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문제 정의
- 본 연구에서는 쓴메밀 새싹 추출물(TBS)을 대상으로 histone acetyltransferase(HAT) 활성 저해능을 평가하고 oleic acid와 palmitic acid(OPA)를 이용하여 HepG2 세포에서 비알코올성 지방간을 유도하여 그 효과를 검토하였다. HeLa 세포의 nuclear extract(NE)를 HAT의 source로 하여 in vitro에서 TBS에 의한 HAT 활성 저해능을 평가한 결과 추출물의 처리에 의하여 HAT 활성이 억제됨을 관찰할 수 있었다.
- 본 연구에서는 쓴메밀 새싹 추출물(TBS)이 HAT 활성을 억제하고 지방합성 관련 유전자들의 발현을 감소시킴으로써 지방세포 내 중성지방의 축적을 억제하는 것을 밝히며, 단순 지방간증 예방 치료를 위한 소재 개발의 기초자료를 제공하고자 한다.
제안 방법
- 이때 실험군은 oleate, palmitate와 함께 100 μg/mL, 250 μg/mL, 500 μg/mL, 1,000 μg/mL 농도의 추출물을 동시에 처리하였다. 16시간 후 세포를 수집하고 total RNA를 추출하고 cDNA를 합성하였다. qRT-PCR 분석은 SYBR Gree PCR Master mix reagent(Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA)를 이용하여(Bio-Rad CFX Connect Real-Time PCR Detection System, Bio-Rad, Hercules, CA, USA) 다음과 같은 조건으로 시행하였다.
- 개의 HepG2 세포를 24 well plate에 분주하고 70% confluence에 도달하였을 때 400 μM oleic acid와 100 μM의 palmitic acid와 함께 100 μg/mL, 250 μg/mL, 500 μg/mL, 1,000 μg/mL 농도의 샘플을 동시에 처리하였다. 24시간 후 PBS로 2회 세척하고 FBS가 포함되지 않은 배지로 교체한 후 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-di-phenyltetrazolium bromide(MTT, Sigma-Aldrich Co.)를 배지에 첨가하여 2시간 동안 배양하고 형성된 blue for-mazan을 DMSO에 용해하여 570 nm와 630 nm에서 mi-croplate reader를 사용하여 세포생존율을 측정하였다.
- 5×104개의 HepG2 세포를 24 well plate에 분주하고 70% confluence에 도달하였을 때 400 μM oleic acid와 100 μM의 palmitic acid와 함께 100 μg/mL, 250 μg/mL, 500 μg/mL, 1,000 μg/mL 농도의 샘플을 동시에 처리하였다.
- 5×104개의 HepG2 세포를 24 well plate에 분주한 후 70%의 confluence에 도달했을 때 400 μM oleic acid와 100 μM의 palmitic acid와 함께 200 μg/mL, 500 μg/mL의 추출물을 처리하였다.
- 5×105개의 밀도로 HepG2 세포를 6 well plate에 분주하고 세포가 70%의 confluence에 도달하였을 때 새로운 DMEM 배지로 교환하고 400 μM의 oleic acid, 100 μM의 palmitic acid와 함께 250 μg/mL, 500 μg/mL의 추출물을 처리하였다.
- 세포 내에서 소재에 의한 HAT 활성의 변화를 확인하기 위하여 HepG2 세포에 400 μM의 oleate, 100 μM의 palmi-tate와 함께 200 μg/mL, 500 μg/mL의 쓴메밀 새싹 추출물을 24시간 동안 함께 처리한 후 nuclear extract(NE)를 추출하였다. NE의 추출을 위하여 차가운 phosphate buf-fered saline(PBS)을 이용하여 세포를 3회 수세한 후 세포를 수확하였다. 1 mL의 cytosol lysis buffer(10 mM Tris pH 7.
- 16시간 후 세포를 수집하고 total RNA를 추출하고 cDNA를 합성하였다. qRT-PCR 분석은 SYBR Gree PCR Master mix reagent(Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA)를 이용하여(Bio-Rad CFX Connect Real-Time PCR Detection System, Bio-Rad, Hercules, CA, USA) 다음과 같은 조건으로 시행하였다. 모든 결과는 GAPDH에 따라 상대적으로 정량화되었다.
