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문제 정의
- 본 연구에서는 전통주 제조시 사용되는 누룩과 부산물로 발생되는 주박 추출물 및 이들의 유기용매 분획물을 5종 제조하고, 이들에 의한 지방세포형성 억제활성, 항염증 활성 및 암세포 성장 억제활성을 연구하였다. 이러한 연구결과는 전통주 제조시 사용되는 누룩과 부산물인 주박의 다양한 산업 제품의 천연재료로 활용 가능성을 제시한다.
- 본 연구에서는 주박 및 누룩 추출물에 의한 지방세포형성억제활성, 항염증 활성 및 암세포 성장 억제활성 등의 다양한생리활성과 그 기전에 대하여 연구하였다. 이러한 연구결과는주박 및 누룩의 새로운 천연물 소재로서의 활용 가능성에 대한 기초자료를 제공해 줄 것으로 기대된다.
제안 방법
- 5A). PAc의 처리 농도에 따른 대장암 세포주의 생존율을 확인하기 위하여 PAc를 다양한 농도(0.025, 0.125, 0.25, 0.375, 0.5 mg/ml)별로 처리한 후 cell viability assay를 수행하였다. 그 결과 0.
- edu/)을 이용하였으며 Bioneer (Korea)사로부터 제조하여 사용하였다(Table 1, 2). PCRe PrimeScriptTM RT-PCR Kit (TaKaRa, Japan)를 이용하여 제조사의 메뉴얼에 따라 실험을 수행하였다. PCR 반응은 94℃에서 5분간 denaturation을 실시한 뒤, 94℃에서 30초, 58℃에서 30초, 72℃에서 30초의 cycle을 30번 반복한 후, 마지막으로 72℃에서 10분간 반응시켰다.
- Total RNA 추출은 수확한 세포주로부터 RNeasy mini kit (Qiagen, USA)을 이용하여 제조사의 프로토콜에 따라 수행하였다. 최종적으로 정제한 total RNA는 NanoQuant PlateTM를이용하여 흡광도를 측정하여 정량하였다.
- 대장암 세포주 HCT116에 주박 및 누룩 추출물을 다양한 농도로 24시간 처리한 후 cell viability assay를 수행하였다. 즉, 96 well plate의 각 well에 1×10⁵개의 세포주를 접종하여 24시간 동안 배양한 후, 주박 및 누룩 추출물을 24시간 처리 후, MTS용액 (Promega, USA)을 각 well당 20 μl씩 첨가하고 37℃, 5% CO₂ incubator에서 4시간 동안 반응시켰다.
- 2)로 거른 후 분말화 하고 E-Ju 주박 추출물(YE)을 획득하였다. 또한, 분획물 제조를 위해서는 에탄올 추출물을 42℃에서 감압 농축하여 eth- yl acetate를 1:1로 섞은 용액에 현탁하고 감압 건조한 뒤, 분말화 하여 E-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(YAc), B-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(PAc), nuruk의 ethyl acetate 분획물 (RAc), W-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(WPAc)을 획득하였다. 각각의 시료 분말은 DMSO (Dimethyl Sulfoxide, Sigma, USA)에 녹인 후 사용하였다(Fig.
- 2A). 또한, 지방세포형성 유무를 명확하게 구분하기 위하여 oil red O 염색을 수행하였다. 그 결과, YAc, YE를 처리한 경우에는 대조구와 유사하게 형성된 지방세포가 염색되어 붉게확인되었으며, 이에 반해 PAc, RAc, WPAc 처리군에서는 지방세포 형성이 거의 관찰되지 않았다(Fig.
- 마우스 전지방세포 3T3-L1의 성장이 100% confluent 상태가 될 때까지 배양한 후, 분화를 유도하였다. 세포가 confluent 상태가 되었을 때 10% FBS (Fetal Bovine Serum, Gibco, USA), 1% penicillin 및 streptomycin이 포함된 Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM, Gibco, USA)에 분화유도 물질인 IBMX 용액(1,000X, Cayman, USA), Dexamethasone 용액 (1, 000X, Cayman, USA) 그리고 Insulin 용액(1,000X, Cayman, USA)을 각각 1 μl/ml가 되도록 첨가하여 2일간 분화를 유도하였다.
