왕느릅나무(Ulmus macrocarpa)의 껍질을 말린 유근피는 오랫동안 부종, 감염 및 염증 제어의 목적으로 사용되어져 왔음에도 불구하고 잠재적 면역조절 효과에 관해서는 연구가 이루어진 바 없다. 본 연구에서는 전통 약용자원에서 새로운 면역기능 증가 신소재 발굴의 일환으로 유근피 열수 추출물의 면역 조절 효능을 RAW 264.7 대식세포 모델을 이용하여 조사하였다. 이를 위한 대식세포의 활성화 관련 지표로서 NO, TNF-α, IL-1β 및 IL-10의 생성량 변화를 조사하였다. 비록 유근피 추출물이 처리된 RAW 264.7 대식세포에서 IL-1β의 유의적인 유리는 관찰할 수 없었으나, NO, TNF-α 및 IL-10의 생성은 세포독성을 나타내지 않는 범위에서 유근피 추출물 처리 농도 의존적으로 증가되었으며, 이는 또한 iNOS, TNF-α 및 IL-10의 단백질 발현 증가와 연관되어 있었다. 아울러 유근피 추출물은 LPS에 의한 과도한 NO의 생성 억제능도 함유하고 있었으며, 유근피 추출물에 의한 대식세포의 활성화에는 NF-κB와 PI3K/Akt 및 MAPKs 등과 같은 면역 활성을 유도하는 신호전달계의 활성화가 연관되어 있음을 알 수 있었다. 따라서 본 연구의 결과는 유근피 추출물이 대식세포 활성화를 통한 면역 증강제로서의 개발 가능성이 매우 높음을 시사한다.
왕느릅나무(Ulmus macrocarpa)의 껍질을 말린 유근피는 오랫동안 부종, 감염 및 염증 제어의 목적으로 사용되어져 왔음에도 불구하고 잠재적 면역조절 효과에 관해서는 연구가 이루어진 바 없다. 본 연구에서는 전통 약용자원에서 새로운 면역기능 증가 신소재 발굴의 일환으로 유근피 열수 추출물의 면역 조절 효능을 RAW 264.7 대식세포 모델을 이용하여 조사하였다. 이를 위한 대식세포의 활성화 관련 지표로서 NO, TNF-α, IL-1β 및 IL-10의 생성량 변화를 조사하였다. 비록 유근피 추출물이 처리된 RAW 264.7 대식세포에서 IL-1β의 유의적인 유리는 관찰할 수 없었으나, NO, TNF-α 및 IL-10의 생성은 세포독성을 나타내지 않는 범위에서 유근피 추출물 처리 농도 의존적으로 증가되었으며, 이는 또한 iNOS, TNF-α 및 IL-10의 단백질 발현 증가와 연관되어 있었다. 아울러 유근피 추출물은 LPS에 의한 과도한 NO의 생성 억제능도 함유하고 있었으며, 유근피 추출물에 의한 대식세포의 활성화에는 NF-κB와 PI3K/Akt 및 MAPKs 등과 같은 면역 활성을 유도하는 신호전달계의 활성화가 연관되어 있음을 알 수 있었다. 따라서 본 연구의 결과는 유근피 추출물이 대식세포 활성화를 통한 면역 증강제로서의 개발 가능성이 매우 높음을 시사한다.
The root bark of Ulmus macrocarpa has been used in traditional medicine for the treatment of various diseases such as edema, infection and inflammation. Nevertheless, the biological activities and underlying mechanisms of the immunomodulatory effects remain unclear. In this study, as part of our ong...
The root bark of Ulmus macrocarpa has been used in traditional medicine for the treatment of various diseases such as edema, infection and inflammation. Nevertheless, the biological activities and underlying mechanisms of the immunomodulatory effects remain unclear. In this study, as part of our ongoing screening program to evaluate the immunomodulatory potential of new compounds from traditional medicinal resources, we investigated the effects of U. macrocarpa water extract (UME) on immune modulation in a murine RAW 264.7 macrophage model. As immune response parameters, the productions of as nitric oxide (NO) and cytokines such tumor necrotic factor (TNF)-α, interleukin (IL)-1β and IL-10 were evaluated. Although the release of IL-1β remained unchanged in UME-treated RAW 264.7 macrophages, the productions of NO, TNF-α and IL-10 were significantly increased, along with the increased expression of inducible NO synthase, TNF-α and IL-10 expression at concentrations with no cytotoxicity. UME treatment also induced the nuclear translocation of nuclear factor κB (NF-κB), and phosphorylation of Akt and mitogen-activated protein kinases (MAPKs) indicating that UME activated macrophages through the activation of NF-κB, phosphoinositide-3-kinase (PI3K)/Akt and MAPKs signaling pathways in RAW 264.7 macrophages. Furthermore, pre-treatment with UME significantly attenuated the production of NO, but not TNF-α, IL-1β and IL-10, in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 cells suggesting that UME may be useful in preventing inflammatory diseases mediated by excessive production of NO. These findings suggest that the beneficial therapeutic effects of UME may be attributed partly to its ability to modulate immune functions in macrophages.