- 쓴메밀 새싹 10 g과 80%(v/v)메탄올 250 mL를 혼합한 후, homogenizer(Polytron RT-2100, Kinematica AG, Luzern, Switzerland)로 15,000rpm에서 10분간 균질화하였다. 균질화된 추출물은 20분간 초음파 추출을 병행하였으며 Whatman No. 2 여과지(What-man International Ltd., Kent, UK)를 이용하여 여과하였다. 여과박(filter cake)은 회수하여 같은 방법으로 2회 반복 추출하였으며, 추출과정 동안 지속해서 질소가스를 충전하였다.
- 마지막으로 TBS에 의한 HAT 활성 저해, 히스톤 및 비히스톤 단백질의 아세틸화 억제, 그리고 SREBP1c, ACLY, 그리고 FAS와 같은 지방합성 관련 유전자들의 전사 활성 저해가 OPA에 의한 세포 내 지질 축적을 억제할 수 있는지 알아보기 위하여 Oil Red O staining을 실시하였다. Fig.
- 1%의 Oil Red O 염색용액을 넣어 실온에서 1시간 반응하였다. 반응 후 증류수를 이용하여 Oil Red O 염색시약을 완전히 제거한 후 세포의 상태를 현미경을 이용하여 관찰한 다음 AxioVision Rel 4.9.1(Carl Zeiss, Oberkochen, Germany)을 이용하여 사진을 얻었다. 염색 정도의 정량화를 위하여 200 μL의 iso-propanol을 넣어 세포 내 염색시약을 용해시킨 후 용해된 100 μL의 isopropanol을 96 well plate에 옮겨 담아 510nm에서 흡광도를 측정하였다.
- 세포 내 지방합성 관련 유전자의 발현을 관찰하기 위하여 수행된 qRT-PCR을 위하여 HepG2 세포를 5×105 cells/well의 밀도로 6 well plate에 분주하고 10% FBS를 첨가한 DMEM 배지에서 배양하였다.
- 세포 내에서 소재에 의한 HAT 활성의 변화를 확인하기 위하여 HepG2 세포에 400 μM의 oleate, 100 μM의 palmi-tate와 함께 200 μg/mL, 500 μg/mL의 쓴메밀 새싹 추출물을 24시간 동안 함께 처리한 후 nuclear extract(NE)를 추출하였다.
- 세포가 70% confluence에 도달했을 때 세포를 1회 세척하여 새 DMEM으로 배지를 교체한 후 400 μM의 oleate와 100 μM의 palmitate를 처리하였다.
- 실제로 HepG2 세포 내 지방 축적 유도 시 단백질 및 히스톤의 아세틸화가 일어나는지, 그리고 TBS가 이를 효과적으로 억제할 수 있는지를 관찰하였다. Fig.
- 실제적으로 TBS가 세포 내 존재하는 HAT enzyme들의 활성을 저해하는지를 알아보기 위하여 HepG2 세포주에 oleic acid, palmitic acid와 함께 200 μg/mL, 500 μg/mL의 TBS를 24시간 동안 처리한 후, 세포 ly-sis를 통해 얻어진 100 μg의 NE를 이용하여 HAT 활성을 측정하였다.
- 실험을 위하여 400 μM의 oleic ac-id와 100 μM의 palmitic acid를 동시에 세포에 처리하였고, 대조군으로 DMEM에 녹인 BSA만을 단독 처리하였다.
- , Kent, UK)를 이용하여 여과하였다. 여과박(filter cake)은 회수하여 같은 방법으로 2회 반복 추출하였으며, 추출과정 동안 지속해서 질소가스를 충전하였다. 여과된 추출물은 감압회전농축기(N-1000, Eyela, Tokyo, Japan)를 사용하여 농축한 후, 동결 건조한 다음 분석 전까지 -20°C에서 보관하였다.
- 이때 실험군은 oleate, palmitate와 함께 100 μg/mL, 250 μg/mL, 500 μg/mL, 1,000 μg/mL 농도의 추출물을 동시에 처리하였다.
