터 계통학적 다양성을 분석해 보았다. 그 결과, C.
16S rDNA 유전자 증폭하기 위해 27 Forward (5′-AGAGTTTGATC CTGGCTCAG-3′) primer와 1522 Reverse (5′-AAGGAGGT GATCCAGCCGCA-3′) primer를 사용하였다.
PCR 반응의 조성은 추출된 DNA 1 µl, 10 pmol/primer 1 µl, 10 mM dNTPs, 10X PCR buffer, 5 Unit Taq polymerase (TaKaRa, Japan), DW를 혼합하여 최종부피 25 µl로 맞추어 수행하였다. PCR 반응은 95℃에서 Initial denaturation 5분, 30 cycle 동안 94℃에서 denaturation 1분, 55℃에서 annealing 1분, 72℃에서 extention 3분을, 72℃분간 final extention로, PCR (Thermal cycler, Bio-Rad) 조건하에 실시하였다. 증폭된 PCR 산물은 1% agarose에서 전기영동(Mupid®-ex, ADVANCE)하여 확인하였다.
PCR 반응의 조성은 추출된 DNA 1 µl, 10 pmol/primer 1 µl, 10 mM dNTPs, 10X PCR buffer, 5 Unit Taq polymerase (TaKaRa, Japan), DW를 혼합하여 최종부피 25 µl로 맞추어 수행하였다.
균질화된 시료는 연속희석법으로 희석 후, 현탁액을 marine agar (MA, Difco, USA), R2A (Difco) 배지에 도말 한 후 25℃에 7일간 배양하였다. 각 배지상에 나타난 군락을 육안으로 관찰했을 때 군락의 모양, 크기, 색깔 등에 따라 형태적으로 분류, 선별하여 순수분리 하였다. 각 분리된 미생물은 20% (v/v) glycerol에 현탁하여 초저온 냉동고(-80℃)에 동결 보관하였다.
균주의 형태학적 특징은 그람염색으로 그람양성균과 그람음성균을 구분하였다. 그람염색은 Color Gram 2 kit (bioMérieux)를 이용하여 균체를 슬라이드 글라스에 열고정하고, 크리스탈 바이올렛으로 1분 염색 후 세척, 요오드 용액으로 1분간 고정, 알코올로 15초간 탈색 후 사프라닌으로 다시 45초 염색하는 과정을 통해 수행하였다.
85% NaCl 용액에 넣어 homogenizer로 균질화 하였다. 균질화된 시료는 연속희석법으로 희석 후, 현탁액을 marine agar (MA, Difco, USA), R2A (Difco) 배지에 도말 한 후 25℃에 7일간 배양하였다. 각 배지상에 나타난 군락을 육안으로 관찰했을 때 군락의 모양, 크기, 색깔 등에 따라 형태적으로 분류, 선별하여 순수분리 하였다.
그람염색은 Color Gram 2 kit (bioMérieux)를 이용하여 균체를 슬라이드 글라스에 열고정하고, 크리스탈 바이올렛으로 1분 염색 후 세척, 요오드 용액으로 1분간 고정, 알코올로 15초간 탈색 후 사프라닌으로 다시 45초 염색하는 과정을 통해 수행하였다.
또한 방선균은 ISP2 배지에서 7–10일 배양 후 포자의 색상을 기록하였다.
모아진 DNA을 70% ethanol로 세척하여 TE buffer 50‒100µl와 RNase (10 mg/ml)를 첨가한 후 UV-Vis Spectrophotometer(UV, mini240, Shamdzu)로 DNA 농도를 측정한다.
분리된 plasmid DNA는 ㈜제노텍(Korea)에 의뢰하여 염기서열을 분석 하였다. 분석된 염기서열은 EzBioCloud 이용하여 유사한 염기서열을 비교하여 가장 근연속이나 종으로 나타나는 서열을 확인하였다.
염기서열 분석 및 계통학적 분석
분리된 균주의 16S rDNA 유전자 염기서열은 EzbioCloud를 이용하여 유사한 염기서열을 비교하였다. 계통수(Felsenstein, 1981; Saitou and Nei, 1987)를 작성한 결과는 Fig.
