닭 도계 및 가공공정 중 유해미생물의 분포와 항생제 감수성 The distribution and antimicrobial susceptibility of pathogenic microorganisms isolated from chicken slaughtering and processing procedure원문보기
This study was performed to analyze the distribution and antimicrobial resistance of pathogenic microorganisms isolated from the carcass and environments of chicken processing plant located in Gyeonggi province from October to November in 2010. Chicken slaughterhouse was visited 3 times and totally ...
This study was performed to analyze the distribution and antimicrobial resistance of pathogenic microorganisms isolated from the carcass and environments of chicken processing plant located in Gyeonggi province from October to November in 2010. Chicken slaughterhouse was visited 3 times and totally 40 samples were collected from chicken carcass before and after washing (n=14), chicken cuts (n=7), cooling water (n=8), brine (n=2), cutting knives (n=7) and working plate (n=2). Whole-chicken rinsing technique (for chicken carcasses) and swab technique (for working plate and knives) were used to analyze the distribution of pathogenic microorganisms. In addition, brine and chilling water from storage tanks were gathered using sterilized tubes and used as samples. The matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry (MALDI MS) for whole cell fingerprinting in combination with a dedicated bioinformatic software tool was used to identify the isolated microorganisms. The pathogenic microorganisms, such as Bacillus cereus (n=8) and Staphylococcus aureus (n=9), were isolated form the chicken processing process (chicken carcasses of before and after chilling, chicken cuts, and working plate). The antimicrobial susceptibility of those isolated microorganisms was analyzed using 21 antimicrobial agents. In the case of B. cereus, it showed 100% of resistance to subclasses of penicillins and peptides, and it also resistant to cephalothin, a member of critically important antimicrobials (CIA), however there was no resistance (100% susceptible) to vancomycin and chloramphenicol. S. aureus showed 100% resistance to subclasses of peptides and some of penicillins (penicillin and oxacillin), however, it showed 100% susceptibility to cephalosporins (cefazolin and cephalothin). All of the tested pathogens showed multi drug resistance (MDR) more than 4 subclasses and one of B. cereus and S. aureus showed resistance to 9 subclasses. After the ban on using the antimicrobials in animal feed in July 2011, there would be some change in microbial distribution and antimicrobial resistance, and it still has a need to be analyzed.
This study was performed to analyze the distribution and antimicrobial resistance of pathogenic microorganisms isolated from the carcass and environments of chicken processing plant located in Gyeonggi province from October to November in 2010. Chicken slaughterhouse was visited 3 times and totally 40 samples were collected from chicken carcass before and after washing (n=14), chicken cuts (n=7), cooling water (n=8), brine (n=2), cutting knives (n=7) and working plate (n=2). Whole-chicken rinsing technique (for chicken carcasses) and swab technique (for working plate and knives) were used to analyze the distribution of pathogenic microorganisms. In addition, brine and chilling water from storage tanks were gathered using sterilized tubes and used as samples. The matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry (MALDI MS) for whole cell fingerprinting in combination with a dedicated bioinformatic software tool was used to identify the isolated microorganisms. The pathogenic microorganisms, such as Bacillus cereus (n=8) and Staphylococcus aureus (n=9), were isolated form the chicken processing process (chicken carcasses of before and after chilling, chicken cuts, and working plate). The antimicrobial susceptibility of those isolated microorganisms was analyzed using 21 antimicrobial agents. In the case of B. cereus, it showed 100% of resistance to subclasses of penicillins and peptides, and it also resistant to cephalothin, a member of critically important antimicrobials (CIA), however there was no resistance (100% susceptible) to vancomycin and chloramphenicol. S. aureus showed 100% resistance to subclasses of peptides and some of penicillins (penicillin and oxacillin), however, it showed 100% susceptibility to cephalosporins (cefazolin and cephalothin). All of the tested pathogens showed multi drug resistance (MDR) more than 4 subclasses and one of B. cereus and S. aureus showed resistance to 9 subclasses. After the ban on using the antimicrobials in animal feed in July 2011, there would be some change in microbial distribution and antimicrobial resistance, and it still has a need to be analyzed.
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문제 정의
본 실험은 대규모 도계장의 닭 도계 및 부분육 가공공정에 유해미생물의 분포와 이들의 항생제 감수성을 분석한 연구로 소비자에게 안전한 축산식품을 공급하기 위한 기초 자료를 확보하고자 수행되었다. 계육의 생산공정으로부터 B.