- 히스톤 단백질들의 아세틸화는 관련 유전자의 전사 활성화 증가를 유도하므로, TBS의 지질축적 유도에 의한 히스톤 단백질 아세틸화 억제는 지방합성 관련 유전자들의 전사 활성을 저해할 가능성이 있다. 이를 증명하기 위하여 HepG2세포주에 OPA를 이용하여 지질을 축적시키고 TBS가 지방산 합성 관련 유전자들의 전사 활성 조절에 미치는 영향을 조사하기 위하여 qRT-PCR을 통하여 대표적 지방합성 관련 유전자인 SREBP1c, ACLY, 그리고 FAS의 전사 활성 변화를 관찰하였다(Fig. 3). 예상했던 바와 같이 OPA 단독 처리에 의하여 증가하였던 SREBP1c, ACLY, 그리고 FAS 유전자의 전사 활성은 TBS 처리에 의하여 저해됨을 관찰할 수 있었다.
- 전체 15 μg의 단백질을 10% 또는 15% SDS gel에 전기영동 시행하고 HDAC1(Santa Cruz Bio-technology, Inc., Santa Cruz, CA, USA), β-actin(Sigma-Aldrich Co.), α-tubulin(Millipore), total-AcLys(Cell Signaling, Danvers, MA, USA), H3K9ac(Cell Signaling), H3K36ac(Cell Signaling), H4K8ac(Cell Signaling), 그리고 total H3(Santa Cruz Biotechnology, Inc.)를 이용하여 western blotting을 실시하였다.
대상 데이터
- HepG2 세포 내 지방을 축적시키기 위하여 oleic acid(Sigma-Aldrich Co., St. Louis, MO, USA)와 palmitic acid(Sigma-Aldrich Co.)를 사용하였다. 두 지방산의 세포 내 효과적인 흡수를 위하여 각각 8 mM의 농도로 95% 에탄올에 녹인 후 질소가스를 이용하여 에탄올을 증발(evapora-tion)시키고 DMEM을 이용하여 20%로 녹인 fatty acid free인 bovine serum albumin(BSA, Sigma-Aldrich Co.
- HepG2(human hepatoblastoma)는 ATCC(Manassas, VA, USA)에서 구매하여 Dulbecco’s modified Eagle’s medium(DMEM)에 10% fetal bovine serum(FBS), 1% antibiotics/antimycotics를 첨가하여 37°C, 5% CO2 조건의 습윤한 incubator에서 배양되었다.
- 본 실험에 사용된 쓴메밀은 강원도 평창에서 2013년 재배된 종자를 구입한 것을 사용하였다. 쓴메밀 종자는 소형재배 용기에 파종하여 2일 동안 최아시킨 후, 암조건에서 증류수로 5일간 25±2°C에서 재배하였다.
- 증폭의 모든 데이터는 매 cycle의 72°C, 30초 단계에서 수집되었다.
데이터처리
- 각 실험군 간의 통계적 유의성은 Student’s t-test를 사용하여 검정하였다.
- 본 연구에서는 최소 3회 반복에 대한 평균 및 표준편차로 표시하였으며, 각 실험군을 대조군에 대한 백분율로 나타내었다. 각 실험군 간의 통계적 유의성은 Student’s t-test를 사용하여 검정하였다.
이론/모형
- (B) HepG2 cells were treated with or without OPA, alone or in combination with TBS for 24 h. Cellular cytotoxicity was determined using MTT method. All data are expressed as mean±SD from the samples of each group.
- 분리된 NE는 100 μg/μL의 농도로 HAT enzyme의 활성 측정을 위하여 사용되었다. HAT 활성 측정 중 상업적으로 시판되는 HAT activity kit을 이용한 활성 측정은 HeLa 세포에서 NE(Biovision, Milpitas, CA, USA)를, 그리고 특이적인 HAT 단백질인 p300(Enzo, UK)과 CBP(Millipore, Darm-stadt, Germany) 활성 측정은 각각 단백질의 catalytic do-main을 이용한 human recombinant 단백질을 이용하였으며, 측정방법은 판매사인 Biovision의 실험방법을 따랐다.
- Sterol regulatory element-binding protein1(SREBP1c)은 forward 5'-AAACTCAAGCAGG AGAACCTAAGTCT-3', reverse 5'-GTCAGTGTGTCC TCCACCTCAGT-3', ATP-citrate synthase(ACLY)는 forward 5'-TACCACCTCAGCCATCCAGA-3', reverse 5'-GACCCCAACGAGACCAAGTT-3', fatty acid syn-thase(FAS)는 forward 5'-AACCGGCTCTCCTTCTTCTTCGACTT-3', reverse 5'-TCCGAGCGGCAGTACCCATTC-3', 그리고 glyceraldehyde-3-phosphate dehydro-genase(GAPDH)는 forward 5'-ATGTTCGTCATGGGTGTGAAC-3', reverse 5'-GCATGGACTGTGGTCATGAGT-3'이 사용되었다. 모든 반응은 3반복으로 시행되었으며, 상대적 발현 및 standard deviation(SD) value는 com-parative method를 사용하여 계산하였다.
