[논문]유청을 이용한 Bacillus subtilis와 Lactobacillus plantarum의 혼합발효를 통한 γ-aminobutyric acid와 생리활성물질 강화

김근영; 임종순; 이삼빈

doi:10.9721/kjfst.2018.50.6.572

유청을 이용한 Bacillus subtilis와 Lactobacillus plantarum의 혼합발효를 통한 γ-aminobutyric acid와 생리활성물질 강화
Fortification of γ-aminobutyric acid and bioactive compounds in whey by co-fermentation using Bacillus subtilis and Lactobacillus plantarum 원문보기

한국식품과학회지 = Korean journal of food science and technology, v.50 no.6, 2018년, pp.572 - 580

김근영 (계명대학교 식품가공학과) , 임종순 (계명대학교 TMR 센터) , 이삼빈 (계명대학교 식품가공학과)

초록
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본 연구는 모짜렐라 치즈 제조과정에서 분리된 유청을 B. subtilis HA와 L. plantarum EJ2014의 혼합 발효를 통해 ${\gamma}$-PGA, GABA 등의 기능성 물질이 강화된 발효물을 생산하고자 하였다. 유청 B. subtilis 발효 1일차의 시료 분석결과, pH는 6.51, 산도는 0.32%, 생균수는 8.39 log CFU/mL을 나타냈으며, 점질물과 점조도는 각각 6.06%와 $4.09Pas^n$로 발효 전보다 유의적으로 증가하였다. 2차 L. plantarum 발효를 통해 유청 혼합발효물의 최종 pH는 4.57까지 감소하였고 산도는 L. plantarum 발효 1일째 1.39%로 증가하여 최종 산도는 1.73%를 나타내었다. B. subtilis 생균수는 2차 L. plantarum 발효가 진행됨에 따라 5.83 log CFU/mL까지 감소하였으나 L. plantarum 생균수는 5.73 log CFU/mL에서 L. plantarum 발효 1일째 9.08 log CFU/mL로 급격히 증가한 후 L. plantarum 발효 7일까지 유지하였다. TLC 정성분석한 결과 L. plantarum 발효 5일 이후 MSG가 모두 소진되어 GABA로 전환되는 것을 확인할 수 있었다. HPLC 정량분석으로 MSG는 L. plantarum 발효 초기 3.40%에서 L. plantarum 발효 7일째 거의 소진 되면서 혼합발효물의 GABA 함량은 2.21%를 보였다. 환원당과 젖당 함량은 각각 발효 전 11.07과 6.73%에서 L. plantarum 발효 7일째 각각 4.97과 3.68%로 크게 감소하는 것을 보였다. 타이로신 함량은 발효가 진행되는 동안 증가되어 L. plantarum 발효 7일째 38.24 mg%를 나타내었다. 단백질 가수분해 정도를 확인하기 위해 SDS-PAGE를 통해 발효 후 유청 단백질들이 대부분 가수분해되어 저분자화되는 것을 확인하였다. 유청의 발효 전후에 따른 항산화 활성을 측정한 결과 ABTS $RC_{50}$값은 26.81 mg/g에서 발효 후 8.78 mg/g, DPPH $RC_{50}$값 또한 발효 전 17.58 mg/g에서 발효 후 10.38 mg/g으로 감소하면서 혼합발효를 통해 전자 공여능이 향상되는 것으로 확인되었다.

Abstract ▼ AI-Helper

Biologically active substances including gamma-aminobutryric acid (GABA) were added into whey by co fermentation using Bacillus subtilis HA and Lactobacillus plantarum EJ2014. The first fermentation using B. subtilis HA with 5% monosodium glutamate (MSG) and 2% glucose enhanced the production of poly-${\gamma}$-glutamic acid (PGA), resulting in higher consistency of $4.09Pas^n$ as well as whey protein peptides. After the second fermentation using L. plantarum EJ2014, the remaining MSG (3.40%) as a precursor was completely converted to 2.21% GABA. Furthermore, the lactose content in whey decreased from 6.73 to 3.68% after co-fermentation, and the tyrosine content increased from 20.47 to 38.24%. Peptides derived of whey proteins were confirmed by SDS-PAGE. Viable cell counts of B. subtilis and L. plantarum were 5.83 log CFU/mL and 9.20 log CFU/mL, respectively. Thus, co-fermentation of whey could produce the novel food ingredient fortified with biologically active compounds including GABA, ${\gamma}$-PGA, peptides, and probiotics.