본 연구는 양계 및 수의 분야에서 항생제의 효율적인 사용 및 안전관리를 위한 대책을 수립하고 계육의 안전성을 확보하기 위하여 닭의 도계 및 부분육 가공공정 중 식중독을 초래할 수 있는 유해미생물의 분포와 항생제들에 대한 감수성을 알아보기 위하여 수행하였다.
제안 방법
닭 도계과정 및 부분육 가공공정으로부터 분리된 유해미생물의 종류 및 분포도는 Table 1에 나타내었다. 각 도계 및 부분육 가공공정에서의 일반미생물 수준과 미생물 균총은 앞서 보고한 Seol 등(2012)의 연구에 상세히 설명하였기에 본 연구에서는 각 공정에서의 유해미생물의 분포 수준과 그 종류에 대한 분석으로 범위를 제한하였다. 닭을 도계하여 내장을 적출한 후 세척공정으로 들어가기 전 도체(chicken carcass before washing) 시료로부터 총 2,213개의 미생물 집락을 배양하였으며, 이를 Bruker MALDI-TOF MS 시스템을 이용하여 동정한 결과 각각 1개와 2개의 Bacillus cereus와 Staphylococcus aureus 집락이 동정되었으며, 이들은 세척 전 도체로부터 분리된 전체 미생물 집락 중에 각각 0.
디스크확산법에 사용한 표준균주는 E. coli ATCC25922, E. coli ATCC35218 균주(β-lactam/β-lactamase inhibitor), S. aureus ATCC25923, E. faecalis ATCC29212 균주를 이용하여 CLSI에서 규정한 표준균주 허용범위와 비교하였다.
Paul, USA)의 면봉을 사용하여 swab 법으로 채취한 후 kit 내 희석액에 1분간 균질하고, 이 희석액 1 ml을 취하고 10진희석법으로 희석하여 미생물 분석을 위한 시료로 사용하였다. 또한 냉각수와 염지액은 각 저장고로부터 멸균튜브를 사용하여 시료를 채취한 후 10진희석법으로 희석하여 미생물 분석을 위한 시료로 사용하였다.
배지로부터 배양된 미생물 집락을 취하여 plate 위에서 건조시킨 후 HCCA 매트릭스(α-cyano-4-hydroxy-cinnamic acid, Bruker Daltonik GmbH, Germany) 2 μl를 미생물 시료에 가하여 건조시킨다.
수집된 스펙트럼은 Bruker BioTyperTM 2.0 software를 이용하여 분석한 후 각각의 미생물들의 표준 피크 목록과 비교하여 동정하였으며, 이 때 positive control과 calibration standard로는 Escherichia coli DH5α의 구명된 리보솜 단백질들(RL36, RS22, RL24, RL33meth, RL32, RL29, and RS19)을 사용하였다.
준비된 시료를 MALDI-TOF 장비의 시료용 받침대에 올려놓고 진공 조건을 만들어 용매를 기화시킨 후 매트릭스와 함께 결정화된 미생물 시료에 펄스레이저(337 nm)를 3 ns의 펄스지속시간으로 가하였다. 스펙트럼은 Bruker flexControl을 이용하여 4,000～16,000 Da의 질량 범위에서 linear positive mode로 자동적으로 획득하였으며, 분리된 미생물의 동정을 위하여 각각 20개의 스펙트럼을 수집하였다. 수집된 스펙트럼은 Bruker BioTyperTM 2.
유해미생물의 분리 및 동정을 위하여 선택배지에 접종하여 37℃ 배양기에서 배양하고, 형성된 집락를 취하여 선택 배지에 다시 접종한 후 37℃ 배양기에서 배양하여 형성된 집락를 동정하였다. 시료로부터 채취된 미생물의 신속동정은 nitrogen laser가 장착된 Bruker Microflex TOF mass spectrometer (Bruker Daltonik GmbH, Bremen, Germany)를 이용하여 수행되었다. 배지로부터 배양된 미생물 집락을 취하여 plate 위에서 건조시킨 후 HCCA 매트릭스(α-cyano-4-hydroxy-cinnamic acid, Bruker Daltonik GmbH, Germany) 2 μl를 미생물 시료에 가하여 건조시킨다.