The root bark of Ulmus macrocarpa has been used in traditional medicine for the treatment of various diseases such as edema, infection and inflammation. Nevertheless, the biological activities and underlying mechanisms of the immunomodulatory effects remain unclear. In this study, as part of our ongoing screening program to evaluate the immunomodulatory potential of new compounds from traditional medicinal resources, we investigated the effects of U. macrocarpa water extract (UME) on immune modulation in a murine RAW 264.7 macrophage model. As immune response parameters, the productions of as nitric oxide (NO) and cytokines such tumor necrotic factor (TNF)-α, interleukin (IL)-1β and IL-10 were evaluated. Although the release of IL-1β remained unchanged in UME-treated RAW 264.7 macrophages, the productions of NO, TNF-α and IL-10 were significantly increased, along with the increased expression of inducible NO synthase, TNF-α and IL-10 expression at concentrations with no cytotoxicity. UME treatment also induced the nuclear translocation of nuclear factor κB (NF-κB), and phosphorylation of Akt and mitogen-activated protein kinases (MAPKs) indicating that UME activated macrophages through the activation of NF-κB, phosphoinositide-3-kinase (PI3K)/Akt and MAPKs signaling pathways in RAW 264.7 macrophages. Furthermore, pre-treatment with UME significantly attenuated the production of NO, but not TNF-α, IL-1β and IL-10, in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 cells suggesting that UME may be useful in preventing inflammatory diseases mediated by excessive production of NO. These findings suggest that the beneficial therapeutic effects of UME may be attributed partly to its ability to modulate immune functions in macrophages.
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문제 정의
최근 연구에 의하면 유근피 추출물은 강력한 항염증[11] 및 항산화 활성[12]과 항혈전[33] 기능이 알려진 바 있으나 면역 기능 개선에 대한 연구는 미비한 실정이다. 본 연구에서는 면역 증강 효능을 나타내는 신물질 탐색의 과정으로 유근피를 선정하였으며, 유근피열수 추출물에 의한 대식세포에서의 면역 조절 관련 몇 가지 유의적인 결과를 얻었기에 이를 보고하고자 한다.
유근피 추출물이 RAW 264.7 대식세포의 면역 반응에 미치는 영향을 조사하고자 다음과 같이 실험 조건을 설정하였다. 유근피 열수 추출물(UME)을 적정 농도로 RAW 264.
또한 대식세포가 다양한 조직에 존재하고 염증성 자극을 포함한 인자들에 대한 생체방어 기능을 한다는 점에서 이러한 인자들에 의하여 자가 활성화될 수 있다[15, 25]. 따라서 유근피 열수 추출물 처리에 따른 RAW 264.7 세포의 분화가 대식세포 활성화와 직접 연관성이 있는지를 조사하기 위하여 유근피 추출물이 처리된 배지에서 배양된 세포 상등액에 존재하는 작동 분자(effector molecule) 중의 하나인 NO의 생성[28, 30] 변화를 먼저 조사하였다.
아울러 extracellular signal-regulated kin- ase (ERK), c-Jun amino terminal kinase (JNK) 및 p38을 포함하는 MAPKs 신호 경로 역시 면역 및 염증성 시스템의 중요한 신호전달 반응을 매개하고, 대식세포 활성을 포함한 세포 활성 물질의 생성 및 다양한 생물학적 기능 조절의 주요 인자로서 작용한다[1, 8]. 본 연구에서는 유근피 추출물에 의한 면역조절 반응에 관여하는 세포 내 신호 전달계 역할의 이해를 위하여 PI3K의 하위 조절인자에 해당되는 Akt와, MAPKs에속한 3가지 kinase (ERK, JNK 및 p38 MAPK)의 활성화 여부를 부가적으로 조사하였다. Fig.
