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주박(酒粕)에서 분리된 다당류의 대식세포 면역조절 활성

Immuno-Modulatory Activities of Polysaccharides Separated from Jubak in Macrophage Cells

한국식품영양과학회지 = Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, v.44 no.7, 2015년, pp.1079 - 1083  

박우용 (공주대학교 식품공학과) ,  성낙윤 (공주대학교 식품공학과) ,  변의홍 (공주대학교 식품공학과) ,  오광훈 (공주대학교 사범대학 체육교육과) ,  변명우 (우송대학교 외식조리영양학부) ,  유영춘 (건양대학교 의과대학 미생물학교실)

초록
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본 연구는 양조과정의 부산물인 주박으로부터 분리한 다당류(JPS)가 초기 면역반응에 중추적인 역할을 수행하는 대식세포에서 활성화를 유도하는지에 관한 여부를 알아보기 위해서 수행되었다. 주박에서 분리한 다당류를 마우스 유래 대식세포인 RAW264.7 cell에 처리하였을 때 대식세포의 활성화의 지표인 NO와 cytokine(IL-6, TNF-${\alpha}$)의 분비가 증가되었다. 또한 이러한 NO와 cytokine의 증가의 원인에 관한 면역기전에 관하여 알아본 결과 JPS의 처리는 MAPKs(ERK, JNK, p-38)의 인산화를 촉진시켜 NF-${\kappa}B$의 활성을 유도하여 면역세포의 활성인자들의 분비를 촉진시킨 것으로 관찰되었다.

Abstract AI-Helper 아이콘AI-Helper

Activating macrophage cells play an important role in the host immune defense system. In this paper, immuno-modulatory activities of polysaccharides separated from Jubak (JPS) in macrophage cells were investigated. Immuno-modulatory activities were estimated based on cell proliferation, nitric oxide...

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

  • 본 연구는 양조과정의 부산물인 주박으로부터 분리한 다당류(JPS)가 초기 면역반응에 중추적인 역할을 수행하는 대식 세포에서 활성화를 유도하는지에 관한 여부를 알아보기 위해서 수행되었다. 주박에서 분리한 다당류를 마우스 유래 대식세포인 RAW264.
  • 본 연구는 주박에서 추출한 다당체의 대식세포 면역 활성능에 대해 알아보기 위하여 마우스 대식세포 유래의 세포주인 RAW264.7 세포주에서 면역증진 매개인자인 NO, proinflammatory cytokine의 분비능과 cytokine의 분비능을 조절하는 조절인자인 mitogen-activated protein kinase(MAPK) 인산화 및 nuclear factor(NF)-κB의 핵 내로의 이동에 미치는 영향에 관하여 알아보았다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
항원제시 세포로서 대식세포의 분비 물질에는 무엇이 있는가? 대식세포는 선천 및 적응 면역시스템에서 방어와 조절을 담당하는 면역세포로 외부로부터 유입되는 항원을 직접적 으로 제거하거나 무력화시키는 기능을 수행한다. 항원제시 세포로서 대식세포는 pro-inflammatory cytokine인 tumor necrosis factor(TNF)-α, interleukin(IL)-6와 nitric oxide(NO) 등과 같은 다양한 물질을 분비하여 자기 자신 또는 적응면역체계를 담당하는 T림프구를 활성화시킨다(8).
주박이란 무엇인가? 주박(酒粕)은 곡류와 효모, 누룩을 주원료로 막걸리나 청주를 양조하는 과정에서 생산되는 부산물로 흔히 술지게미 라고 한다(1). 영양학적으로 당질, 알코올, 유기산 및 효모 등을 함유하며, 그중 다당류와 단백질이 풍부하게 함유되어 있다고 보고된다(2).
마우스 유래 대식세포에 주박으로부터 분리한 다당 류를 처리했을 때, NO와 cytokine 증가를 유발하는 원인에 관한 면역기전은 무엇인가? 7 cell에 처리하였을 때 대식세포의 활성화의 지표인 NO와 cytokine(IL-6, TNF-α)의 분비가 증가되었다. 또한 이러한 NO와 cytokine의 증가의 원인에 관한 면역기전에 관하여 알아본 결과 JPS의 처리는 MAPKs (ERK, JNK, p-38)의 인산화를 촉진시켜 NF-κB의 활성을 유도하여 면역세포의 활성인자들의 분비를 촉진시킨 것으로 관찰되었다.
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참고문헌 (21)

  1. Kim TY, Jeon TW, Yeo SH, Kim SB, Kim JS, Kwak JS. 2010. Antimicrobial, antioxidant and SOD-like activity effect of Jubak extracts. Korean J Food & Nutr 23: 299-305. 