유해미생물의 분리 및 동정을 위하여 선택배지에 접종하여 37℃ 배양기에서 배양하고, 형성된 집락를 취하여 선택 배지에 다시 접종한 후 37℃ 배양기에서 배양하여 형성된 집락를 동정하였다. 시료로부터 채취된 미생물의 신속동정은 nitrogen laser가 장착된 Bruker Microflex TOF mass spectrometer (Bruker Daltonik GmbH, Bremen, Germany)를 이용하여 수행되었다.
절단칼날 및 작업대는 표면 10×10 cm를 3MTM E-swab kit (3M, St. Paul, USA)의 면봉을 사용하여 swab 법으로 채취한 후 kit 내 희석액에 1분간 균질하고, 이 희석액 1 ml을 취하고 10진희석법으로 희석하여 미생물 분석을 위한 시료로 사용하였다.
배지로부터 배양된 미생물 집락을 취하여 plate 위에서 건조시킨 후 HCCA 매트릭스(α-cyano-4-hydroxy-cinnamic acid, Bruker Daltonik GmbH, Germany) 2 μl를 미생물 시료에 가하여 건조시킨다. 준비된 시료를 MALDI-TOF 장비의 시료용 받침대에 올려놓고 진공 조건을 만들어 용매를 기화시킨 후 매트릭스와 함께 결정화된 미생물 시료에 펄스레이저(337 nm)를 3 ns의 펄스지속시간으로 가하였다. 스펙트럼은 Bruker flexControl을 이용하여 4,000～16,000 Da의 질량 범위에서 linear positive mode로 자동적으로 획득하였으며, 분리된 미생물의 동정을 위하여 각각 20개의 스펙트럼을 수집하였다.
즉, 세척 전․후의 닭 도체 및 절단된 부분육 한 수 분을 각각 멸균된 시료채취용 백(390×520mm rinse bag, Nasco, USA)에 넣어 ice box에 보관하여 실험실로 신속히 운반한 후, 침적수세법을 적용하여 400ml의 희석액(0.1% peptone, 0.85% NaCl, 0.03% KH2PO4, 0.04% Na2HPO4)을 넣고 밀봉하여 30회(약 1분) 반원을 그리면서 흔들어 준 후 시료백의 희석액 10 ml 을 취하고 10진희석법으로 희석하여 미생물 분석을 위한 시료로 사용하였다.
14%의 수준으로 존재하는 것으로 나타났다. 하나의 시료로부터 분리된 균종은 동일한 균주로 간주하여 세척 후 도체시료 5개와 부분육 시료 3개로부터 총 8주의 B. cereus를 분리하였으며, 세척 전 도체시료 2, 세척 후 도체시료 3, 부분육시료 3개와 작업대 시료 1개로부터 총 9주의 S. aureus를 분리하여 21종의 항생제에 대하여 감수성 검사를 수행하기로 하였다.
대상 데이터
감수성 범위는 CLSI의 기준에 따라 판정하며 시험 항생제는 tetracycline계, sulfonamide계, β-lactam계(penicillin계), aminoglycoside계, macrolide계 및 quinolone계의 주요 항생제 21종을 사용하였다.
주요 분리균의 항생제 내성 실태 분석은 Clinical laboratory Standards Institute guidelines (CLSI 2011)에 따라 Disk diffusion method 와 MIC 측정법(Agar dilution method)을 통해 파악하였다. 배지는 Mueller-Hinton agar 배지를 사용하였다. 감수성 범위는 CLSI의 기준에 따라 판정하며 시험 항생제는 tetracycline계, sulfonamide계, β-lactam계(penicillin계), aminoglycoside계, macrolide계 및 quinolone계의 주요 항생제 21종을 사용하였다.
본 실험의 시료는 2010년 10월부터 11월 사이에 경기도 소재 대규모 도계장(도계규모 100,000수/일)을 3회 방문하여 도계 및 부분육 가공공정으로부터 닭 도체(세척 전․후및 부분육, n=7), 세척(냉각)수(n=8), 염지액(n=2), 절단 칼날(n=7), 작업대(n=2) 등에서 침적수세법(whole bird rinse technique) 또는 swab 법을 이용하여 총 40개의 시료를 채취하여 사용하였다. 시료의 채취방법은 Seol 등(2012)의 방법을 사용하였다.