제안 방법
그리고 추출액은 여과하여 45℃ 이하에서 감압농축(Rotary vac- uum evaporator, Eyela, Japan) 하였으며, 농축물은 -80℃ 동결건조기 (FDU-2100, Eyela, Japan)를 이용하여 건조시켜 약 320.0 g의 열수추출물(U. macrocarpa water extract, UME)을 얻었다.
RAW 264.7 세포의 증식에 미치는 유근피 추출물의 영향을 조사하기 위하여 세포 배양용 6 well plate에 1×105 cells/ml로세포를 분주하고 적정 농도의 유근피 추출물 단독, LPS (Sigma- Aldrich Co., St. Louis, MO, USA) 단독 또는 LPS를 1 시간선처리 후 유근피 추출물을 처리하였다. 24시간 후 배지를 제거하고 MTT [3-(4, 5-dimethylthiazol-2-yl)-2, 5-diphenylte- trazolium bromide, Sigma-Aldrich Co.
5 mg/ml 농도로 희석하여 200 μl씩 분주하고 37℃에서 다시 반응시켰다. 2 시간 후 MTT 시약을 제거하고 dimethyl sulfoxide (DMSO, Sigma-Aldrich Co.)를 1 ml씩 각 well에 분주하여 생성된 for- mazan을 모두 녹인 후 96 well plate에 200 μl씩 옮겨서 en- zyme-linked immunosorbent assay (ELISA) reader (Molecu- lar Devices, Sunnyvale, CA, USA)로 540 nm에서 흡광도를 측정하였다. 아울러 RAW 264.
)를 1 ml씩 각 well에 분주하여 생성된 for- mazan을 모두 녹인 후 96 well plate에 200 μl씩 옮겨서 en- zyme-linked immunosorbent assay (ELISA) reader (Molecu- lar Devices, Sunnyvale, CA, USA)로 540 nm에서 흡광도를 측정하였다. 아울러 RAW 264.7 세포의 형태적 변형은 위상차현미경(Carl Zeiss, Oberkochen, Germany)을 사용하여 관찰하였다.
)를 이용하여 측정하였다. 이를 위하여 RAW 264.7 세포에 적정 시간 동안 유근피 추출물및 LPS를 처리한 후 24시간 배양하고 세포 배양액을 수거하였다. 배양액 100 μl와 동량의 Griess Reagent를 상온에서 5 분간 반응시킨 후 ELISA reader로 540 nm에서 흡광도를 측정하였고, sodium nitrite (NaNO2)의 농도 별 표준곡선을 이용하여 배양액 내의 NO 농도를 결정하였다.
7 세포에 적정 시간 동안 유근피 추출물및 LPS를 처리한 후 24시간 배양하고 세포 배양액을 수거하였다. 배양액 100 μl와 동량의 Griess Reagent를 상온에서 5 분간 반응시킨 후 ELISA reader로 540 nm에서 흡광도를 측정하였고, sodium nitrite (NaNO2)의 농도 별 표준곡선을 이용하여 배양액 내의 NO 농도를 결정하였다.
세포 배양액 내의 다양한 cytokine (TNF-α, IL-1β 및 Ⅱ.-10) 의 양을 측정하기 위한 Quantikine ELISA kit는 R&D systems (Minneapolis, MN, USA)에서 구입하였다. 동일한 조건에서 배양된 RAW 264.
-10) 의 양을 측정하기 위한 Quantikine ELISA kit는 R&D systems (Minneapolis, MN, USA)에서 구입하였다. 동일한 조건에서 배양된 RAW 264.7 세포의 배양액을 이용하여 cytokine의 생성 양을 제시된 방법에 따라 처리한 다음 ELISA reader를 이용하여 450 nm의 흡광도에서 cytokine 들의 생성 정도를 측정하였다.
면역 조절관련 특정 유전자들의 발현 변화 관찰을 위하여 준비된 세포들을 250 mM NaCl, 25 mM Tris-HCl (pH 7.5), 10 mM ethylenediaminetetraacetic acid, 1% Nonidet P-40, 0.1 mM phenyl-methylsulfonylfluoride와 protease inhibitor 등이 함유된 lysis buffer를 사용하여 용해시켰다. 핵과 세포질에서 단백질을 분리하기 위해서는 NE-PER® kit (PIERCE, Rockford, IL, USA)를 사용하였으며, 분리된 단백질들의 농도는 Bio-Rad 단백질 정량 시약(Bio-Rad, Herculs, CA, USA)을 이용하여 측정하였다.