주제어

표/그림 (7)

표 Table 1. Physicochemical properties of the whey
표 Table 2. Effect of monosodium glutamate (MSG) concentration on the physicochemical properties and viable cell counts in whey fermented by B. subtilis for 3 days
표 Table 3. Changes in the pH, reducing sugar, acidity in whey co-fermented by B. subtilis HA and L. plantarum EJ2014
표 Table 4. ABTS and DPPH radical scavenging activities in whey co-fermented by B. subtilis HA and L. plantarum EJ2014
그림 Fig. 1. Changes in the (A) B. subtilis and (B) L. plantarum viable cell count in whey co-fermented by B. subtilis HA and L. plantarum EJ2014.
그림 Fig. 2. Changes in (A) tyrosine content and (B) SDS-PAGE pattern in the whey co-fermented by B. subtilis HA and L. plantarum EJ2014.
그림 Fig. 3. Changes in (A) gamma-aminobutryric acid (GABA) production (TLC analysis) and (B) monosodium glutamate (MSG) and GABA contents in the whey co-fermented by B. subtilis HA and L. plantarum EJ2014.

AI 본문요약
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문제 정의

따라서 본 연구에서는 모짜렐라 치즈제조과정에서 생산된 유청을 발효 미생물인 B. subtilis과 L. plantarum 혼합발효과정을 통해서 유청 단백질의 가수분해물인 펩타이드 생성 및 전구물질인 MSG로부터 기능성물질인 γ-PGA와 GABA생산을 최적화시키며, 동시에 젖당(lactose) 저감화 및 산화방지능 향상을 통해서 영양적 및 기능적으로 우수한 유청 발효소재를 개발하고자 하였다.
본 연구는 모짜렐라 치즈 제조과정에서 분리된 유청을 B. subtilis HA와 L. plantarum EJ2014의 혼합 발효를 통해 γ-PGA, GABA 등의 기능성 물질이 강화된 발효물을 생산하고자 하였다.

가설 설정

2)Vitamin C indicates ascorbic acid.
3)BHA indicates butylated hydroxy anisole. Each value is a mean±SD (n=3).

