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자외선으로 유도된 Hs68 섬유아세포의 노화 반응에 대한 영실추출물의 억제 효능
Inhibitory Effect of Rosa multiflora hip Extract on UVB-induced Skin Photoaging in Hs68 Fibroblasts 원문보기

大韓化粧品學會誌 = Journal of the society of cosmetic scientists of Korea, v.41 no.4, 2015년, pp.351 - 359  

박지은 (코스맥스 R&I Center) ,  김형자 (한국과학기술연구원 강릉분원) ,  김수남 (한국과학기술연구원 강릉분원) ,  강승현 (코스맥스 R&I Center) ,  김연준 (코스맥스 R&I Center)

초록
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극심하고 지속적인 자외선에의 노출은 정상적인 피부구조를 파괴하는 다양한 피부 광노화 과정을 야기한다. 자외선은 인체 피부에서 세포외기질의 구성성분을 분해시키는 기질 분해효소인 matrix metalloproteinases(MMPs)의 발현을 활성화시키고, 콜라겐 합성은 감소시킴으로써 피부의 탄력과 구조적 치밀도를 약화시켜 궁극적으로 피부주름을 생성한다. 본 연구에서는 이러한 피부 광노화 현상을 완화시키는 소재로서 영실의 효능을 검증하고자 하였다. 먼저 인간 섬유아세포주인 Hs68을 이용하여 영실의 세포증식 촉진효능을 확인하였다. 여기에 더해 영실이 activator protein (AP)-1 전사인자의 억제를 통해 MMP의 발현을 감소시킴을 mRNA 및 단백질 수준에서 검증하였다. 또한, 진피층을 구성하는 타입 I형 콜라겐과 표피-진피 경계부를 단단히 고정시키는 역할을 하는 타입 IV형 콜라겐 역시 영실에 의해 발현이 증가하며, 자외선에 의한 염증반응의 억제에도 영실이 효과적으로 작용하는 것을 확인할 수 있었다. 결론적으로 본 연구를 통해 영실이 자외선에 의한 피부노화와 주름생성을 효과적으로 개선할 수 있는 가능성을 가짐으로써 항노화, 항염증 및 항주름 소재로서 화장품에 응용될 수 있을 것으로 기대된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Acute and chronic ultraviolet (UV) irradiation triggers severe skin photoaging processes, which directly disrupt the normal three-dimensional integrity of skin. UV light stimulates the expression of matrix metalloproteinases (MMPs) which degrade constituents of extracellular matrix (ECM) proteins. T...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 여러 연구결과들을 통해 영실의 관절염 완화[13], 항염증[14], 통증완화[15]에 대한 효능 등이 알려져 있으나 영실의 광노화에 대한 효과는 현재까지 알려진 바가 없다. 따라서 본 연구에서는 영실의 광노화 억제 효능을 인간 섬유아세포(Hs68)를 이용하여 확인함으로써 영실의 광노화 억제 효능을 검증하고, 이의 화장품소재로서의 가능성을 밝히고자 하였다.