분리된 plasmid DNA는 ㈜제노텍(Korea)에 의뢰하여 염기서열을 분석 하였다. 분석된 염기서열은 EzBioCloud 이용하여 유사한 염기서열을 비교하여 가장 근연속이나 종으로 나타나는 서열을 확인하였다. 본 연구에 의해서 결정된 염기서열과 EzBioCloud에서 회수된 표준미생물 염기서열은 Mega 4.
Phenol/ Chloroform/ Isoamylalcohol (25:24:1)를 첨가 후 원심분리(13,000 rpm, 5분)하여 깨끗한 상층액을 새 마이크로 튜브에 옮겨주고, 옮겨진 부피의 2배의 chloroform/ isoamylalcohol (24:1)를 첨가하였다. 상층액을 새 튜브에 조심스럽게 옮겨 isopropanol를 첨가하여 DNA를 확인하였다. 모아진 DNA을 70% ethanol로 세척하여 TE buffer 50‒100µl와 RNase (10 mg/ml)를 첨가한 후 UV-Vis Spectrophotometer(UV, mini240, Shamdzu)로 DNA 농도를 측정한다.
클로닝 산물은 ampicillin, IPTG, X-gal이 포함된 LB agar 배지에서 도말 후 37℃, 16시간 동안 배양하여 흰 집락을 선별하였다. 선별한 집락을 ampicillin이 포함된 LB broth에 접종하여 16시간 배양하여 DNA-spin Plasmid DNA Extraction Kit (iNtRON, Korea)를 사용하여 plasmid DNA를 분리하였다. 분리된 DNA는 1% agarose gel에서 전기영동하여 확인하였다.
순수 배양된 세균들은 MA, R2A 평판배지에 2–3일 배양한 후 집락의 색상을 기록하였다.
그람염색은 Color Gram 2 kit (bioMérieux)를 이용하여 균체를 슬라이드 글라스에 열고정하고, 크리스탈 바이올렛으로 1분 염색 후 세척, 요오드 용액으로 1분간 고정, 알코올로 15초간 탈색 후 사프라닌으로 다시 45초 염색하는 과정을 통해 수행하였다. 염색 후 광학현미경(AX10SCOPE A1, ZEISS)을 통해서 그람양성균과 그람음성균을 관찰하였다.
채집한 해면은 멸균된 인공해수에 세척 후, 해면의 안쪽을 1 g 정도 잘라 멸균된 0.85% NaCl 용액에 넣어 homogenizer로 균질화 하였다. 균질화된 시료는 연속희석법으로 희석 후, 현탁액을 marine agar (MA, Difco, USA), R2A (Difco) 배지에 도말 한 후 25℃에 7일간 배양하였다.
대상 데이터
16S rDNA 분석은 추출된 genomic DNA를 사용하였다. 16S rDNA 유전자 증폭하기 위해 27 Forward (5′-AGAGTTTGATC CTGGCTCAG-3′) primer와 1522 Reverse (5′-AAGGAGGT GATCCAGCCGCA-3′) primer를 사용하였다.
본 연구에서는 해면 Callyspogia elegans는 제주도 문섬 앞바다 수심 10 m에서 스쿠버 다이빙에 의해 채집하였다. 채집한 해면은 즉시 해수가 담아진 멸균된 용기에 보관하여 운반하였으며, 4℃에서 보관 후 미생물을 분리하는데 사용하였다.
데이터처리
분석된 염기서열은 EzBioCloud 이용하여 유사한 염기서열을 비교하여 가장 근연속이나 종으로 나타나는 서열을 확인하였다. 본 연구에 의해서 결정된 염기서열과 EzBioCloud에서 회수된 표준미생물 염기서열은 Mega 4.0 software (Tamura et al., 2007)에 포함된 Clustal W 프로그램(Thomson et al., 1994)을 이용하여 multiple alignment로 정렬하였다.