1 mM phenyl-methylsulfonylfluoride와 protease inhibitor 등이 함유된 lysis buffer를 사용하여 용해시켰다. 핵과 세포질에서 단백질을 분리하기 위해서는 NE-PER® kit (PIERCE, Rockford, IL, USA)를 사용하였으며, 분리된 단백질들의 농도는 Bio-Rad 단백질 정량 시약(Bio-Rad, Herculs, CA, USA)을 이용하여 측정하였다. Western blotting을 위해 동량의 단백질들을 sodium dodecyl sulfate (SDS)-polyacrylamide gel elec- trophoresis를 이용하여 분리하고 nitrocellulose membrane (Schleicher & Schuell, Keene, NH, USA)으로 전이시켰다.
Western blotting을 위해 동량의 단백질들을 sodium dodecyl sulfate (SDS)-polyacrylamide gel elec- trophoresis를 이용하여 분리하고 nitrocellulose membrane (Schleicher & Schuell, Keene, NH, USA)으로 전이시켰다. 각각의 membrane을 5% skim milk를 1시간 처리하여 비특이적인 단백질들에 대한 blocking을 실시한 후, 적정 항체 및 en- hanced chemiluminescence (ECL, Amersham Corp. Arling- ton Heights, IL, USA) 용액을 적용시킨 다음 X-ray film에 감광 시켜 특정 단백질의 발현 양을 분석하였다. 본 연구에 사용한 1차 항체는 Santa Cruz Biotechnology Inc.
유근피 추출물 처리에 따른 NF-κB의 세포 내 분포 변화를 위한 형광현미경학적 관찰을 위하여 6 well plate 내 coverslip 위에 부착시킨 RAW 264.7 세포에 유근피 추출물을 처리하였다. 적정 시간 처리 후, 4% paraformaldehyde (Sigma-Aldrich Co.
, West Grove, PA, USA)로 1시간 더 반응을시켰다. 다시 PBS로 수세 후, 4, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI, Sigma-Aldrich Co.) 용액으로 10 분간 핵을 염색한 후 형광현미경(Carl Zeiss) 하에서 NF-κB p65의 발현 정도를 관찰하였다.
7 대식세포의 면역 반응에 미치는 영향을 조사하고자 다음과 같이 실험 조건을 설정하였다. 유근피 열수 추출물(UME)을 적정 농도로 RAW 264.7 대식세포에 처리하거나, LPS (100 ng/ml) 단독 및 LPS 1시간 선처리 후 유근피 추출물을 24시간 동안 처리한 후 MTT assay를 실시하여 세포 생존도 변화를 측정하였다. Fig.
7 대식세포의 생존율에는 유의적인 변화가 관찰되지 않았으며, LPS 단독 및 유근피 추출물과의 동시 처리군에서도 모두 유의적인 세포 독성을 보이지 않았다. 이 결과를 바탕으로 대식세포 면역 조절능 평가를 위한 유근피 추출물의 최고 처리 농도를 500 mg/ml로 설정하였으며, 동일 조건에서 대식세포 활성화와 연관성이 있는지를 조사하기 위해 형태적 변화를 관찰하였다. Fig.
그러나 면역 활성 자극에 반응하여, IκB가 인산화 후 ubiqutine-proteasome 경로를 통하여 분해되면, NF-κB가 유리되어 핵 내로 이동하여 면역 조절 유전자 특정 promoter 영역을 활성화시킨다[4, 6]. 따라서 유근피 추출물에 의한 면역 조절 반응에서 NF-κB 활성 증가에 미치는 영향을 조사하기 위하여 핵과 세포질의 단백질을 분리하여 NF-κB의 subunit의 하나인 p65 단백질의 발현 변화를 조사하였다. Fig.
따라서 비록 NO나 다양한 cytokine이 면역 활성 증가능을 가지고 있으나, 이들의 과도한 생성 증가는 오히려 염증 반응을 야기할 수 있다. 따라서 유근피 추출물이 항염증 인자로서 작용할 수 있는지의 여부를 조사하기 위하여, LPS 처리 농도를 높여 염증 유발 조건을 설정하였다. Fig.