- 쓴메밀 새싹은 메탄올과 함께 균질화(homogenization)방법을 이용하여 추출하였다. 쓴메밀 새싹 10 g과 80%(v/v)메탄올 250 mL를 혼합한 후, homogenizer(Polytron RT-2100, Kinematica AG, Luzern, Switzerland)로 15,000rpm에서 10분간 균질화하였다.
성능/효과
- 실제로 HepG2 세포 내 지방 축적 유도 시 단백질 및 히스톤의 아세틸화가 일어나는지, 그리고 TBS가 이를 효과적으로 억제할 수 있는지를 관찰하였다. Fig. 2A와 같이 OPA를 단독 처리하였을 경우 HepG2 세포 내 단백질들의 아세틸화가 전체적으로 증가함을 확인할 수 있었으며, TBS를 OPA와 함께 혼합 처리하였을 경우 아세틸화의 증가 현상이 TBS 처리에 의하여 억제됨을 관찰할 수 있었다. 이는 Fig.
- 마지막으로 TBS에 의한 HAT 활성 저해, 히스톤 및 비히스톤 단백질의 아세틸화 억제, 그리고 SREBP1c, ACLY, 그리고 FAS와 같은 지방합성 관련 유전자들의 전사 활성 저해가 OPA에 의한 세포 내 지질 축적을 억제할 수 있는지 알아보기 위하여 Oil Red O staining을 실시하였다. Fig. 4A와 같이 OPA를 처리하였을 경우 대조군 대비 200% 이상의 세포 내지질 축적을 관찰할 수 있었으며, TBS 처리에 의하여 축적되는 지질의 양이 감소함을 관찰할 수 있었다. 또한, 동일 조건에서 세포독성은 관찰되지 않았다(Fig.
- HeLa 세포의 nuclear extract(NE)를 HAT의 source로 하여 in vitro에서 TBS에 의한 HAT 활성 저해능을 평가한 결과 추출물의 처리에 의하여 HAT 활성이 억제됨을 관찰할 수 있었다.
- 실제적으로 TBS가 세포 내 존재하는 HAT enzyme들의 활성을 저해하는지를 알아보기 위하여 HepG2 세포주에 oleic acid, palmitic acid와 함께 200 μg/mL, 500 μg/mL의 TBS를 24시간 동안 처리한 후, 세포 ly-sis를 통해 얻어진 100 μg의 NE를 이용하여 HAT 활성을 측정하였다. In vitro HAT assay의 결과와 마찬가지로 TBS가 함께 처리된 실험군에서 HAT 효소의 활성이 저해되었음을 확인하였다(Fig. 1C). 이러한 결과는 TBS가 HAT enzyme 저해 활성을 갖고 있으며, HAT 단백질 중 특히 p300에 대하여 특이적으로 높은 저해 효능을 보임을 의미한다.
- TBS를 처리한 실험군은 추출물을 처리하지 않은 정상군과 비교하였을 때 100 μg/mL로부터 500 μg/mL까지 농도 의존적으로 HAT 활성을 저해하였으며, 모든 농도에서 정상군에 대하여 유의적으로 HAT 활성을 저해하는 것으로 나타났다(P<0.01).
- TBS에 의한 HAT 활성의 억제는 세포 내 다양한 단백질들의 아세틸화 저해와 지질축적에 의하여 아세틸화 변형을 일으키는 것으로 알려진 histone H3K9, H4K8의 아세틸화 및 H3K36의 아세틸화를 감소시켰으며, 세포 내 지질합성과 관련된 대표적 유전자인 SREBP1c, ACLY, FAS의 전사 활성 역시 저해함을 관찰하였다.
- 그뿐만 아니라 HepG2 세포에 400 μM의 oleic acid 및 100 μM의 palmitic acid와 함께 200 μg/mL, 500 μg/mL의 TBS를 처리한 후 NE를 이용하여 세포 내 HAT 활성을 측정한 결과 역시 추출물 처리에 의하여 세포 내 HAT 활성이 저해되어 있음이 관찰되었다.