이론/모형
Genomic DNA는 MINI-PREP 방법을 사용하여 분리하였다. 액체배지에 접종하여 배양 후 원심분리로 상층액을 제거 후 모아진 pellet을 사용하였다.
성능/효과
MA보다 R2A 배지에서 세균수가 훨씬 낮게 계수되었다. C. elegans에서 배양가능한 세균은 총 112균주가 분리되었다. 그람염색법으로 확인한 결과로 그람양성균은 37균주, 그람음성균은 75균주로 그람음성균이 더 많게 분포하는 것으로 나타났다.
Bacteroidetes 그룹에 속하는 균주는 다른 그룹과는 달리 낮은 염기서열 유사도를 보여주었다. CE81는 Actibacter sediminis JC2129T와 91.9%, Tenacibaculum 속(genus) 분리균주들은 Tenacibaculum crassostreae JO-1T , Tenacibaculum litopenaei B-IT , Tenacibaculum litoreum CL-TF13T 91.8‒94.5%낮은 상동성이 확인되었다. 이와 같이 16S rDNA 유전자 염기서열 비교를 통해 분리된 112균주 중 16균주가 표준균주와 유전자 염기서열의 97% 이하의 상동성을 보여 새로운 속 또는 종으로 보고될 가능성이 있다고 판단된다.
1%의 유사도를 보여주었다. Endozoicomonas 속은 Endozoicomonas elysicola MKT110T와 Endozoicomonas montiporae CL-33T과 93.6‒93.8, 96.2%의 상동성을 보여주었다.
Firmicutes 그룹에 속해 있는 균주는 대부분 기존의 염기서열과 95.1‒100% 상동성을 보여주었으며, CE84는 Lysinibacillus massiliensis 4400831T과 97.2%, CR9, CR12는 각각 Paenibacillus chondroitinus DSM 5051T , Paenibacillus telluris PS38T와 96.8%와 95.1%의 낮은 유사도를 나타내었다. 그리고 Actinobacteria 그룹에 속하는 균주는 기존의 염기서열과 98.
Proteobacteria 계통군은 다시, Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria 계통에 각각 39%와 22%에 속하였음을 확인하였으며(Fig. 3), Proteobacteria가 다른 분류군에 비해 우점하는 것을 알 수 있었다. 이는 해양환경에서 일반적으로 서식하며, 해양 해면에서도 높은 비율로 분포하는 것으로 보고 되었고(Li et al.
Proteobacteria 그룹은 기존의 염기서열과 93–100%의 상동성을 나타내었다.
그람염색법으로 확인한 결과로 그람양성균은 37균주, 그람음성균은 75균주로 그람음성균이 더 많게 분포하는 것으로 나타났다. 균주의 집락의 색깔은 아이보리색, 노란색, 흰색, 갈색 등으로 다소 제한적으로 나타남을 알 수 있었다.
16S rDNA gene 염기서열로부터 계통학적 다양성을 분석해 보았다. 그 결과, C. elegans의 주요 세균 군집구조로 Proteobacteria(Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria), Actinobacteria, Firmicutes, Bacteroidetes의 4개의 문(Phylum), 5개의 강(Class), 9개의 목(order), 15개의 과(Family), 그리고 23개의 속(Genus)으로 구성되었다(Table 1). 그 중 Gammaproteobacteria 문(phylum)에는 4개의 목(order), 5개의 과(family), 5개의 속(genus)으로 Actionobacteria 문(phylum)에서는 5개의 과, 6개의 속(genus) 등 다양한 분류군이 나타났다(Table 1).
elegans의 주요 세균 군집구조로 Proteobacteria(Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria), Actinobacteria, Firmicutes, Bacteroidetes의 4개의 문(Phylum), 5개의 강(Class), 9개의 목(order), 15개의 과(Family), 그리고 23개의 속(Genus)으로 구성되었다(Table 1). 그 중 Gammaproteobacteria 문(phylum)에는 4개의 목(order), 5개의 과(family), 5개의 속(genus)으로 Actionobacteria 문(phylum)에서는 5개의 과, 6개의 속(genus) 등 다양한 분류군이 나타났다(Table 1).
elegans에서 배양가능한 세균은 총 112균주가 분리되었다. 그람염색법으로 확인한 결과로 그람양성균은 37균주, 그람음성균은 75균주로 그람음성균이 더 많게 분포하는 것으로 나타났다. 균주의 집락의 색깔은 아이보리색, 노란색, 흰색, 갈색 등으로 다소 제한적으로 나타남을 알 수 있었다.