대상 데이터
본 실험에서 사용된 유근피(Ulmus macrocarpa)는 (주)대한생약에서 구입하였으며, 건조된 유근피 3 kg을 증류수(10 l)를 가한 후 80℃ 수욕상에서 3 시간씩 2회 반복 추출하였다. 그리고 추출액은 여과하여 45℃ 이하에서 감압농축(Rotary vac- uum evaporator, Eyela, Japan) 하였으며, 농축물은 -80℃ 동결건조기 (FDU-2100, Eyela, Japan)를 이용하여 건조시켜 약 320.
면역 반응에 미치는 유근피 추출물의 영향을 조사하기 위하여 사용된 murine macrophage cell line인 RAW 264.7 세포는 American Type Culture Collection (Manassas, VA, USA)에서 구입하여, 10% fetal bovine serum (FBS, WELGENE, Daegu, Republic of Korea)과 penicillin/streptomycin 100 unit/ml이 함유된 Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM, WELGENE)을 사용하여 37℃, 5% CO2 조건에서 배양하였다.
NO의 농도 측정을 위해 세포 배양액 내의 nitrite 농도를 Griess Reagent (Sigma-Aldrich Co.)를 이용하여 측정하였다. 이를 위하여 RAW 264.
데이터처리
모든 실험 결과는 평균(mean) ± 표준편차(SD)로 표시하였고 Sigmaplot (Systat Software Inc., San Jose, CA, USA)을 이용하여 Student t-test로 계적 유의성을 얻었다.
성능/효과
7 대식세포에 처리하거나, LPS (100 ng/ml) 단독 및 LPS 1시간 선처리 후 유근피 추출물을 24시간 동안 처리한 후 MTT assay를 실시하여 세포 생존도 변화를 측정하였다. Fig. 1A의 결과에서 알 수 있듯이, 본 연구에서 조사된 유근피 추출물 처리 농도 (100~500 mg/ml) 범위 내에서 RAW 264.7 대식세포의 생존율에는 유의적인 변화가 관찰되지 않았으며, LPS 단독 및 유근피 추출물과의 동시 처리군에서도 모두 유의적인 세포 독성을 보이지 않았다. 이 결과를 바탕으로 대식세포 면역 조절능 평가를 위한 유근피 추출물의 최고 처리 농도를 500 mg/ml로 설정하였으며, 동일 조건에서 대식세포 활성화와 연관성이 있는지를 조사하기 위해 형태적 변화를 관찰하였다.
이 결과를 바탕으로 대식세포 면역 조절능 평가를 위한 유근피 추출물의 최고 처리 농도를 500 mg/ml로 설정하였으며, 동일 조건에서 대식세포 활성화와 연관성이 있는지를 조사하기 위해 형태적 변화를 관찰하였다. Fig. 1B에 나타낸 바와 같이, 유근피 추출물 처리 시간의 증가에 따라 LPS 처리군에서 관찰된 전형적인 대식세포 분화를 의미하는 형태적 변화[3]를 관찰할 수 있었으며, 이는 유근피 추출물이 RAW 264.7 대식세포의 활성을 촉진시킬 수 있었다는 간접적인 증가가 될 수 있을 것으로 생각된다.
Fig. 2A의 결과에서 알 수 있듯이, 유근피 추출물 처리에 의하여 세포독성이 없는 범위에서 처리 농도 의존적으로 NO 의 생성이 증가되었으며, 대조군으로 사용한 5 ng/ml의 LPS 처리군에서도 유의적인 증가가 관찰되었다. 대식세포 활성화지표 중의 하나인 NO는 대식세포에서 생성되는 반응질소 중간체로서 NO synthase (NOS)에 의하여 L-arginine에서 만들어지는 기체 분자이다[19].
즉, 유근피 추출물 처리에 의한 NO 분비능의 증가는 유근피 추출물이 면역 기능 활성 증가 가능성을 가질 수 있음을 보여주는 한 예로서 사용될 수 있을 것으로 생각된다. 또한 유근피 추출물 처리에 의한 대식세포에서 NO의 생성 증가는 inducible NOS (iNOS)의 발현 증가에 의한 것임을 확인하였다(Fig. 3).
