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당뇨 처방에 근거한 생약재의 α-Glucosidase 활성 저해 효과 및 이를 활용한 미백 소재 평가법
Effect of Medicinal Herb Prepared through Traditional Antidiabetic Prescription on α-Glucosidase Activity and Evaluation Method for Anti-Melanogenesis Agents Using α-Glucosidase Activity 원문보기

한국식품영양과학회지 = Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, v.44 no.7, 2015년, pp.993 - 999  

김미진 ((주)사임당화장품 기술연구소) ,  임경란 ((주)사임당화장품 기술연구소) ,  윤경섭 ((주)사임당화장품 기술연구소)

초록
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본 연구에서는 선정한 생약재 및 복합처방단의 ${\alpha}$-glucosidase 저해 활성을 알아보았으며, 이 방법이 미백 소재 스크리닝을 위한 유용한 평가법인지를 알아보았다. 한의학과 민간에서 당뇨의 개선 및 치료 효과가 우수하다고 알려진 생약재 및 처방 중 죽력, 귀전우, 적양, 연자육, 마인, 청심연자음${\alpha}$-glucosidase 활성 저해 효과는 식후 혈당조절제인 acarbose와 비교하여 볼 때 우수한 효과를 나타내었다. 미백 효과가 알려진 연자육을 함유한 청심연자음 hydrolyzed EtOAc layer는 $100{\mu}g/mL$ 농도에서 약 50% 멜라닌 생성 저해 효과를 보였다. 또한 청심연자음 hydrolyzed EtOAc layer는 ${\alpha}$-glucosidase 활성 저해 효과가 우수하였으나 mushroom tyrosinase 활성 저해 효과는 나타나지 않았다. 이로써 청심연자음 hydrolyzed EtOAc layer는 ${\alpha}$-glucosidase 활성을 저해시켜 tyrosinase의 glycosylation을 저해함으로써 멜라닌 생성 억제 효과가 나타나는 것으로 생각된다. 이상의 결과로 볼 때 ${\alpha}$-glucosidase 활성 억제 효과가 있으면서 당뇨병에 효과가 있는 생약재들은 N-linked glycoprotein인 tyrosinase의 glycosylation을 저해하여 tyrosinase의 세포 내 이동이나 활성을 억제함으로써 멜라닌 생성을 억제할 것으로 사료되며, 본 연구에서 선정된 생약재들은 당뇨병 치료를 위한 목적뿐만 아니라 화장품에서 새로운 미백 소재로서의 활용가치가 있을 것으로 판단된다. 또한 미백에 효과가 있는 소재 스크리닝을 위해 현재 널리 사용되고 있는 mushroom tyrosinase 활성 저해 효과와 다른 접근 방법으로써 ${\alpha}$-glucosidase 활성 측정 방법도 하나의 평가법으로 유용할 것으로 생각된다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

For the purpose of investigating the in vitro antidiabetic activity of a medicinal herb and herb mixture extracts prepared through traditional antidiabetic prescription, this study examined ${\alpha}$-glucosidase inhibitory activity. Tyrosinase, a type I membrane glycoprotein, is synthesi...

주제어

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문제 정의

  • 본 연구에서는 특허 및 논문 등을 통하여 당뇨병에 효과가 있는 약재 중 α-glucosidase 저해 활성을 보이는 생약재를 검색하였다. 이 중 미백 관련 특허가 없고 α-glucosidase 저해 활성의 IC50 값이 1 mg/mL 이하이며 쉽게 구할 수 있는 귀전우(Euonymus alatus Siebold)(17), 연자육(Nelumbo nucifera Gaertner)(18), 자화지정(Viola mandshurica W.
  • 본 연구의 생약 추출물들에서 in vitro 미백효능 스크리닝을 위한 평가법으로 널리 이용되는 tyrosinase 활성 저해 및 DOPA 자동산화 억제 효과가 있는지 알아보았다. Tyrosi-nase는 멜라닌 생합성 경로에서 가장 중요한 초기 속도결정단계에 관여하는 효소이며, DOPA oxidation은 멜라닌 합성과정에서 tyrosine이 DOPA를 거쳐 DOPAquinone으로 전환되고, DOPAquinone으로부터 자동산화 반응과 효소 반응으로 DOPAchrome을 거쳐 멜라닌이 생성되는 데 관여하는 단계이다(28).
  • 또한 오늘날의 당뇨병과 같은 소갈의 원인과 증상, 치료를 다룬 동의보감의 소갈문에 기재된 복합처방단과 단방처방 중 미백과 관련된 생약재를 포함하지 않으며 쉽게 구할 수 있는 마인(Cannabis Semen), 죽력(tabasheer), 맥문동음자(麥門冬飮子), 문동음자(門冬飮子), 청심연자음(淸心蓮子飮), 활혈윤조생진음(活血潤燥生津飮)(21)을 선정하였다. 선정한 생약재 및 복합처방단의 α-glucosidase 저해 활성을 알아보았으며, 이 방법이 미백 소재 스크리닝을 위한 유용한 평가법인지를 알아보았다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
대사증후군 질환 중 하나인 당뇨병의 치료방법에는 무엇이 있는가? 고열량 식사가 늘어나면서 당뇨, 고지혈증 등 대사증후군 질환의 발병률이 증가하고 있으며, 이들 대사증후군을 식품의 섭취를 통하여 개선하고자 하는 노력이 지속적으로 이루어지고 있다. 당뇨병의 치료 방법에는 식이요법, 운동요법과 함께 약물요법이 있으며, 임상에서 사용되고 있는 약물로는 인슐린 제제, sulfonylurea 제제, biguanide 제제, troglitazone 제제 등이 있지만 저혈당, 유산증 등의 치명적 부작용이 보고되고 있다(2). 또 다른 혈당관리 방법은 섭취한 식이 중 탄수화물의 소화와 흡수를 지연시켜 식후 혈당 및 혈중 인슐린의 상승을 저하시킴으로써 당뇨병의 치료 효과를 가져오는 것이 있으며, 이러한 물질로는 식이섬유(3,4)와 장내소화효소인 α-glucosidase에 대한 억제제(5)가 있다.
α-Glucosidases는 어떤 효소인가? α-Glucosidases는 소장 내에서 탄수화물로부터 α-glu-cose를 방출하는 α-glucosidic bond의 분해를 촉진하여 포도당을 흡수하는 데 관여하는 생체 내 필수 효소이다. 또한 당지질과 당단백질의 합성과 같은 다양한 대사 경로에도 관여하므로 이를 조절함으로써 대사 질환의 치료 가능성을 기대할 수 있다.
tyrosinase는 어떻게 만들어지는가? 멜라닌 생합성 경로에서 가장 중요한 초기 속도결정단계에 관여하는 효소인 tyrosinase는 type Ⅰ membrane gly-coprotein으로(7) asparagine의 side chain에 있는 NH2기에 당을 붙이는 N-linked glycosylation 과정과 serine이나 threonine의 side chain에 있는 OH기에 당을 붙이는 O- linked glycosylation 과정(8) 중 N-linked glycosylation 과정에 의해 만들어진다. 단백질의 N-linked glycosylation은 endoplasmic reticulum(ER)에서 단백질 합성 번역과 함께 일어난다(9).
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참고문헌 (28)