제안 방법

1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) free 라디칼 제거 활성측정은 Blois(1958)의 방법을 일부 변형하여 실험하였다. 시료 160 μL와 에탄올에 녹인 0.
25 μL)에 녹인다. 100^oC에서 5분간 가열하여 단백질 변성을 유도한 다음 전기영동(Hofer Inc., Holliston, MA, USA)을 실시하였다. Gel의 염색은 Instant Blue (Expedeon, Cambridgeshire, UK) 용액을 사용하였으며, 표준 단백질은 10, 15, 25, 35, 40, 55, 70, 130, 170 kDa으로 조합되어 있 는 marker를 사용하였다.
2,2-Azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) 라디칼 제거 활성측정은 Re 등(1999)의 방법을 일부 변형하여 실험하였다. 7 mM ABTS와 2.
B. subtilis 발효 시 γ-PGA 생성을 위해 2% 포도당, 5% MSG를 첨가한 후 B. subtilis HA 농축스타터 5% (v/v)를 접종하여 진탕배양기(SI-900R, JeioTech. Co., Ltd., Daejeon, Korea)에서 42oC, 160 rpm으로 1일간 발효 후 잔존하는 MSG는 GABA로 전환시키기 위하여 L. plantarum EJ2014 starter를 2% (v/v)를 접종 한 뒤 30oC 항온배양기(IS-971R, JeioTech. Co., Ltd., Kimpo, Korea)에서 7일간 발효를 진행하였다.
B. subtilis와 L. plantarum에 의한 혼합발효물의 GABA 함량 변화를 측정하기 위해, 발효물을 3배 희석한 후 원심분리하여 얻은 상층액을 TLC를 이용하여 정성분석 하였다. L.
B. subtilis와 L. plantarum을 이용한 혼합발효과정에서 발효시간에 따라 환원당 값의 변화를 측정하였다. 발효 전 환원당 함량은 11.
GABA 전환율의 확인을 위한 유리 아미노산 함량 측정은 건조시킨 시료를 실온에서 phenylisothiocyanate (PITC) 용액 20 μL (MeOH:H2O:TEA:PITC=7:1:1:1)에 30분 동안 유도체화 하여 건조시킨 후, A용매(140 mM NaHAc, 0.15% TEA, 0.03% EDTA, 6% CH3CN, pH 6.1)와 함께 혼합하여 원심분리 하였다.
HPLC (High performance liquid chromatography, Knauer K-501 system, Knauer Co., Berlin, Germany)에 NH2P-50 4E column 4.6×250 mm (Shodex, Tokyo, Japan)을 장착한 후 5% acetonitrile로 분당 1 mL로 흘려주어 RI 검출기(Knauer K-2301)로 분석하였다.
점적 후 TLC plate의 시료 를 건조시킨 다음 전개하였고, 전개가 끝난 TLC plate는 50^oC 감압건조기에서 건조하였다. 건조한 TLC plate에 발색시약인 0.2% 닌하이드린(ninhydrin) 용액을 뿌리고, 100^oC 감압건조기에서 5-10 분 동안 발색시킨 후 발효물의 MSG와 GABA spot을 확인하였다.
고초균 발효를 1일 동안 진행한 후 GABA 생성과 탄소원으로 젖당의 소진을 위해 L. plantarum을 이용한 젖산발효를 7일간 수행하였다. 그 결과 B.
plantarum에 의한 유청 단백질의 가수분해능력은 미비한 것으로 판단되었다. 또한 SDS-PAGE를 통해 발효물의 유청 단백질 가수 분해 정도를 확인하였다. B.
분석은 HPLC (Hewlett Packard 1100 Series, Palo Alto, CA, USA)에 C18 column (Waters Nova-Pak C18 4 μm (3.9×300 mm) 을 장착한 후 mobile phase는 각각 A (140 mM NaHAc, 0.15% TEA, 0.03% EDTA, 6% CH3CN) 100%로 elution후 25분 동안 B (60% CH3CN, 0.015% EDTA) 100%가 되도록 혼합하면서 분당 1 mL로 흘려주었다.
생균수는 발효물 1 mL에 멸균수 9 mL을 첨가해 10배 희석법을 이용하여 104 , 105 및 106 배로 희석한 것을 MRS agar plate에 20 μL 도말한 후 항온배양기에서 24시간 배양한 다음 측정하였 다.
유청 농축액을 2배 희석한 후 autoclave (MLS-3020, Sanyo Electric Co., Ltd., Osaka, Japan)에서 121^oC에서 15분간 멸균하였다. B.
유청 농축액을 증류수로 2배 희석시킨 후, B. subtilis에 의한 발효를 통해 고분자 점질물(γ-PGA) 생산의 최적화를 위해 탄소원 포도당 2%와 질소원 MSG 농도를 0, 1, 3, 5%로 첨가하여 3일간 진탕 배양하여 분석하였다.
유청 발효물의 단백질 패턴을 알아보기 위해 4-15% sodium dodecyl sulfate polyacylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) 전기영동을 수행하였다. 시료를 13,000 rpm에서 20분간 원심분리한 후 2배 농축된 SDS-sample buffer (2× laemmli sample buffer 4.
유청 발효물의 펩타이드 생성정도를 간접적으로 측정하기 위하여 Folin phenol 시약을 이용하여 발효물 중에 존재하는 tyrosine 함량을 측정하였다(Matsushita 등, 1966). 발효물 1 mL에 증류수 2 mL을 넣어 희석한 시료를 e-tube에 취하여 15,000 rpm에서 15 분간 원심 분리하였다.
회수한 상층액에 2배 부피 아이소프로판올(isopropanol)을 첨가하여 생고분자 고형분을 침전시켜 50^oC 열풍 건조기에서 24시간 건조 하였다. 이후 건조 무게를 측정하여 점질물 함량을 확인하였다. 점조도는 Rheometer System (HAKKE Rheo Stress 1, Karlsruhe, Germany)에 cone plate device (Plate PP35Ti, 3.
전단속도(shear rate, 1/s) 변화에 따른 전단응력(shear stress, Pa)값을 구간 당 10 초 동안의 평균값을 측정하여 점조도 값을 나타내었으며, 측정온도는 20oC에서 전단속도(Γ )는 1-100 s-1의 범위로 유동특성을 알아보고자 하였고 점조도 지수는 Power law model로 평가하였다.
이후 건조 무게를 측정하여 점질물 함량을 확인하였다. 점조도는 Rheometer System (HAKKE Rheo Stress 1, Karlsruhe, Germany)에 cone plate device (Plate PP35Ti, 3.5 cm diameter, gap clearance 1.00 mm)를 장착하여 측정하였다. 유청 발효물 1 mL을 원형 plate에 골고루 퍼지게 취한 후 cone plate를 하강시 켜 시료와 1 mm 간격으로 유지시켰다.
40분 간 암소에서 실온으로 냉각한 후 550 nm에서 흡광도를 측정하였다. 환원당 함량은 포도당을 표준물질로 하여 표준곡선을 작성 한 후 산출하였다.
점질물은 유청 발효물 5g을 7,000 rpm에서 20분간 원심 분리하여 균체 및 불용성 성분을 제거하고 상층액을 회수하였다. 회수한 상층액에 2배 부피 아이소프로판올(isopropanol)을 첨가하여 생고분자 고형분을 침전시켜 50^oC 열풍 건조기에서 24시간 건조 하였다. 이후 건조 무게를 측정하여 점질물 함량을 확인하였다.
희석된 ABTS 용액 180 μL에 시료 20 μL 가하여 정확히 1분 동안 방치한 후 흡광도를 측정하였다.