  • 본 연구에서는 영실의 광노화 억제 효능을 다양한 관점에서 접근하고자 하였다. 평가시료의 선택은 우선 영실의 메탄올 추출물로부터 메틸렌 클로라이드, 에틸아세테이트, 부탄올 분획물을 획득한 다음 이들의 peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR)α 및 PPARγ 발현 증가 활성을 확인, 비교하는 과정을 통해 이들 중 가장 뛰어난 활성을 보이는 분획물을 시료로 사용하는 방법을 선택하였다.
  • 인체의 피부에서는 세 가지 PPAR 이성질체인 PPARα, PPARβ/δ, PPARγ가 주로 발현되며, 광노화 과정에서는 UVB 광선에 의해 이들 3가지 이성질체의 발현이 모두 현저하게 감소하게 된다[17]. 이 과정에서 PPAR 활성을 증가시키는 활성화제들의 사용이 피부에서도 효과를 발휘함이 여러 연구를 통해 보고된 바 있어 이에 PPAR 활성을 증가시키는 천연물의 발굴을 목표로 하였다[18,19]. 그 결과 영실 추출물이 PPARα 및 PPARγ 활성을 모두 증가시키는 dual agonist로서 작용함을 발견하였고, 그중에서도 메틸렌클로라이드 분획물이 가장 높은 활성을 보임을 확인하여, 해당 분획물을 이용한 광노화 억제효능 평가를 진행하였다(data not shown).
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
다양한 종류의 MMP는 상황에 따라 어떠한 반응을 유발하는가? 세포외기질 단백질의 분해뿐만 아니라 피부장벽 또는 염증에 대한 MMP의 역할 역시 여러 연구를 통해 알려지고 있다. 다양한 종류의 MMP들이 상황에 따라 염증반응을 촉진시키기도 하고 억제시키기도 하는데, 자외선 조사에 의해 광노화 반응이 유도된 경우에는 다양한 pro-inflammatory cytokine들의 발현이 MMP와 함께 증가하는 양상을 보인다[11,12].
여러 연구를 통해 밝혀진 영실의 효능은 무엇인가? 영실은 장미과의 찔레꽃열매를 말린 약재로 한국, 일본, 중국 등에서 전통적으로 감기, 독감, 퇴행성 및 류마티스성 관절염 등에 사용되어왔다. 여러 연구결과들을 통해 영실의 관절염 완화[13], 항염증[14], 통증완화[15]에 대한 효능 등이 알려져 있으나 영실의 광노화에 대한 효과는 현재까지 알려진 바가 없다. 따라서 본 연구에서는 영실의 광노화 억제 효능을 인간 섬유아세포(Hs68)를 이용하여 확인함으로써 영실의 광노화 억제 효능을 검증하고, 이의 화장품소재로서의 가능성을 밝히고자 하였다.
피부가 자외선에 노출되면 MMPs는 어떠한 형태로 발현이 증가하는가? MMP는 아연을 함유하는 단백질 분해효소로 25가지 종류가 알려져 있는데, 기질특이성의 차이나 세포막에 결합하는지 용해성 단백질로 방출되는지 에 따라 크게 콜라겐분해효소, 젤라틴분해효소, 스트로멜라이신 및 멤브레인형 MMP 로 구분된다[4]. 피부가 자외선에 노출되면 우선 콜라겐분해효소인 MMP-1의 발현이 급격히 증가하면서 진피에 존재하는 타입Ⅰ과 Ⅲ 콜라겐을 절단시켜 콜라겐 단편을 만들고, 다음으로 젤라틴분해효소인 MMP-2와 MMP-9이 이러한 콜라겐 단편들을 더욱 분해시킨다. 스트로멜라이신의 한 종류인 MMP-3의 경우에는 MMP-1, MMP-2, MMP-9의 전구체를 활성화 및 조절함으로써 콜라겐 분해를 더욱 촉진시키는 역할을 한다[6].
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참고문헌 (20)