본 연구의 결과에 의하면 유근피 추출물 처리에 따라 RAW 264.7 대식세포에서 세 가지의 cytokine 중, IL-1β의 생성에는 유의적인 증가 현상이 관찰되지 않았으며, 단백질 수준에서도 발현의 증가가 나타나지 않았다. 그러나 TNF-α와 IL-10의 생성이 NO의 생성 증가와 동반되어 모두 증가되었으며(Fig.
7 대식세포에서 세 가지의 cytokine 중, IL-1β의 생성에는 유의적인 증가 현상이 관찰되지 않았으며, 단백질 수준에서도 발현의 증가가 나타나지 않았다. 그러나 TNF-α와 IL-10의 생성이 NO의 생성 증가와 동반되어 모두 증가되었으며(Fig. 2B~D), 이는 단백질 수준에서 각 cytokine의 발현 증가에 의한 것임을 알 수 있었다(Fig. 3). 이는 유근피 추출물에 의한 대식세포 활성화에 NO, TNF-α와 IL-10의 생성 증가가 동반되어 나타났음을 의미하는 것으로 사료된다.
따라서 유근피 추출물에 의한 면역 조절 반응에서 NF-κB 활성 증가에 미치는 영향을 조사하기 위하여 핵과 세포질의 단백질을 분리하여 NF-κB의 subunit의 하나인 p65 단백질의 발현 변화를 조사하였다. Fig. 4A의 결과에서 알 수 있듯이, 비록 세포질내 IκB-α의 발현에는 큰 변화가 없었지만, 유근피 추출물 처리 15 분 후 부터 핵 내에서의 NF-κB p65의 발현이 관찰되었으며, 60 분 경과 후 최고치를 보인 후 점차 발현이 감소되었다. 뿐만 아니라 면역형광염색법을 이용하여 NF-κB p65 단백질의 세포 내 위치 변화를 확인 본 결과, 유근피 추출물 처리에 의해 핵 내로 NF-κB p65가 이동되었음을 관찰할 수 있었다 (Fig.
4A의 결과에서 알 수 있듯이, 비록 세포질내 IκB-α의 발현에는 큰 변화가 없었지만, 유근피 추출물 처리 15 분 후 부터 핵 내에서의 NF-κB p65의 발현이 관찰되었으며, 60 분 경과 후 최고치를 보인 후 점차 발현이 감소되었다. 뿐만 아니라 면역형광염색법을 이용하여 NF-κB p65 단백질의 세포 내 위치 변화를 확인 본 결과, 유근피 추출물 처리에 의해 핵 내로 NF-κB p65가 이동되었음을 관찰할 수 있었다 (Fig. 4B).
MAPKs의 경우 종류에 따라 다소 시간적 차이는 있으나, 유근피 추출물 처리에 의하여 인산 화형의 발현이 1시간 이내에 모두 증가되었다. 이상의 결과는 유근피 추출물에 의한 RAW 264.7 대식세포의 활성화에 NF-κB 신호계를 포함한 PI3K/Akt 및 MAPKs 신호 전달계의 활성이 동시에 관여하고 있음을 의미하는 것이다.
따라서 유근피 추출물이 항염증 인자로서 작용할 수 있는지의 여부를 조사하기 위하여, LPS 처리 농도를 높여 염증 유발 조건을 설정하였다. Fig. 6에 나타낸 결과에서 알 수 있듯이 LPS 처리 농도를 100 ng/ml로 높였을 경우, 5 ng/ml 처리군에 비하여 NO의 생성량이 6 배 이상 증가하였으며, 세 가지 종류의 cytokine 생성량도 모두 증가되었다. 비록 본 실험 조건에서 처리된 유근피 추출물의 농도 조건에서 cytokine 의 생성을 억제하지는 못하였으나, NO의 생성은 유근피 추출물의 처리 농도 증가에 따라 다소 유의적으로 억제되었음을 알 수 있었다(Fig.