대상 데이터

B. subtilis HA (KCCM 10775P)는 재래식 청국장에서 분리한 후 기탁한 한국미생물보존센터(Korean Culture Center of Microorganisms (KCCM), Seoul, Korea)에서 분양받아서 사용하였다. B.
, Holliston, MA, USA)을 실시하였다. Gel의 염색은 Instant Blue (Expedeon, Cambridgeshire, UK) 용액을 사용하였으며, 표준 단백질은 10, 15, 25, 35, 40, 55, 70, 130, 170 kDa으로 조합되어 있 는 marker를 사용하였다.
L. plantarum EJ2014는 미강으로부터 분리한 균주(KCCM 11545P)를 한국미생물보존센터에 기탁한 후 분양받아 사용하였다. 이 균주를 MRS agar plate에서 계대배양한 후, 멸균한 MRS broth에 순수 배양된 L.
(Ansan, Korea)에서 구입하여 사용하였다. Nutrient broth와 MRS broth는 각각 Difco^TM Nutrient broth와 Difco^TM Lactobacilli MRS (Becton, Dicknson and Company, Sparks, MD, USA) 제품을 사용하였다. SDSPAGE pattern size는 Thermo Fisher Scientific Inc.
본 연구에 사용된 유청은 모짜렐라 치즈 생산의 부산물로 매일유업(Maeil Dairies Co., Seoul, Korea)으로부터 제공받아 사용하였고 발효 시 γ-PGA 생성과 GABA 생성을 위해 첨가한 부원료인 MSG는 Yakuri Pure Chemicals Co., Ltd. (Kyoto, Japan), 포도당은 Ducksan Pure Chemical Co. (Ansan, Korea)에서 구입하여 사용하였다.
유청 발효물 10 g을 메탄올 400 mL에 넣고 24시간 간격으로 30^oC에서 3회 반복 진탕 추출, 여과(Advantec, 5A)한 후 여과액을 감압 농축 후 동결 건조하여 발효 유청 추출물을 항산화 활성 측정 시료에 사용하였다.
발효물의 추출물에 대한 유리 라디칼 제거활성은 시료를 첨가하지 않은 대조구의 흡광도를 1/2로 환원시키는 데 필요한 시료의 농도인 RC₅₀ 값으로 나타내었다. 이 때 활성 비교를 위하여 butylated hydroxy anisole (BHA)를 사용하였다.

데이터처리

Different letters in the same fermentation time indicate significant difference by Duncan’s multiple range test (p<0.05).
실험 결과는 평균값과 표준편차(mean±SD)로 나타내었고 통계처리는 Statistical Package for the Social Science (SPSS, version 20.0, SPSS Inc., Chicago, IL, USA)를 사용하였으며 one wayANOVA 분석을 한 후 Duncan’s multiple rage test를 적용하였다.

이론/모형

유청 발효물의 환원당 함량은 dinitrosalicylic acid (DNS)법에 따라 측정하였다(Luchsinger과 Cornesky, 1962). 시료를 원심분리 (15,000 rpm, 20 min)하여 얻은 상층액을 희석한 시료 1 mL에 DNS 시약 3 mL을 첨가하고, 5분간 100^oC에서 발색시킨다.