- 세포가 confluent 상태가 되었을 때 10% FBS (Fetal Bovine Serum, Gibco, USA), 1% penicillin 및 streptomycin이 포함된 Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM, Gibco, USA)에 분화유도 물질인 IBMX 용액(1,000X, Cayman, USA), Dexamethasone 용액 (1, 000X, Cayman, USA) 그리고 Insulin 용액(1,000X, Cayman, USA)을 각각 1 μl/ml가 되도록 첨가하여 2일간 분화를 유도하였다. 분화 중에 주박 및 누룩 추출물이 지방형성과정에 미치는 영향을 확인하기 위하여 배지에 각 추출물을 0.1 mg/ml 의 농도로 처리하고 대조구로서 DMSO를 각각 처리하였다. 그 후 2일 뒤 Insulin 용액(1,000X, Cayman, USA)만 1 μ l/ml가되도록 첨가한 배지와 각 추출물 0.
- 분획물 PAc에 의한 NAG-1과 ATF3의 유전자 발현변화를 확인하기 위하여 대장암 세포주 HCT116에 PAc를 0.125, 0.25, 0.5 mg/ml의 농도로 각각 처리하였다. 그 결과 PAc의 처리 농도가 증가됨에 따라 NAG-1과 ATF3의 유전자 발현이 농도 의존적으로 증가됨을 확인할 수 있었다(Fig.
- 분획물 PAc의 처리에 의한 암 억제 유전자인 NAG-1 (Non- steroidal anti-inflammatory drug activated gene-1)과 ATF3 (Activating transcription factor-3) 유전자의 발현 변화를 확인하였다. 분획물 PAc에 의한 NAG-1과 ATF3의 유전자 발현변화를 확인하기 위하여 대장암 세포주 HCT116에 PAc를 0.
- 그 후 lipopolysaccharide (LPS, Sigma, USA) 200 ng/ml을 처리하고 1시간 후 DMSO에 녹인주박 및 누룩 추출물을 처리하여 24시간 동안 배양하였다. 생성된 NO의 양은 Griess 시약(1% sulfanilamide, 0.1% naph- ylethylenediamine in 2.5% phosphoric acid)을 이용하여 세포배양액 중에 존재하는 NO2의 형태로 측정하였다. 세포 배양상등액 100 μl와 Griess 시약 100 μl를 혼합하여 96-well plate 에서 5분간 반응시키고 NanoQuant PlateTM (Tecan Trading AG, Switzerland)를 사용하여 540 nm에서 흡광도를 측정하였다.
- 될 때까지 배양한 후, 분화를 유도하였다. 세포가 confluent 상태가 되었을 때 10% FBS (Fetal Bovine Serum, Gibco, USA), 1% penicillin 및 streptomycin이 포함된 Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM, Gibco, USA)에 분화유도 물질인 IBMX 용액(1,000X, Cayman, USA), Dexamethasone 용액 (1, 000X, Cayman, USA) 그리고 Insulin 용액(1,000X, Cayman, USA)을 각각 1 μl/ml가 되도록 첨가하여 2일간 분화를 유도하였다. 분화 중에 주박 및 누룩 추출물이 지방형성과정에 미치는 영향을 확인하기 위하여 배지에 각 추출물을 0.
- 정량화한 RNA는 reverse transcription (RT)-PCR에 사용하였다. 수확한 세포주로부터 추출한 total RNA 1 μg을 주형으로, PrimeScriptTM RT-PCR Kit (TaKaRa, Japan)을 이용하여 제조사의 매뉴얼에따라 cDNA를 제조하였다. PCR에 사용한 primer 디자인은 Primer 3 program (http://frodo.
- 4A). 이 중 가장 높은 NO 생성 저해능력을 보여준 PAc를 다양한 농도(0.5, 1.0, 1.5, 2.0, 2.5 mg/ml)로 24시간 처리한 후 NO 생성을 측정하였다. 그 결과 Fig.
- 주박 및 누룩 추출물에 의한 지방세포형성 억제과정 중 pro-adipogenic 유전자인 Adiponectin, PPARγ 그리고 SCD-1 유전자의 발현 변화를 확인하였다. 그 결과, Fig.
- 주박 및 누룩 추출물의 항염증 활성을 측정하기 위하여 LPS 로 염증을 유도한 RAW 264.7 세포에 각 시료를 0.5 mg/ml 의 농도로 처리한 후, NO 생성을 측정하였다. 그 결과, DMSO 만을 처리한 대조구에 비해, 추출물 YE와 PAc 처리군에서만 NO 생성이 저해됨을 확인하였다(Fig.