6에 나타낸 결과에서 알 수 있듯이 LPS 처리 농도를 100 ng/ml로 높였을 경우, 5 ng/ml 처리군에 비하여 NO의 생성량이 6 배 이상 증가하였으며, 세 가지 종류의 cytokine 생성량도 모두 증가되었다. 비록 본 실험 조건에서 처리된 유근피 추출물의 농도 조건에서 cytokine 의 생성을 억제하지는 못하였으나, NO의 생성은 유근피 추출물의 처리 농도 증가에 따라 다소 유의적으로 억제되었음을 알 수 있었다(Fig. 6A). 이러한 결과들로 볼 때 유근피 추출물이 항염증 효력이 없다고 결론 내릴 수는 없지만, 과도한 NO 의 생성 억제능을 보이는 것은 매우 의미 있는 결과로서, 이에대한 추가적인 연구가 필요할 것으로 생각된다.
이상의 결과에서 유근피 추출물에 의한 대식세포의 활성화 과정은 NF-κB의 활성과 PI3K/Akt 및 MAPKs 신호 경로의 활성화를 통하여 iNOS 및 다양한 면역 조절 관련 cytokine의 전사 활성 촉진을 통하여 이루어질 것으로 추정된다(Fig. 7). 따라서 이러한 면역 활성 증대에 관여하는 유근피 추출물의 주요 생리활성 물질의 탐색과 동물실험을 통한 추기적인 연구가 수행되어야 할 것이다.
후속연구
따라서 세포독성을 유발하지 않는 적정 조건에서 NO 생성의 촉진은 면역 기능을 증가시킬 수 있는 지표로 사용될 수 있다[7, 18]. 즉, 유근피 추출물 처리에 의한 NO 분비능의 증가는 유근피 추출물이 면역 기능 활성 증가 가능성을 가질 수 있음을 보여주는 한 예로서 사용될 수 있을 것으로 생각된다. 또한 유근피 추출물 처리에 의한 대식세포에서 NO의 생성 증가는 inducible NOS (iNOS)의 발현 증가에 의한 것임을 확인하였다(Fig.
6A). 이러한 결과들로 볼 때 유근피 추출물이 항염증 효력이 없다고 결론 내릴 수는 없지만, 과도한 NO 의 생성 억제능을 보이는 것은 매우 의미 있는 결과로서, 이에대한 추가적인 연구가 필요할 것으로 생각된다.
7). 따라서 이러한 면역 활성 증대에 관여하는 유근피 추출물의 주요 생리활성 물질의 탐색과 동물실험을 통한 추기적인 연구가 수행되어야 할 것이다.
참고문헌 (34)
Arthur, J. S. and Ley, S. C. 2013. Mitogen-activated protein kinases in innate immunity. Nat. Rev. Immunol. 13, 679-692.
Choi, H. S., Kim, S. R., Hong, S. H., Ku, J. M., Kim, M. K., Seo, H. S., Cho, S. G., Shin, S., Shin, Y. C. and Ko, S. G. 2013. Water extract of deer bones activates macrophages and alleviates neutropenia. Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2013, 617302.
Gasparini, C. and Feldmann, M. 2012. NF-κB as a target for modulating inflammatory responses. Curr. Pharm. Des. 18, 5735-5745.
Guzik, T. J., Korbut, R. and Adamek-Guzik, T. 2003. Nitric oxide and superoxide in inflammation and immune regulation. J. Physiol. Pharmacol. 54, 469-487.
Hayden, M. S. and Ghosh, S. 2014. Regulation of NF-κB by TNF family cytokines. Semin. Immunol. 26, 253-266.
Hibbs, J. B., Taintor, R. R. and Vavrin, Z. 1987. Macrophage cytotoxicity: role for L-arginine deiminase and imino nitrogen oxidation to nitrite. Science 235, 473-479.
Ivashkiv, L. B. 2011. Inflammatory signaling in macrophages: transitions from acute to tolerant and alternative activation states. Eur. J. Immunol. 41, 2477-2481.
Kayser, O., Masihi, K. N. and Kiderlen, A. F. 2003. Natural products and synthetic compounds as immunomodulators. Expert. Rev. Anti-Infect. Ther. 1, 319-335.
Klimp, A. H., de Vries, E. G., Scherphof, G. L. and Daemen, T. 2002. A potential role of macrophage activation in the treatment of cancer. Crit. Rev. Oncol. Hematol. 44, 143-161.
Kwon, J. H., Kim, S. B., Park, K. H. and Lee M. W. 2011. Antioxidative and anti-inflammatory effects of phenolic compounds from the roots of Ulmus macrocarpa. Arch. Pharm. Res. 34, 1459-1466.