성능/효과

09 Pasn로 발효 전보다 유의적으로 증가하였다. 2차 L. plantarum 발효를 통해 유청 혼합발효물의 최종 pH는 4.57까지 감소하였고 산도는 L. plantarum 발효 1일째 1.39%로 증가하여 최종 산도는 1.73%를 나타내었다. B.
38 mg/g으로 나타내었다. ABTS 라디칼 제거활성을 바이타민 C와 비교 측정한 결과 유청을 발효하기 전 RC₅₀값은 26.81 mg/g에서 B. subtilis 발효 후 9.06 mg/g, L. plantarum 발효 후 8.78 mg/g로 발효 전후에 따른 라디칼 제거 활성이 증가하였다. 유청 발효물의 ABTS 라디칼 제거활성이 DPPH 라디칼 제거활성에 비해서 B.
73%를 나타내었다. B. subtilis 생균수는 2차 L. plantarum 발효가 진행됨에 따라 5.83 log CFU/mL까지 감소하였으나 L. plantarum 생균수는 5.73 logCFU/mL에서 L.plantarum 발효 1일째 9.08 log CFU/mL로 급격히 증가한 후 L.plantarum 발효 7일까지 유지하였다. TLC 정성분석한 결과 L.
subtilis에 의한 발효를 통해 고분자 점질물(γ-PGA) 생산의 최적화를 위해 탄소원 포도당 2%와 질소원 MSG 농도를 0, 1, 3, 5%로 첨가하여 3일간 진탕 배양하여 분석하였다. B. subtilis에 의한 유청 발효물의 pH, 산도를 측정한 결과, 발효 기간 동안 모든 조건에서 pH가 증가한다. 초기 pH 5.
plantarum 발효 5일 이후 MSG가 모두 소진되어 GABA로 전환되는 것을 확인할 수 있었다. HPLC 정량분석으로 MSG는 L. plantarum 발효 초기 3.40%에서 L. plantarum 발효 7일째 거의 소진 되면서 혼합발효물의 GABA 함량은 2.21%를 보였다. 환원당과 젖당 함량은 각각 발효 전 11.
K, Ca, Na 등을 포함한 9종의 무기질 함량을 측정한 결과 K이 4671.96 μg/g으로 가장 높은 함량을 나타내었고, Na은 1401.60 μg/g, Ca은 1079.01, P는 1281.99 μg/g으로 나타났다(Table 1).
plantarum에 의한 혼합발효물의 GABA 함량 변화를 측정하기 위해, 발효물을 3배 희석한 후 원심분리하여 얻은 상층액을 TLC를 이용하여 정성분석 하였다. L. plantarum 발효 1일째부터 GABA가 생성되는 것을 볼 수 있으며 L. plantarum 발효 5일째 MSG가 GABA로 모두 전환되어 고농도의 GABA spot이 나타났다(Fig. 3a). 발효물의 GABA 함량을 HPLC로 정량 분석한 결과 GABA의 기질인 글루탐산(glutamic acid)는 L.
05 Pasⁿ 로 차이를 보이지 않았다. MSG를 첨가한 조건 중 특히 MSG 5% 첨가 조건에서 발효 1일째부터 4.09 Pasⁿ 으로 높은 값을 보였으며 발효 3일째까지 3.93 Pasⁿ 로 높은 값을 나타내었다(Table 2).
plantarum 발효 7일까지 유지하였다. TLC 정성분석한 결과 L. plantarum 발효 5일 이후 MSG가 모두 소진되어 GABA로 전환되는 것을 확인할 수 있었다. HPLC 정량분석으로 MSG는 L.
결론적으로 모짜렐라 치즈 제조과정에서 분리된 유청을 B. subtilis와 L. plantarum의 혼합 발효를 통해 동일전구물질인 MSG 첨가만으로 γ-PGA, GABA 등의 기능성 물질을 단계적으로 생산하여 기능성이 강화된 발효물을 생산하였다.
plantarum을 이용한 젖산발효를 7일간 수행하였다. 그 결과 B. subtilis 발효 후 pH는 6.43이였으나 젖산발효 1일째에 pH가 4.50로 감소하였으며 젖산 발효 7일째까지 유 지하는 경향을 보였다. 젖산균에 의한 GABA 생산은 산성 환경에서 적응하는 방법으로 proton이온을 소비하는 것으로 보고되었다(Laroute 등, 2016).
24 mg%를 나타내었다. 단백질 가수분해 정도를 확인하기 위해 SDS-PAGE를 통해 발효 후 유청 단백질들이 대부분 가수분해되어 저분자화되는 것을 확인하였다. 유청의 발효 전후에 따른 항산화 활성을 측정한 결과 ABTS RC₅₀값은 26.
젖산균 발효과정에서 glutamate로부터 GABA로의 전환에 기인하는 glutamate decarboxylase (GAD)효소의 발현을 조절하는 데 필요한 유전자들(gadA, gadB, aidA)의 최적 pH는 4-5정도이며, GAD효소 유전자들의 최적 pH보다 높은 경우 GABA로의 전환율이 급격히 감소된다고 보고하였다(Kim, 2009; Laroute 등, 2016). 따라서 2차 젖산발효의 진행과정에서 유기산 생성에 의한 pH가 낮아지는 것은 GABA 생성에 도움이 될 것으로 판단되었다.
그러나 1차 고초균 발효를 진행한 모든 조건에서 타이로신 함량이 증가하는 것을 확인할 수 있었으며, 특히 1차 고초균 발효를 4시간 이상 수행한 발효유의 타이로신 함량은 80 mg% 이상으로 크게 증가함을 보고하였다. 따라서 우유 관련 제품의 단백질은 B. subtilis 발효를 통해서 효과적으로 분해되면서 펩타이드를 생성하는 것으로 판단되었다.