  2. Lee JH, Park SM, Park CD, Jung HJ, Kim HS, Yu TS. 2007. Characteristics of Ju-Back fertilizer on growth of crop plants. J Life Sci 17: 1562-1570. 

  3. Lee HS, Park CS, Choi JY. 2010. Quality characteristics of the mashes of Takju prepared using different yeasts. Korean J Food Sci Technol 42: 56-62. 

  4. Cho SY, Park JW, Rhee C. 1998. Edible films from protein concentrates of rice wine meal. Korean J Food Sci Technol 30: 1097-1106. 

  5. Kang HT, Lee SH, Kim SY, Kim MS, Shin WC, Sohn HY, Kim JS. 2014. Anti-proliferative activities of solvent fractions of lees extracts in human colorectal HCT116 cells. J Life Sci 24: 967-972. 

  6. Park MJ, Kang HT, Kim JS. 2014. Anti-inflammatory effects of extracts and their solvent fractions of rice wine lees. J Life Sci 24: 843-850. 

  7. Kim S, Cho W. 2006. Effects of Takju (Korean turbid rice wine) lees on the serum glucose levels in streptozotocin-induced diabetic rats. Korean J Food Culture 21: 638-643. 

  8. Jiang MH, Zhu L, Jiang JG. 2010. Immunoregulatory actions of polysaccharides from Chinese herbal medicine. Expert Opin Ther Targets 14: 1367-1402. 

  9. Kim DM, Kim KH, Sung NY, Jung PM, Kim JS, Kim JK, Kim JH, Choi J, Song BS, Lee JW, Kim JK, Yook HS. 2011. Effects of gamma irradiation on the extraction yield and whitening activity of polysaccharides from Undaria pinnatifida sporophyll. J Korean Soc Food Sci Nutr 40: 712-716. 

  10. Ha ES, Hwang SH, Yu KW, Shin KS, Cho HM, Kim CH, Park WM, Yoon TJ. 2003. Immunostimulation activity of the crude polysaccharides fractionated from Eleutherococcus senticosus, and its application to prevent of tumors by combination therapy with cisplatin. Yakhak Hoeji 47: 159-166. 

  11. Kim SB, Lee GW, Lee UY, Lee TS. 2007. Studies on immuno- modulatory and antitumor effects of crude polysaccharides extracted from fruiting body of Oudemansiella radicata. Korean J Mycol 35: 109-114. 

  12. Lee MS, Shin KS. 2014. Intestinal immune-modulating activities of polysaccharide isolated from commercial and traditional Korean soy sauces. J Korean Soc Food Sci Nutr 44: 228-234. 

  13. Brewer MS, Ikins WG, Harbers CAZ. 1992. TBA values, sensory characteristics, and volatiles in ground fork during long-term frozen storage: Effects of packaging. J Food Sci 57: 558-563. 

  14. Kim HI, Lee BM. 1996. Stevioside, a natural sweetener: Is it safe? J Fd Hyg Safety 11: 323-327. 

  15. Bios MS. 1958. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature 181: 1199-1200. 

  16. Benzie IF, Strain JJ. 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "antioxidant power": the FRAP assay. Anal Biochem 230: 70-76. 

  17. Ryu JH, Ahn H, Kim JY, Kim YK. 2003. Inhibitory activity of plant extracts on nitric oxide synthesis in LPS-activated macrophages. Phytother Res 17: 485-489. 

  18. Boyle JJ. 2005. Macrophage activation in atherosclerosis: pathogenesis and pharmacology of plaque rupture. Curr Vasc Pharmacol 3: 63-68. 

  19. Olszewski MB, Groot AJ, Dastych J, Knol EF. 2007. TNF trafficking to human mast cell granules: mature chain-dependent endocytosis. J Immunol 178: 5701-5709. 

  20. Chandel NS, Trzyna WC, McClintock DS, Schumacker PT. 2000. Role of oxidants in NF- ${\kappa}B$ activation and TNF- ${\alpha}$ gene transcription induced by hypoxia and endotoxin. J Immunol 165: 1013-1021. 

  21. Kim NY, Kim YK, Bae KJ, Choi JH, Moon JH, Park GH, Oh DH. 2005. Free radical scavenging effect and extraction condition of ethanol extracts and fractions of wild grape seed (Vitis coignetiea). J Korean Soc Food Sci Nutr 34: 755-758. 

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