이론/모형
본 실험의 시료는 2010년 10월부터 11월 사이에 경기도 소재 대규모 도계장(도계규모 100,000수/일)을 3회 방문하여 도계 및 부분육 가공공정으로부터 닭 도체(세척 전․후및 부분육, n=7), 세척(냉각)수(n=8), 염지액(n=2), 절단 칼날(n=7), 작업대(n=2) 등에서 침적수세법(whole bird rinse technique) 또는 swab 법을 이용하여 총 40개의 시료를 채취하여 사용하였다. 시료의 채취방법은 Seol 등(2012)의 방법을 사용하였다. 즉, 세척 전․후의 닭 도체 및 절단된 부분육 한 수 분을 각각 멸균된 시료채취용 백(390×520mm rinse bag, Nasco, USA)에 넣어 ice box에 보관하여 실험실로 신속히 운반한 후, 침적수세법을 적용하여 400ml의 희석액(0.
주요 분리균의 항생제 내성 실태 분석은 Clinical laboratory Standards Institute guidelines (CLSI 2011)에 따라 Disk diffusion method 와 MIC 측정법(Agar dilution method)을 통해 파악하였다. 배지는 Mueller-Hinton agar 배지를 사용하였다.
성능/효과
5%가 중간내성 이상을 보여 내성율이 매우 높은 것으로 나타났다. S. aureus의 경우에는 B. cereus와 달리 cefazolin과 cephalothin에 대해 100%의 감수성을 보였으나 colistin, penicillin, oxacillin에 대해서는 100%의 내성을 보였으며, gentamicin, streptomycin, erythromycin, amoxicillin/clavulanicacid, ampicillin, tetracyclin, nalicixic acid, linezolid에 대하여 80% 이상이 중간내성 이상을 보여 내성율이 높은 것으로 나타났다. 특히 vancomycin에 내성을 갖는 vancomycin resistance Staphylococcus aureus (VRSA)도 1주가 검출되었다.
본 실험은 대규모 도계장의 닭 도계 및 부분육 가공공정에 유해미생물의 분포와 이들의 항생제 감수성을 분석한 연구로 소비자에게 안전한 축산식품을 공급하기 위한 기초 자료를 확보하고자 수행되었다. 계육의 생산공정으로부터 B. cereus와 S. aureu가 검출되었으며, 이들은 4～9종의 항생제에 대하여 내성을 갖는 것으로 나타나 양계산업에 있어 항생제의 사용을 줄이고 수의사 등 전문가의 관리를 따를 필요가 있는 것으로 나타났다. 또한 도계 및 부분육 가공의 각 공정들에서 기구 및 냉각조의 위생적 관리를 통하여 계육이 유해미생물에 오염될 가능성을 저하시킬 필요가 있는 것으로 나타났다.
31%로 나타났다. 그러나 냉각수와 염지액, 절단칼날에서는 유해미생물이 검출되지 않았으며, 다만 절단된 부분육의 포장작업을 수행하는 포장대에서 배양된 699개의 집락 중에서 한 개의 S. aureus가 동정되어 0.14%의 수준으로 존재하는 것으로 나타났다. 하나의 시료로부터 분리된 균종은 동일한 균주로 간주하여 세척 후 도체시료 5개와 부분육 시료 3개로부터 총 8주의 B.
각 도계 및 부분육 가공공정에서의 일반미생물 수준과 미생물 균총은 앞서 보고한 Seol 등(2012)의 연구에 상세히 설명하였기에 본 연구에서는 각 공정에서의 유해미생물의 분포 수준과 그 종류에 대한 분석으로 범위를 제한하였다. 닭을 도계하여 내장을 적출한 후 세척공정으로 들어가기 전 도체(chicken carcass before washing) 시료로부터 총 2,213개의 미생물 집락을 배양하였으며, 이를 Bruker MALDI-TOF MS 시스템을 이용하여 동정한 결과 각각 1개와 2개의 Bacillus cereus와 Staphylococcus aureus 집락이 동정되었으며, 이들은 세척 전 도체로부터 분리된 전체 미생물 집락 중에 각각 0.05와 0.09%의 수준으로 존재하는 것으로 나타났다. 침지세척과정을 거친 닭 도체(chicken carcass after washing)에서는 2,254개의 집락을 배양하여 이로부터 각각 160개와 22개의 B.