subtilis 발효물의 고유한 냄새가 없었으며 요구르트와 같은 향미가 생성되는 특성을 보였다(unpublished results). 따라서 유청을 이용한 B. subtilis 발 효에서는 포도당 2%, MSG 5% 첨가한 조건에서 1일간 진탕 발효조건을 B. subtilis 발효의 최적 조건이라고 판단하였다. 유청의 B.
젖산 발효 3일째 산도의 감소는 MSG가 GABA로 전환되면서 proton이온이 소비되면서 산도는 감소하고 pH는 증가한 것으로 판단되었다(Shan 등, 2015). 따라서 젖산발효 중에 증가하던 산도가 유지하거나 감소하는 경향은 전구물질인 MSG의 생물전환을 통한 GABA 생성이 수반되는 것을 간접적으로 나타내는 지표라 판단하였다(Table 3).
plantarum 발효를 통해 서 MSG를 효과적으로 생물전환시켜서 고농도의 GABA생산이 다른 연구와 차별성 있는 연구결과라고 판단되었다. 또한 B. subtilis 발효를 이용한 유청배지의 L. plantarum 발효 시 추가적인 영양성분 첨가 없이도 잔존하는 MSG가 GABA로 전환되었다. 이는 1차적으로 B.
점질물은 MSG를 첨가한 모든 조건에서 생성되는 것을 확인할 수 있었으며, 생성량은 MSG농도가 높을수록 증가하는 것으로 나타났다. 발효 3일째 MSG 1, 3 및 5% 조건에서 각각 2.68, 4.80 및 6.40%로 점질물이 증가함을 확인하였으며 이를 통해 MSG 5% 첨가 조건이 고분자 점질물을 가장 많이 생성하는 것으로 판단하였다. 유청분말을 발효배지로 이용하여 B.
plantarum을 이용한 혼합발효과정에서 발효시간에 따라 환원당 값의 변화를 측정하였다. 발효 전 환원당 함량은 11.07%에서 B. subtilis 발효에 의해서 9.45%로 감소한 후, 젖산발효 1일째 7.15%에서 젖산발효 7일째 4.97%까지 크게 감소 하는 것으로 보아 L. plantarum균의 발효에 의해 젖당을 포함한 발효성 당이 탄소원으로 이용된 것으로 판단되었다. 발효물의 젖 당 함량을 HPLC로 정량분석한 결과, 발효 전 6.
3a). 발효물의 GABA 함량을 HPLC로 정량 분석한 결과 GABA의 기질인 글루탐산(glutamic acid)는 L. plantarum 발효 전 3.40%정도 존재하였고, 젖산 발효 후 대부분 이용되어 소진되었으며 2.21%의 GABA를 생성한 것으로 나타났다 (Fig. 3b). 최근까지 유청을 이용한 GABA생산에 관한 연구는 보고되지 않았으며, Shan 등(2015)에서 5% MSG와 18% whole milk, 2% skim milk를 영양성분으로 첨가한 조건에서 83 mg/100 mL의 GABA생산을 보고하였다.
plantarum균의 발효에 의해 젖당을 포함한 발효성 당이 탄소원으로 이용된 것으로 판단되었다. 발효물의 젖 당 함량을 HPLC로 정량분석한 결과, 발효 전 6.73%에서 1차 B. subtilis 발효에 의한 변화는 없었으며, 2차 젖산 발효 1일째 4.30%로 감소하기 시작하였다. 이후 지속적으로 감소하여 젖산 발효 7일째 3.
plantarum 균주별 발효물의 항산화 활성을 측정한 결과 발효 시간이 지남에 따라 항산화능이 증가된다고 보고하였다. 본 연구에서 1차 B. subtilis 발효물에 비하여 2차 L. plantarum 발효물의 항산화능이 유의적으로 감소하지 않은 것으로 보아 이는 젖산균주마다 생산하는 단백질 분해력이 달라 항산화능 에 영향을 미치는 것으로 보인다. 유청 단백질의 분자량 3-10 kDa 이하에서 항산화 활성이 가장 우수하다는 연구 결과(Anne 2006; Woo 등, 2009)및 동물실험에서 유청의 젖산균을 이용한 발효물의 섭취를 통해 세포내 글루타싸이온의 수치 증가와 면역력 증강 연구보고(Beaulieu 등, 2007)와 유사하게 유청의 B.
본 연구에서 사용된 유청 농축액의 일반성분 분석한 결과 pH 5.87, 산도 0.50%, 고형분 24%, 젖당(lactose) 139.19 mg/g, 단백질 2.85%, 지방 2.32%, 콜레스테롤 44.25 μg/g, 회분 1.47%를 나타냈다.
26으로 MSG 농도가 높아질수록 초기 pH가 증가하였으며 발효가 진행됨에 따라 MSG 1, 3, 5% 첨가 조건에서 발효 2일째 가장 높은 값을 나타낸 뒤 감소하는 경 향을 보였다. 산도는 발효 전 0.24-0.32%로 비슷한 수치를 나타 냈으며 발효가 진행됨에 따라 MSG 1, 3, 5% 첨가 조건에서 발효 2일째 각각 0.11, 0.16, 0.22%로 가장 낮은 값을 나타내었고 MSG 농도가 높을수록 높은 산도 값을 보였다(Table 2).
생균수 결과는 MSG 1, 3, 5% 첨가조건에서 발효 1일째 8.37- 8.45 log CFU/mL의 높은 균 활성을 보였으며 발효 3일째 유지하는 것을 확인하였다. MSG 무첨가 조건은 발효 3일째 6.