- 위와 같은 기존의 연구 결과들을 종합해볼 때 비알코올성 지방간질환의 억제를 위해서는 고지방식이에 기인하는 HAT 활성의 억제를 통한 질환 관련 유전자들의 promoter 부위 히스톤 단백질의 아세틸화 억제가 중요할 것으로 예측된다. 기존의 연구결과들과 동일하게 본 연구에서도 OPA에 의한 HepG2 세포 내 지질축적 시 H3K9, H4K8, 그리고 H4K36의 아세틸화 증가가 관찰되었으며, 처리된 TBS의 농도 의존적으로 히스톤 아세틸화가 저해되는 현상이 관찰되었다. 이러한 결과들을 종합해볼 때 히스톤 단백질의 아세틸화는 비알코올성 지방간의 주요 지표로 사용될 수 있으며, TBS는 히스톤 단백질의 아세틸화를 저해함으로써 비알코올성 지방간의 억제 작용에 관여하는 것으로 여겨진다.
- HeLa 세포의 nuclear extract(NE)를 HAT의 source로 하여 in vitro에서 TBS에 의한 HAT 활성 저해능을 평가한 결과 추출물의 처리에 의하여 HAT 활성이 억제됨을 관찰할 수 있었다. 또한, 대표적인 HAT 단백질인 p300과 CBP를 이용하여 동일한 방식으로 HAT 억제능을 평가한 결과 TBS처리에 의하여 두 단백질 모두 활성이 감소하였으며, 특히 TBS는 p300의 활성을 특이적으로 저해함을 확인할 수 있었다. 그뿐만 아니라 HepG2 세포에 400 μM의 oleic acid 및 100 μM의 palmitic acid와 함께 200 μg/mL, 500 μg/mL의 TBS를 처리한 후 NE를 이용하여 세포 내 HAT 활성을 측정한 결과 역시 추출물 처리에 의하여 세포 내 HAT 활성이 저해되어 있음이 관찰되었다.
- 그러므로 세포 내 지질축적에 의해 이와 관련된 다양한 단백질들이 아세틸화되며, TBS에 의하여 이들의 아세틸화가 억제됨을 의미한다. 또한, 세포 내 지질 축적 시 증가한다고 알려진 H3K9, H4K8을 비롯하여 H3K36의 아세틸화 역시 TBS에 의하여 효과적으로 억제되고 있음을 확인하였다(Fig. 2B). 기존 연구 결과에 의하면 고지방식이를 실시한 마우스 간 조직의 Tnfα 유전자 promoter 부위 H3K9과 H3K18의 아세틸화가 증가한다(29).
- qRT-PCR 분석은 SYBR Gree PCR Master mix reagent(Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA)를 이용하여(Bio-Rad CFX Connect Real-Time PCR Detection System, Bio-Rad, Hercules, CA, USA) 다음과 같은 조건으로 시행하였다. 모든 결과는 GAPDH에 따라 상대적으로 정량화되었다. PCR은 95°C에서 30초, 56°C에서 30초, 72°C에서 30초에서 40 cycle로 시행되었으며, 마지막 72°C에서 10분간 추가로 반응하여 안정화시켰다.
- 비알코올성 지방간질환(non-alcoholic fatty liver dis-ease, NAFLD)은 간에서 나타나는 대표적 만성 대사증후군의 하나로 미국인에서 양성자 자기공명분광을 이용하여 간 내 중성지방의 함량을 측정한 연구에서 NAFLD의 유병률은 31%였으며(1), 2030년까지 간이식의 가장 빈번한 요인이 될 것으로 예측되었다(2). 우리나라에서도 식생활의 서구화와 운동량의 감소로 인하여 2013년 그 유병률이 25~30%정도로 추정된다(3).
- 3). 예상했던 바와 같이 OPA 단독 처리에 의하여 증가하였던 SREBP1c, ACLY, 그리고 FAS 유전자의 전사 활성은 TBS 처리에 의하여 저해됨을 관찰할 수 있었다. 히스톤의 아세틸화는 유전자의 전사 활성과 매우 밀접한 관련을 갖는다(32).