aureus의 항생제 다제내성을 살펴본 결과는 Table 3에 나타낸 바와 같다. 도계 및 부분육 가공공정으로부터 분리한 8주의 B. cereus와 9주의 S. aureus 모두 4종류의 항생제 이상에 내성을 보이는 항생제 다제내성균으로 나타났고, 9종의 항생제에 내성을 보이는 균주도 B. cereus와 S. aureus 모두에서 1주씩 발견되어 매우 높은 다제내성률을 보였다. Kim et al.
aureu가 검출되었으며, 이들은 4～9종의 항생제에 대하여 내성을 갖는 것으로 나타나 양계산업에 있어 항생제의 사용을 줄이고 수의사 등 전문가의 관리를 따를 필요가 있는 것으로 나타났다. 또한 도계 및 부분육 가공의 각 공정들에서 기구 및 냉각조의 위생적 관리를 통하여 계육이 유해미생물에 오염될 가능성을 저하시킬 필요가 있는 것으로 나타났다. 2011년 7월 사료 내 항생제의 첨가가 금지된 이후 양계농가의 미생물적 환경에 변화가 초래되었을 것이며 유해미생물의 분포와 항생제 감수성에도 변화가 예상되므로 추후 이에 대한 추가 연구가 필요한 실정이다.
이러한 도계 과정 중에 사용되는 기구, 처리수, 냉각 과정 등에 대한 미생물 오염 방지를 위하여 많은 연구가 이루어졌는데, McMeekin과 Thomas(1978)는 도체 표면의 미생물 오염 수준은 기구 오염과 밀접한 관계가 있다고 하였으며, Mulder 등(1977)은 탕지수의 온도 및 시간조절로 생균수 및 대장균수를 감소시킬 수 있다고 보고하였다. 본 연구에서는 도계 및 부분육 가공공정에 사용되는 세척수로 사용되는 물와 염지액 원료에서는 유해미생물이 검출되지 않았으나 도계된 닭 도체가 세척과정을 거친 후에 유해미생물의 검출비율이 증가하였으며, 이는 도계된 닭 도체들이 냉각조에 지속적으로 유입됨에 따라 냉각조 내 유해미생물의 수가 증가하여 교차오염이 발생한 것으로 사료되며 이러한 결과는 Clark와 Lentz(1969)의 냉각수로 인한 내냉성균의 증가에 대한 보고와 유사한 경향을 보여 냉각조 내 세척수의 위생 관리에 대한 중요성이 강조된다. 또한 Lee et al.
국내 가축에서 flouroquinolone계 항생제는 연간 약 50톤 정도 사용되며, 이 중 약 70%가 닭에 사용되는 것으로 보고되었다(Animal And Plant Quarantine Agency, 2013). 본 연구에서는 도계장의 도계 및 부분육 가공공정 유래 S. aureus에서 ciprofloxacin 내성율이 11.1%였으며, B. cereus에서 cephalosporin계 항생제인 cephalothin에 100%의 내성율을 보여 항생제 사용에 있어 보다 신중한 사용과 관리가 필요한 것으로 사료된다.
00%로 나타났다. 부분육 가공공정으로 이송된 닭 도체는 염지액 주입을 마친 후 8조각의 부분육으로 분할되었으며, 이 부분육 한 수 분을 모아 미생물 분석을 수행한 결과 1,889개의 미생물 집락과 각각 55개와 157개의 B. cereus와 S. aureus 균주 집락을 동정하였으며, 부분육 중 이들 유해미생물의 존재 비율은 각각 2.91%와 8.31%로 나타났다. 그러나 냉각수와 염지액, 절단칼날에서는 유해미생물이 검출되지 않았으며, 다만 절단된 부분육의 포장작업을 수행하는 포장대에서 배양된 699개의 집락 중에서 한 개의 S.
aureus의 항생제 21종에 대한 감수성 검사 결과를 나타낸 것이다. 분리된 B. cereus 균들은 chloramphenicol과 vancomycin에 대해서는 100%의 감수성을 보였으나 cephalotin, colistin, amoxicillin/clavulanicacid, ampicillin, penicillin, oxacillin에 대해서는 100%의 내성을 보였으며, cefazolin과 trimethoprim/sulfamethoxazole에 대해서도 각각 100%와 87.5%가 중간내성 이상을 보여 내성율이 매우 높은 것으로 나타났다. S.