plantarum EJ2014의 혼합 발효를 통해 γ-PGA, GABA 등의 기능성 물질이 강화된 발효물을 생산하고자 하였다. 유청 B. subtilis 발효 1일차의 시료 분석결과, pH는 6.51, 산도는 0.32%, 생균수는 8.39 logCFU/mL을 나타냈으며, 점질물과 점조도는 각각 6.06%와 4.09 Pasn로 발효 전보다 유의적으로 증가하였다. 2차 L.
78 mg/g로 발효 전후에 따른 라디칼 제거 활성이 증가하였다. 유청 발효물의 ABTS 라디칼 제거활성이 DPPH 라디칼 제거활성에 비해서 B. subtilis와 L. plantarum 발효 후 RC₅₀값이 더 낮은 것으로 나타났다. 이는 ABTS+ 라디칼은 물과 용매에 용해되면서 효소와 이산화망가니즈(manganese dioxide) 등의 화합물에 의해서 생성되며 항산화 식품소재의 친수성 및 소수성 성질에 기인해서 소거된다.
유청 발효물의 산도는 발효 전 0.16%에서 젖산발효 1일째에 1.39%로 급격히 증가하여 젖산이 생산되는 것을 알 수 있었으며, 젖산 발효 3일째 산도가 급격히 감소 후 일정하게 증가하는 것으로 나타났다. 이는 일반적인 젖산균 발효에서 발효성당으로부 터 젖산의 생성에 의해 산도가 증가하는 경향과 대조적인 결과를 보였다.
유청 발효물의 점조도는 MSG를 첨가한 모든 조건에서 B.subtilis 발효가 진행될수록 높은 값을 보였으나 MSG 무첨가 조건은 발효기간 동안 점조도 값이 0.01-0.05 Pasⁿ 로 차이를 보이지 않았다. MSG를 첨가한 조건 중 특히 MSG 5% 첨가 조건에서 발효 1일째부터 4.
유청 혼합발효물의 생균수 측정 결과 B. subtiis HA의 생균수는 2차 젖산 발효 전 8.69 log CFU/mL을 나타낸 뒤 젖산발효가 진행됨에 따라 감소하여 젖산발효 7일째 5.83 log CFU/mL까지 생균수가 감소하는 경향을 나타내었다. 반면에 2차 젖산균 발효에 사용된 L.
24 mg%을 나타내면서 초기보다 2배 정도 높은 함량을 나타내었다. 유청의 2차 젖산균 발효에서 타이로신 함량이 크게 증가하지 않는 것으로 보아 L. plantarum에 의한 유청 단백질의 가수분해능력은 미비한 것으로 판단되었다. 또한 SDS-PAGE를 통해 발효물의 유청 단백질 가수 분해 정도를 확인하였다.
단백질 가수분해 정도를 확인하기 위해 SDS-PAGE를 통해 발효 후 유청 단백질들이 대부분 가수분해되어 저분자화되는 것을 확인하였다. 유청의 발효 전후에 따른 항산화 활성을 측정한 결과 ABTS RC₅₀값은 26.81 mg/g에서 발효 후 8.78 mg/g, DPPH RC₅₀값 또한 발효 전 17.58 mg/g에서 발효 후 10.38 mg/g으로 감소하면서 혼합발효를 통해 전자 공여능이 향상되는 것으로 확인되었다.
subtilis는 저분자량 항산화제인 글루타싸이온(glutathione) 대사에 관여하는 γ-글루타밀펩타이드 전달효소를 생산한다고 보고하였으며, Anne(2006)의 연구에서 카세인 단백질의 가수분해물이 가지는 항산화 물질은 히스티딘(histidine), 라이신(lysine), 프롤린(proline)과 타이로신(tyrosine)이며 이를 포함하는 펩타이드로 되었을 때 항산화 활성이 높다는 연구결과를 보고하였다. 이로보아 유청의 B. subtilis 발효가 진행됨에 따라 항산화 활성을 증대시키는 효소 및 아미노산의 생성으로 유청 발효물의 항산화 활성이 높아지는 것으로 판단된다.
점질물은 MSG를 첨가한 모든 조건에서 생성되는 것을 확인할 수 있었으며, 생성량은 MSG농도가 높을수록 증가하는 것으로 나타났다. 발효 3일째 MSG 1, 3 및 5% 조건에서 각각 2.
subtilis에 의한 유청 발효물의 pH, 산도를 측정한 결과, 발효 기간 동안 모든 조건에서 pH가 증가한다. 초기 pH 5.90-6.26으로 MSG 농도가 높아질수록 초기 pH가 증가하였으며 발효가 진행됨에 따라 MSG 1, 3, 5% 첨가 조건에서 발효 2일째 가장 높은 값을 나타낸 뒤 감소하는 경 향을 보였다. 산도는 발효 전 0.
plantarum에 의한 혼합발효를 통한 GABA생산에 필요한 영양성분을 포함한 유리한 발효환경을 제공한 것으로 판단되었다. 특히 유청의 B.subtilis 발효 후에 2차 L. plantarum 발효를 통해서 발효 5일 만에 전구물질인 MSG가 GABA로 완전히 전환되는 결과를 얻었다. 천연물을 이용하여 L.
혼합발효를 통해 유청 단백질로부터 생성된 펩타이드 함량을 측정하기 위해서 타이로신 함량을 확인해 본 결과, 발효 전 20.47 mg%에서 B. subtilis 발효가 시작되면서 35.80 mg%로 증가하였고 L. plantarum 발효 7일째까지 증가하여 38.24 mg%을 나타내면서 초기보다 2배 정도 높은 함량을 나타내었다.
21%를 보였다. 환원당과 젖당 함량은 각각 발효 전 11.07과 6.73%에서 L. plantarum발효 7일째 각각 4.97과 3.68%로 크게 감소하는 것을 보였다. 타이로신 함량은 발효가 진행되는 동안 증가되어 L.