- 비알코올성 지방간질환에서 이러한 히스톤 아세틸화의 증가는 p300과 CBP와 같은 대표적 HAT 효소들의 활성 증가와 밀접한 관련이 있으며, 증가한 이들의 활성은 히스톤뿐만 아니라 비히스톤 단백질들의 아세틸화를 통하여 지방합성 및 해당작용 관련 유전자를 활성화한다(9,14). 위와 같은 기존의 연구 결과들을 종합해볼 때 비알코올성 지방간질환의 억제를 위해서는 고지방식이에 기인하는 HAT 활성의 억제를 통한 질환 관련 유전자들의 promoter 부위 히스톤 단백질의 아세틸화 억제가 중요할 것으로 예측된다. 기존의 연구결과들과 동일하게 본 연구에서도 OPA에 의한 HepG2 세포 내 지질축적 시 H3K9, H4K8, 그리고 H4K36의 아세틸화 증가가 관찰되었으며, 처리된 TBS의 농도 의존적으로 히스톤 아세틸화가 저해되는 현상이 관찰되었다.
- 기존의 연구결과들과 동일하게 본 연구에서도 OPA에 의한 HepG2 세포 내 지질축적 시 H3K9, H4K8, 그리고 H4K36의 아세틸화 증가가 관찰되었으며, 처리된 TBS의 농도 의존적으로 히스톤 아세틸화가 저해되는 현상이 관찰되었다. 이러한 결과들을 종합해볼 때 히스톤 단백질의 아세틸화는 비알코올성 지방간의 주요 지표로 사용될 수 있으며, TBS는 히스톤 단백질의 아세틸화를 저해함으로써 비알코올성 지방간의 억제 작용에 관여하는 것으로 여겨진다.
- Gallic acid(26), EGCG(27), garcinol(28) 등은 암과 관련된 천연물 기반 HAT 저해제로 이미 그 기전이 잘 밝혀져 있다. 이러한 기존의 연구들을 통해 쓴메밀 새싹 역시 HAT 활성의 저해능을 지니고 있으며, 이를 통한 질환 예방 및 치료 소재로서의 가능성이 있음을 추측할 수 있었다.
- 특이적인 HAT 단백질에 관해서는 Fig. 1B와 같이 100 μg/mL, 200 μg/mL, 500 μg/mL의 TBS를 처리하였을 때 p300과 CBP 모두에서 TBS에 의한 농도 의존적 HAT 활성 억제능이 관찰되었으며, 특히 p300의 경우 500 μg/mL 농도의 TBS에 의해 80% 가량 활성이 저해되었다.
후속연구
- 이는 OPA에 의한 지방산 합성 관련 유전자들의 전사 활성 증가는 이들 유전자들의 프로모터 부위 히스톤 아세틸화 증가에 의한 것이며, 그러므로 TBS에 의한 지방산 합성 관련 유전자들의 전사 활성 억제는 HAT 활성 저해에 의한 히스톤 아세틸화의 감소에 따른 현상임을 의미한다. 그러나 추후 실제 TBS에 의한 SREBP1c, ACLY, 그리고 FAS 유전자의 전사 활성 변화가 히스톤 단백질의 아세틸화 억제에 의한 것임을 명확히 규명하기 위해서는 chromatin immunoprecipitation assay를 통하여 각 유전자들의 프로모터 부위 히스톤 아세틸화 변화 여부를 직접 관찰할 필요가 있다고 여겨진다.
- 이와 같은 변화를 통하여 OPA에 의하여 HepG2 세포내에 축적되었던 지질은 TBS의 처리에 의하여 효과적으로 감소하였으며 이때 처리된 OPA와 소재에 의한 세포 내 독성은 관찰되지 않았다. 그러므로 이러한 결과는 TBS에 의한 HAT 활성의 저해가 히스톤 단백질의 아세틸활 변형을 억제하고 이를 통하여 지방 합성 관련 유전자들의 전사 활성을 감소시켜 결과적으로 세포 내 지질축적을 방지하는 것으로 생각되며, TBS은 비알코올성 지방간질환의 예방에 좋은 천연물 소재로 활용될 수 있을 것이라 여겨진다.
- 4B). 이와 같은 결과는 TBS에 의한 HAT 활성의 저해가 결과적으로 세포 내 지질의 축적을 억제할 수 있으며, 세포 내 과도한 지질 축적으로 유도되는 비알코올성 지방간의 억제를 위한 건강 기능성식품의 소재로서, 그리고 더 나아가 비알코올성 지방간 치료제 개발의 천연물 소재로서 개발 가능성이 있음을 시사한다.
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