09%의 수준으로 존재하는 것으로 나타났다. 침지세척과정을 거친 닭 도체(chicken carcass after washing)에서는 2,254개의 집락을 배양하여 이로부터 각각 160개와 22개의 B. cereus와 S. aureus 균주 집락을 동정하였으며, 세척 후 도체에서 이들 유해미생물의 존재 비율은 각각 7.10%와 1.00%로 나타났다. 부분육 가공공정으로 이송된 닭 도체는 염지액 주입을 마친 후 8조각의 부분육으로 분할되었으며, 이 부분육 한 수 분을 모아 미생물 분석을 수행한 결과 1,889개의 미생물 집락과 각각 55개와 157개의 B.
특히 vancomycin에 내성을 갖는 vancomycin resistance Staphylococcus aureus (VRSA)도 1주가 검출되었다. 항생제별로 내성률을 비교한 결과 페니실린계(ampicillin, penicillin 및 oxacillin)와 펩타이드계(colistin)의 내성률이 B. cereus와 S. aureus 모두에서 높게 나타났다.
후속연구
또한 도계 및 부분육 가공의 각 공정들에서 기구 및 냉각조의 위생적 관리를 통하여 계육이 유해미생물에 오염될 가능성을 저하시킬 필요가 있는 것으로 나타났다. 2011년 7월 사료 내 항생제의 첨가가 금지된 이후 양계농가의 미생물적 환경에 변화가 초래되었을 것이며 유해미생물의 분포와 항생제 감수성에도 변화가 예상되므로 추후 이에 대한 추가 연구가 필요한 실정이다.
본 사업은 농림축산검역본부와 16개 시･도 가축위생시험소 및 보건환경연구원, 한국동물약품협회가 참여하고 있다. 이러한 항생제 사용 및 내성 모니터링 결과는 가축에서 사용하는 항생제가 공중보건에 미치는 영향을 평가하고, 축산 항생제 관리 정책 결정, 항생제내성 연구 방향 설정 등의 기초자료로 활용할 수 있다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
항생제의 사용으로 발생한 항생제 내성균의 증가는 축산분야에 어떤 문제점을 주는가?
, 2008). 축산분야에서 내성균의 증가는 기존 항생제로는 질병의 치료가 되지 않아 농가에 경제적 손실을 초래할 뿐 아니라, 축산물 또는 환경을 통해 직․간접적으로 사람에게 전달될 수 있어 공중보건학적으로 중요한 이슈가 되고 있다. 우리나라 양계산업에서도 항생제는 환축의 질병 치료를 위해 널리 사용되어 왔으며, 그 외에도 질병의 예방이나 성장 촉진의 목적으로 사료첨가제 등의 형태로 오랫동안 사용되어 왔다(Ministry of Food and Drug Safety, 2006).
오랫동안 사용되어온 항생제의 목적은 무엇인가?
국민 소득의 증가와 생활수준의 향상, 웰빙 문화의 확산 등으로 인하여 소비자들의 축산식품 안전성과 위생관리에 대한 관심이 높아지고 있는 추세이다. 특히, 사람과 동물에게 질병의 치료와 예방은 물론 가축의 생산성을 증진시키기 위한 목적으로 오랫동안 사용되어온 항생제는 최근 들어 오․남용에 의한 부작용으로 잔류 문제나 약제 내성균의 출현과 전파 등의 축산물 안전성에 대한 문제를 야기시키고 있다(Neu, 1992; Jo et al., 2006).
항생제의 오남용에 의한 부작용은?
국민 소득의 증가와 생활수준의 향상, 웰빙 문화의 확산 등으로 인하여 소비자들의 축산식품 안전성과 위생관리에 대한 관심이 높아지고 있는 추세이다. 특히, 사람과 동물에게 질병의 치료와 예방은 물론 가축의 생산성을 증진시키기 위한 목적으로 오랫동안 사용되어온 항생제는 최근 들어 오․남용에 의한 부작용으로 잔류 문제나 약제 내성균의 출현과 전파 등의 축산물 안전성에 대한 문제를 야기시키고 있다(Neu, 1992; Jo et al., 2006).
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