후속연구

subtilis 발효의 최적 조건이라고 판단하였다. 유청의 B. subtilis 발효물에 잔존하는 MSG는 2차 L. plantarum 발효를 통해서 기능성 물질인 GABA로 전환됨으로서 B. subtilis과 L. plantarum의 혼합발효의 최적화를 통해서 전구물질인 MSG를 효과적으로 전환시킬 수 있을 것으로 사료되었다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	유청이란 무엇인가?	유청은 치즈 제조과정에서 생산되는 부산물로서 수용성 단백질, 바이타민, 무기질 등의 영양성분이 풍부하며 피부의 노화, 색소침착, 주름개선, 항균작용, 질병예방, 장내 미생물 균총 조절, 항바이러스 작용 및 항암작용 등의 기능성(Bounous, 2000; Jakubowicz 등, 2014; Kimura 등, 2014)을 가지고 있다. 반면에 유청 중에 젖당(lactose)은 젖당못견딤증을 유발함으로서 식품소 재로의 활용이 제한적이었지만, 최근 식품소재와 첨가물로 활용 가능성이 높아지면서 유제품, 제과제빵, 육제품, 기능성 식품 및 음료 등 널리 활용되고 있으며(Gallardo-Escamilla 등, 2005; Kim, 2011), 식품과 화장품소재로 이용하고자 하는 연구들이 진행되었다(Wu 등, 2015; Kim, 2015a).
	유청의 효능은?	유청은 치즈 제조과정에서 생산되는 부산물로서 수용성 단백질, 바이타민, 무기질 등의 영양성분이 풍부하며 피부의 노화, 색소침착, 주름개선, 항균작용, 질병예방, 장내 미생물 균총 조절, 항바이러스 작용 및 항암작용 등의 기능성(Bounous, 2000; Jakubowicz 등, 2014; Kimura 등, 2014)을 가지고 있다. 반면에 유청 중에 젖당(lactose)은 젖당못견딤증을 유발함으로서 식품소 재로의 활용이 제한적이었지만, 최근 식품소재와 첨가물로 활용 가능성이 높아지면서 유제품, 제과제빵, 육제품, 기능성 식품 및 음료 등 널리 활용되고 있으며(Gallardo-Escamilla 등, 2005; Kim, 2011), 식품과 화장품소재로 이용하고자 하는 연구들이 진행되었다(Wu 등, 2015; Kim, 2015a).
	B. subtilis의 생리활성 물질로 인한 용도는?	subtilis은 발효 과정 중 단백질 가수분해 효소 등이 관여하면서 기능성 펩타이드, 고분자 점질물인 γ-PGA, 혈전 및 면역력 기능 강화 효과 등의 다양한 생리활성 물질을 생산하 는 것으로 알려져 있다(Kim 등, 2010; Kwon 등, 2004). 생리활성 물질 중 고분자 점질물은 글루탐산이 중합된 γ-PGA와 과당으로 이루어진 프락탄(fructan)형태의 레반(levan)으로 구성된 수용성 고분자로서 기능성 식품 및 화장품소재로 인증받아 사용되고 있다(Lee 등, 2014; Sung 등, 2005).

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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