- 주박 및 누룩 추출물이 마우스 전지방 세포주인 3T3-L1 세포의 지방세포형성과정에 미치는 영향을 확인하기 위하여, 지방세포형성을 유도하면서 각 주박 추출물을 0.1 mg/ml의 농도로 처리하고 대조구로는 DMSO를 각각 처리 하였다. 그 결과, 분화 유도 후 DMSO를 처리한 대조구와 YAc (E-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물), YE (E-Ju 주박 추출물)를 처리한 경우에는 지방세포형성이 정상적으로 일어난 반면, PAc (B-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물), RAc (nuruk의 ethyl acetate 분획물), WPAc (W-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물) 처리군에서는 지방세포 형성이 현저히 억제되는 것을 확인할 수 있었다(Fig.
- 주박과 누룩 추출물에 의한 대장암 세포주 HCT116의 성장억제 활성을 정량적으로 확인하기 위하여 각 시료를 0.5 mg/ml의 농도로 처리한 후, 24시간 후에 cell viability assay 를 수행하였다. 그 결과 Fig.
- 최종적으로 정제한 total RNA는 NanoQuant PlateTM를이용하여 흡광도를 측정하여 정량하였다. 정량화한 RNA는 reverse transcription (RT)-PCR에 사용하였다.
대상 데이터
- 수확한 세포주로부터 추출한 total RNA 1 μg을 주형으로, PrimeScriptTM RT-PCR Kit (TaKaRa, Japan)을 이용하여 제조사의 매뉴얼에따라 cDNA를 제조하였다. PCR에 사용한 primer 디자인은 Primer 3 program (http://frodo.wi.mit.edu/)을 이용하였으며 Bioneer (Korea)사로부터 제조하여 사용하였다(Table 1, 2). PCRe PrimeScriptTM RT-PCR Kit (TaKaRa, Japan)를 이용하여 제조사의 메뉴얼에 따라 실험을 수행하였다.
- 또한, 분획물 제조를 위해서는 에탄올 추출물을 42℃에서 감압 농축하여 eth- yl acetate를 1:1로 섞은 용액에 현탁하고 감압 건조한 뒤, 분말화 하여 E-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(YAc), B-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(PAc), nuruk의 ethyl acetate 분획물 (RAc), W-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(WPAc)을 획득하였다. 각각의 시료 분말은 DMSO (Dimethyl Sulfoxide, Sigma, USA)에 녹인 후 사용하였다(Fig. 1).
- 7 그리고 암세포 항성장 활성 연구에는 인간 대장암 세포주인 HCT116 를사용하였다. 마우스 전지방세포주인 3T3-L1 배양시에는 10% BS (Bovine Serum, Gibco, USA)를 사용하였고, HCT116과 RAW 264.7 세포주 배양의 경우 FBS (Fetal Bovine Serum, Gibco-BRL, USA)를 사용하였으며 1% penicillin 및 strepto- mycin (WelGene, Korea)이 함유된 Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM, Gibco, USA)을 사용하였다.
- 본 연구에 사용한 동물세포주는 총 3종으로서 지방세포형성 억제활성 연구에는 마우스 전지방세포주인 3T3-L1, 항염증 활성 연구에는 마우스 대식세포주인 RAW 264.7 그리고 암세포 항성장 활성 연구에는 인간 대장암 세포주인 HCT116 를사용하였다. 마우스 전지방세포주인 3T3-L1 배양시에는 10% BS (Bovine Serum, Gibco, USA)를 사용하였고, HCT116과 RAW 264.
- 본 연구에서 사용된 주박 및 누룩 추출물과 ethyl acetate 분획물은 (주)국순당에서 총 5종을 공급받아 사용하였다. 시료로 사용된 주박 및 누룩은 80% 에탄올에 48시간 상온에 추출하고, 추출액은 filter paper (Whatman No.
- 시료로 사용된 주박 및 누룩은 80% 에탄올에 48시간 상온에 추출하고, 추출액은 filter paper (Whatman No. 2)로 거른 후 분말화 하고 E-Ju 주박 추출물(YE)을 획득하였다. 또한, 분획물 제조를 위해서는 에탄올 추출물을 42℃에서 감압 농축하여 eth- yl acetate를 1:1로 섞은 용액에 현탁하고 감압 건조한 뒤, 분말화 하여 E-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(YAc), B-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(PAc), nuruk의 ethyl acetate 분획물 (RAc), W-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물(WPAc)을 획득하였다.