  1. E. C. Naylor, R. E. B. Watson, and M. J. Sherratt, Molecular aspects of skin ageing, Maturitas, 69(3), 249 (2011). 

  2. M. A. Farage, K. W. Miller, P. Elsner, and H. I. Maibach, Intrinsic and extrinsic factors in skin ageing: a review, Int. J. Cosmet. Sci., 30(2), 87 (2008). 

  3. R. Pandel, B. Poljsak, A. Godic, and R. Dahmane, Skin photoaging and the role of antioxidants in its prevention, ISRN Dermatol., 2013, 930164 (2013). 

  4. R. Pallela, Y. Na-Young, and S. K. Kim, Anti-photoaging and photoprotective compounds derived from marine organisms, Mar. Drugs, 8(4), 1189 (2010). 

  5. T. Quan, Z. Qin, W. Xia, Y. Shao, J. J. Voorhees, and G. J. Fisher, Matrix-degrading metalloproteinases in photoaging, J. Investig. Dermatol. Symp. Proc., 14(1), 20 (2009). 

  6. Y. Xu and G. J. Fisher, Ultraviolet (UV) light irradiation induced signal transduction in skin photoaging, J. Dermatol. Sci. Suppl., 1(2), S1 (2005). 

  7. A. Kammeyer and R. M. Luiten, Oxidation events and skin aging, Ageing Res. Rev., 21, 16 (2015). 

  8. A. M. A. Velez and M. S. Howard, Collagen IV in normal and in disease process, N. Am. J. Med. Sci., 4(1), 1 (2012). 

  9. B. C. Yu, D. S. Lee, S. M. Bae, W. K. Jung, J. H. Chun, S. H. Urm, D. Y. Lee, S. J. Heo, S. G. Park, S. K. Seo, J. W. Yang, J. S. Choi, W. S. Park, and I. W. Choi, The effect of cilostazol on the expression of matrix metalloproteinase-1 and type I procollagen in ultraviolet-irradiated human dermal fibroblasts, Life Sci., 92(4-5), 282 (2013). 

  10. C. D. Buckley, Why does chronic inflammation persist: an unexpected role for fibroblasts, Immunol. Lett., 138(1), 12 (2011). 

  11. A. M. Manicone and J. K. McGuire, Matrix metalloproteinases as modulators of inflammation, Semin. Cell Dev. Biol., 19(1), 34 (2008). 

  12. C. Lopez-Camarillo, E. A. Ocampo, M. L. Casamichana, C. Perez-Plasencia, E. Alvarez-Sanchez, and L. A. Marchat, Protein kinases and transcription factors activation in response to UV-radiation of skin: implications for carcinogenesis, Int. J. Mol. Sci., 13(1), 142 (2012). 

  13. J. Wu, X. Liu, C. Chan, D. K. W. Mok, S. Chan, Z. Yu, and S. Chen, Petroleum ether extractive of the hips of Rosa multiflora ameliorates collagen-induced arthritis in rats, J. Ethnopharmacol., 157, 45 (2014). 

  14. D. Guo, L. Xu, X. Cao, Y. Guo, Y. Ye, C. O. Chan, D. K. W. Mok, Z. Yu, and S. Chen, Anti-inflammatory activities and mechanisms of action of the petroleum ether fraction of Rosa multiflora Thunb. hips, J. Ethnopharmacol., 138(3), 717 (2011). 

  15. G. Q. Zhang, X. D. Huang, H. Wang, A. K. N. Leung, C. L. Chan, D. W. F. Fong, and Z. L. Yu, Anti-inflammatory and analgesic effects of the ethanol extract of Rosa multiflora Thunb. hips, J. Ethnopharmacol., 118(2), 290 (2008). 

  16. P. Sertznig and J. Reichrath, Peroxisome proliferator- activated receptors (PPARs) in dermatology: challenge and promise, Dermatoendocrinol., 3(3), 130 (2011). 

  17. M. Schmuth, V. Moosbrugger-Martinz, S. Blunder, and S. Dubrac, Role of PPAR, LXR, and PXR in epidermal homeostasis and inflammation, Biochim. Biophys. Acta-Mol. Cell Biol. Lipids, 1841(3), 463 (2014). 

  18. M. H. Park, J. Y. Park, H. J. Lee, D. H. Kim, K. W. Chung, D. Park, H. O. Jeong, H. R. Kim, C. H. Park, S. R. Kim, P. Chun, Y. Byun, H. R. Moon, and H. Y. Chung, The Novel PPAR $\alpha/\gamma$ Dual Agonist MHY 966 Modulates UVB-induced skin inflammation by inhibiting NF- ${\kappa}B$ activity, PLoS One, 8(10), 4 (2013). 

  19. Y. Jeon, Y. Jung, M. C. Kim, H. C. Kwon, K. S. Kang, Y. K. Kim, and S. N. Kim, Sargahydroquinoic acid inhibits TNF $\alpha$ -induced AP-1 and NF- ${\kappa}B$ signaling in HaCaT cells through PPAR $\alpha$ activation, Biochem. Biophys. Res. Commun., 450(4), 1553 (2014). 

  20. C. Franceschi, M. Capri, D. Monti, S. Giunta, F. Olivieri, F. Sevini, M. P. Panourgia, L. Invidia, L. Celani, M. Scurti, E. Cevenini, G. C. Castellani, and S. Salvioli, Inflammaging and anti-inflammaging: a systemic perspective on aging and longevity emerged from studies in humans, Mech. Ageing Dev., 128(1), 92 (2007). 

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