  1. Xu ML, Wang L, Xu GF, Wang MH. 2011. Antidiabetes and angiotensin converting enzyme inhibitory activity of Sonchus asper (L) Hill extract. Kor J Pharmacogn 42: 61-67. 

  2. Kim TW, Kwon YB, Lee JH, Yang IS, Youm JK, Lee HS, Moon JY. 1996. A study on the antibodiabetic effect of mulberry fruits. Korean J Seric Sci 38: 100-107. 

  3. Torsdottir I, Alpsten M, Andersson H, Einarsson S. 1989. Dietary guar gum effects on postprandial blood glucose, insulin and hydroxyproline in humans. J Nutr 119: 1925-1931. 

  4. Blackburn NA, Redfern JS, Jarjis H, Holgate AM, Hanning I, Scarpello JH, Johnson IT, Read NW. 1984. The mechanism of action of guar gum in improving glucose tolerance in man. Clin Sci (Lond) 66: 329-336. 

  5. Puls W, Krause HP, Muller L, Schutt H, Sitt R, Thomas G. 1984. Inhibitors of the rate of carbohydrate and lipid absorption by the intestine. Int J Obes 8: 181-190. 

  6. Puls W, Keup U, Krause HP, Thomas G, Hoffmeister F. 1997. Glucosidase inhibition. A new approach to the treatment of diabetes, obesity, and hyperlipoproteinaemia. Naturwissenschaften 64: 536-537. 

  7. Branza-Nichita N, Negroiu G, Petrescu AJ, Garman EF, Platt FM, Wormald MR, Dwek RA, Petrescu SM. 2000. Mutations at critical N-glycosylation sites reduce tyrosinase activity by altering folding and quality control. J Biol Chem 275: 8169-8175. 

  8. Goochee CF. 1992. Bioprocess factors affecting glycoprotein oligosaccharide structure. Dev Biol Stand 76: 95-104. 

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  12. Petrescu SM, Petrescu AJ, Titu HN, Dwek RA, Platt FM. 1997. Inhibition of N-glycan processing in B16 melanoma cells results in inactivation of tyrosinase but does not prevent its transport to the melanosome. J Biol Chem 272: 15796-15803. 

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  18. Mani SS, Subramanian IP, Pillai SS, Muthusamy K. 2010. Evaluation of hypoglycemic activity of inorganic constituents in Nelumbo nucifera seeds on streptozotocin-induced diabetes in rats. Biol Trace Elem Res 138: 226-237. 

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  20. Kwak TH, Joo JH, Park MG. 2005. Active extracts from natural plants showing anti-obesity and anti-diabetes. Korea Patent 523,443. 

  21. Heo J. 1610. Japbyeongpyeon. In Donguibogam. 3rd ed. Yeogang, Seoul, Korea. p 1998-2023. 

  22. Park MK, Kim CH. 2009. Extraction of polyphenols from apple peel using cellulase and pectinase and estimation of antioxidant activity. J Korean Soc Food Sci Nutr 38: 535-540. 

  23. Angelov A, Putyrski M, Liebl W. 2006. Molecular and biochemical characterization of ${\alpha}$ -glucosidase and ${\alpha}$ -mannosidase and their clustered genes from the thermoacidophilic archaeon Picrophilus torridus. J Bacteriol 188: 7123-7131. 

  24. Mosmann T. 1983. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods 65: 55-63. 

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  26. Lee JY, Im KR, Jung TK, Yoon KS. 2013. The inhibitory effects of Alnus Japonica Steud. extract on melanogenesis. J Soc Cosmet Scientists Korea 39: 159-166. 

  27. Lee JY, Im KR, Jung TK, Yoon KS. 2013. The inhibitory effects of Nelumbo nucifera Gaertner extract on melanogenesis. KSBB J 28: 137-145. 

  28. Alaluf S, Heath A, Carter N, Atkins D, Mahalingam H, Barrett K, Kolb R, Smit N. 2001. Variation in melanin content and composition in type V and VI photoexposed and photoprotected human skin: the dominant role of DHI. Pigment Cell Res 14: 337-347. 

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