성능/효과
- 5 mg/ml)별로 처리한 후 cell viability assay를 수행하였다. 그 결과 0.025와 0.125 mg/ ml PAc 처리군에서는 세포생존율에 미치는 영향이 거의 없었으나, 0.25, 0.375, 그리고 0.5 mg/ml PAc 처리군부터 각각 21%, 64%, 75% 정도의 생존율 감소를 보여 PAc에 의한 농도의존적인 세포생존율 감소를 확인하였다(Fig. 5B).
- 5 mg/ml)로 24시간 처리한 후 NO 생성을 측정하였다. 그 결과 Fig. 4B에서 보는 것과 같이 PAc에 의해 농도 의존적으로 NO 생성이 억제됨을 확인하였다. 이러한 결과는 누룩곰팡이의 일종인 Rhizopus oryzae KSD-815 로부터 획득한 추출물이 항염증 활성이 있다는 보고[9]와 유사한 결과를 나타내는것뿐만 아니라, 주박 추출물에 의한 항염증 활성도 보여주고 있어 향후 전통주의 다양한 구성요소들에 의한 항염증 활성여부 역시 중요한 연구 대상이 될 수 있으리라 생각된다.
- 5 mg/ml의 농도로 처리한 후, 24시간 후에 cell viability assay 를 수행하였다. 그 결과 Fig. 5에서 보는 바와 같이 YAc, YE, PAc에 의해 각각 76.7%, 88.8%, 26%의 세포생존율을 보여준 반면 RAc를 처리한 경우에는 각각 91.2%로 세포생존율의 큰 변화는 없었고, WPAc를 처리한 경우에는 105.4%로 대조구에 비해 세포생존율이 증가하였다(Fig. 5A). PAc의 처리 농도에 따른 대장암 세포주의 생존율을 확인하기 위하여 PAc를 다양한 농도(0.
- 5 mg/ml의 농도로 각각 처리하였다. 그 결과 PAc의 처리 농도가 증가됨에 따라 NAG-1과 ATF3의 유전자 발현이 농도 의존적으로 증가됨을 확인할 수 있었다(Fig. 5C). NAG-1 유전자는 TGF-beta superfamily의한 종류로서, NAG- 1 유전자를 과대 발현하는 transgenic mouse 모델에서 항암 활성[1]과 항비만 활성[4]이 있는 것으로 보고되었다.
- 5 mg/ml 의 농도로 처리한 후, NO 생성을 측정하였다. 그 결과, DMSO 만을 처리한 대조구에 비해, 추출물 YE와 PAc 처리군에서만 NO 생성이 저해됨을 확인하였다(Fig. 4A). 이 중 가장 높은 NO 생성 저해능력을 보여준 PAc를 다양한 농도(0.
- 발현 변화를 확인하였다. 그 결과, Fig. 3A에서 보는 바와 같이 분획물 PAc, RAc, WPAc를 처리한 경우 PPARγ와 SCD-1 유전자의 발현이 감소되는 것을 확인할 수 있었고, Adiponectin 유전자의 발현은 PAc의 처리에 의해서만 감소되는 것을 확인할 수 있었다. 또한, 분획물 WPAc를 분화 유도후 2일에서 8일까지 처리한 후 PPARγ 유전자의 발현을 확인한 결과, DMSO만을 처리한 대조구는 분화가 진행됨에 따라 PPARγ 유전자의 발현이 계속적으로 증가하는 반면, WPAc를처리한 실험군은 6일이 되는 날부터 발현이 억제되기 시작하여 8일이 되는 시점에는 PPARγ 유전자의 발현이 완전히 억제됨을 확인하였다(Fig.
- 또한, 지방세포형성 유무를 명확하게 구분하기 위하여 oil red O 염색을 수행하였다. 그 결과, YAc, YE를 처리한 경우에는 대조구와 유사하게 형성된 지방세포가 염색되어 붉게확인되었으며, 이에 반해 PAc, RAc, WPAc 처리군에서는 지방세포 형성이 거의 관찰되지 않았다(Fig. 2B). 연구에 사용한총 5 종의 시료 중 PAc, RAc, WPAc가 지방세포 형성억제활성을 가지는 것으로 판단된다.