1%의 낮은 유사도를 나타내었다. 그리고 Actinobacteria 그룹에 속하는 균주는 기존의 염기서열과 98.0‒100%의 상동성을 보여주었다. Bacteroidetes 그룹에 속하는 균주는 다른 그룹과는 달리 낮은 염기서열 유사도를 보여주었다.
3). 이 결과와 비교하여 볼 때 공통적으로 나타난 Proteobacteria를 제외하고는 세균군집 구조가 서로 다르게 분류되고 있음을 알 수 있었고, C. elegans에서는 다양한 세균군집을 나타났음을 확인하였다. 이는 해면 종에 따라 세균군집 구조가 서로 다르다는 연구(Li et al.
5%낮은 상동성이 확인되었다. 이와 같이 16S rDNA 유전자 염기서열 비교를 통해 분리된 112균주 중 16균주가 표준균주와 유전자 염기서열의 97% 이하의 상동성을 보여 새로운 속 또는 종으로 보고될 가능성이 있다고 판단된다. 향후 표준균주와 함께 실험이 신종 실험이 수행되어야 할 것이다.
그리고 남태평양에서 서식하는 Callyspongia sp. 주요 공생세균으로 Proteobacteria, Chloroflexi, Cyanobacteria의 3개의 문에 속하는 세균 그룹이 보고되었으나(Park, 2010), 본 연구에서는 Proteobacteria, Firmicutes, Actinobacteria, Bacteroidetes의 4개의 문에 속하는 세균 그룹이 확인되었다(Fig. 3). 이 결과와 비교하여 볼 때 공통적으로 나타난 Proteobacteria를 제외하고는 세균군집 구조가 서로 다르게 분류되고 있음을 알 수 있었고, C.
평판배양법으로 세균 수를 측정한 결과, MA 배지에서 분리한 세균은 4.8 × 104 CFU/g, R2A 배지에는 2.0 × 104 CFU/g의 세균수가 관찰되었다.
해면 C. elegans에서 분리된 112균주는 24속 52종으로 동정되었다. Proteobacteria 그룹은 기존의 염기서열과 93–100%의 상동성을 나타내었다.
후속연구
이와 같이 16S rDNA 유전자 염기서열 비교를 통해 분리된 112균주 중 16균주가 표준균주와 유전자 염기서열의 97% 이하의 상동성을 보여 새로운 속 또는 종으로 보고될 가능성이 있다고 판단된다. 향후 표준균주와 함께 실험이 신종 실험이 수행되어야 할 것이다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
계통 분류상, 가장 많은 해면이 속하는 강은 무엇인가?
무척추동물로 오랜 진화적 역사를 갖고 있는 해면은 3개의 주요 강 Calcarea, Demospongiae, Haxactinellida으로 나뉘며, Demospongiae 강에 가장 많은 해면이 속하는 것으로 보고되고 있다(Hentschel et al., 2006; Thomas et al.
계통 분류상, 해면은 어떤 강으로 나뉘는가?
무척추동물로 오랜 진화적 역사를 갖고 있는 해면은 3개의 주요 강 Calcarea, Demospongiae, Haxactinellida으로 나뉘며, Demospongiae 강에 가장 많은 해면이 속하는 것으로 보고되고 있다(Hentschel et al., 2006; Thomas et al.
해면에 서식하며, 숙주 해면과의 공생관계를 가지는 세균은 어떤 역할을 하는가?
해면에 서식하는 세균은 여과섭식하는 해면의 먹이원이기도 하지만, 소화과정과 면역반응에 저항하며 공생하면서 면역반응에 중요한 역할을 한다(Thoms et al., 2003; Cho and Park, 2009).
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