Kwon, Y. M., Lee, J. H. and Lee, M. W. 2002. Phenolic compounds from barks of Ulmus macrocarpa and its antioxidative activities. Kor. J. Pharmacogn. 33, 404-410.
Lane, T. and Lachmann, H. J. 2011. The emerging role of interleukin-1β in autoinflammatory diseases. Curr. Allergy Asthma Rep. 11, 361-368.
Lee, J. S. and Hong, E. K. 2011. Immunostimulating activity of the polysaccharides isolated from Cordyceps militaris. Int. Immunopharmacol. 11, 1226-1233.
Liew, F. Y., Wei, X. Q. and Proudfoot, L. 1997. Cytokines and nitric oxide as effector molecules against parasitic infections. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B Biol. Sci. 352, 1311-1315.
Liles, W. C. 2001. Immunomodulatory approaches to augment phagocyte-mediated host defense for treatment of infectious diseases. Semin. Respir. Infect. 16, 11-17.
Lorsbach, R. B., Murphy, W. J., Lowenstein, C. J., Snyder, S. H. and Russell, S. W. 1993. Expression of the nitric oxide synthase gene in mouse macrophages activated for tumor cell killing.molecular basis for the synergy between interferon-gamma and lipopolysaccharide. J. Biol. Chem. 268,1908-1913.
MacMicking, J., Xie, Q. W. and Nathan, C. 1997. Nitric oxide and macrophage function. Annu. Rev. Immunol. 15, 323-550.
Madrid, L. V., Wang, C. Y., Guttridge, D. C., Schottelius, A. J., Baldwin, A. S. Jr. and Mayo, M. W. 2000. Akt suppresses apoptosis by stimulating the transactivation potential of the RelA/p65 subunit of NF-kappaB. Mol. Cell. Biol. 20, 1626-1638.
Patel, T. N., Shishehbor, M. H. and Bhatt, D. L. 2007. A review of high-dose statin therapy: targeting cholesterol and inflammation in atherosclerosis. Eur. Heart J. 28, 664-672.
Pinto, M. R., Melillo, D., Giacomelli, S., Sfyroera, G. and Lambris, J. D. 2007. Ancient origin of the complement system: emerging invertebrate models. Adv. Exp. Med. Biol. 598, 372-388.
Ritchlin, C. T., Haas-Smith, S. A., Li, P., Hicks, D. G. and Schwarz, E. M. 2003. Mechanisms of TNF-alpha- and RANKL-mediated osteoclastogenesis and bone resorption in psoriatic arthritis. J. Clin. Invest. 111, 821-831.
Saponaro, C., Cianciulli, A., Calvello, R., Dragone, T., Iacobazzi, F. and Panaro, M. A. 2012. The PI3K/Akt pathway is required for LPS activation of microglial cells. Immunopharmacol. Immunotoxicol. 34, 858-865.
Schreiber, S., Heinig, T., Thiele, H. G. and Raedler, A. 1995. Immunoregulatory role of interleukin 10 in patients with inflammatory bowel disease. Gastroenterology 108, 1434-1444.
Singh, V. K., Mehrotra, S., Narayan, P., Pandey, C. M. and Agarwal, S. S. 2000. Modulation of autoimmune diseases by nitric oxide. Immunol. Res. 22, 1-19.
Storck, M., Schilling, M., Burkhardt, K., Prestel, R., Abendroth, D. and Hammer, C. 1994. Production of proinflammatory cytokines and adhesion molecules in ex-vivo xenogeneic kidney perfusion. Transpl. Int. 7, 647-649.
Tripathi, P. 2007. Nitric oxide and immune response. Indian J. Biochem. Biophys. 44, 310-319.
Wang, D., Zhang, S., Li, L., Liu, X., Mei, K. and Wang, X. 2010. Structural insights into the assembly and activation of IL-1β with its receptors. Nat. Immunol. 11, 905-911.
Yang, W. K., Lee, J. J., Sung, Y. Y., Kim, D. S., Myung, C. S. and Kim, H. K. 2013. Extract of Ulmus macrocarpa Hance prevents thrombus formation through antiplatelet activity. Mol. Med. Rep. 8, 726-730.
Zhou, D., Huang, C., Lin, Z., Zhan, S., Kong, L., Fang, C. and Li, J. 2014. Macrophage polarization and function with emphasis on the evolving roles of coordinated regulation of cellular signaling pathways. Cell Signal. 26, 192-197.
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