- 1 mg/ml의 농도로 처리하고 대조구로는 DMSO를 각각 처리 하였다. 그 결과, 분화 유도 후 DMSO를 처리한 대조구와 YAc (E-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물), YE (E-Ju 주박 추출물)를 처리한 경우에는 지방세포형성이 정상적으로 일어난 반면, PAc (B-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물), RAc (nuruk의 ethyl acetate 분획물), WPAc (W-Ju 주박의 ethyl acetate 분획물) 처리군에서는 지방세포 형성이 현저히 억제되는 것을 확인할 수 있었다(Fig. 2A). 또한, 지방세포형성 유무를 명확하게 구분하기 위하여 oil red O 염색을 수행하였다.
- 3A에서 보는 바와 같이 분획물 PAc, RAc, WPAc를 처리한 경우 PPARγ와 SCD-1 유전자의 발현이 감소되는 것을 확인할 수 있었고, Adiponectin 유전자의 발현은 PAc의 처리에 의해서만 감소되는 것을 확인할 수 있었다. 또한, 분획물 WPAc를 분화 유도후 2일에서 8일까지 처리한 후 PPARγ 유전자의 발현을 확인한 결과, DMSO만을 처리한 대조구는 분화가 진행됨에 따라 PPARγ 유전자의 발현이 계속적으로 증가하는 반면, WPAc를처리한 실험군은 6일이 되는 날부터 발현이 억제되기 시작하여 8일이 되는 시점에는 PPARγ 유전자의 발현이 완전히 억제됨을 확인하였다(Fig. 3B). 주박 및 누룩 추출물에 의한 지방세포 억제활성 연구는 매우 미미한 상황이므로, 이러한 연구 결과는 주박 및 누룩 추출물을 활용한 비만 억제용 천연소재 개발 및 관련 산업으로의 활용을 제시할 수 있으리라 기대된다.
- 2B). 연구에 사용한총 5 종의 시료 중 PAc, RAc, WPAc가 지방세포 형성억제활성을 가지는 것으로 판단된다.
후속연구
- 최근에는 이러한 누룩의 일정한 품질 유지를 위한 공정 개발[11]과, 누룩에 의한 세포독성 및 항염증 활성[9] 등에 대한 연구결과가 발표 되었다. 그러나, 주박과 누룩에 함유되어 있는 천연소재의 발굴과 이용을 위해서는 다양한 생리활성연구와 활성기전 연구가 지속적으로 진행되어야 할 것으로 생각된다.
- 이러한 연구결과는 분획물 PAc에 의한 암세포 성장 억제 활성은 항암 유전자인 NAG-1과 ATF3 유전자의 발현증가와 관련이 있는 것으로 판단된다. 그러나, 항암유전자의 발현 증가와 세포성장억제활성의 직접적인 관련성은 siRNA등을 이용한 추가실험을 진행해야 될 것으로 판단된다.
- 그러나, 주박 및 누룩 추출물에 의한 항비만 및 항암 활성에 대한 보고는 매우 미미한 실정이다. 또한, 천연물 소재에 의한 화학적 암 예방법이 효과적인 암 예방법으로 대두되고 있어 [15], 향후 항비만 및 항암 활성을 가지고 있는 새로운 천연물 소재의 발굴에 대한 연구는 지속될 것으로 생각된다.
- 4B에서 보는 것과 같이 PAc에 의해 농도 의존적으로 NO 생성이 억제됨을 확인하였다. 이러한 결과는 누룩곰팡이의 일종인 Rhizopus oryzae KSD-815 로부터 획득한 추출물이 항염증 활성이 있다는 보고[9]와 유사한 결과를 나타내는것뿐만 아니라, 주박 추출물에 의한 항염증 활성도 보여주고 있어 향후 전통주의 다양한 구성요소들에 의한 항염증 활성여부 역시 중요한 연구 대상이 될 수 있으리라 생각된다.
- 성장 억제활성을 연구하였다. 이러한 연구결과는 전통주 제조시 사용되는 누룩과 부산물인 주박의 다양한 산업 제품의 천연재료로 활용 가능성을 제시한다.
- 그 기전에 대하여 연구하였다. 이러한 연구결과는주박 및 누룩의 새로운 천연물 소재로서의 활용 가능성에 대한 기초자료를 제공해 줄 것으로 기대된다.
- 3B). 주박 및 누룩 추출물에 의한 지방세포 억제활성 연구는 매우 미미한 상황이므로, 이러한 연구 결과는 주박 및 누룩 추출물을 활용한 비만 억제용 천연소재 개발 및 관련 산업으로의 활용을 제시할 수 있으리라 기대된다.
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