[논문]HPLC를 이용한 근소만 조간대 퇴적물내의 저서미세조류 현존량, 군집 및 광생리의 월 변화 분석

김은영; 안성민; 최동한; 이호원; 노재훈

doi:10.7850/jkso.2019.24.1.001

HPLC를 이용한 근소만 조간대 퇴적물내의 저서미세조류 현존량, 군집 및 광생리의 월 변화 분석
Monthly HPLC Measurements of Pigments from an Intertidal Sediment of Geunso Bay Highlighting Variations of Biomass, Community Composition and Photo-physiology of Microphytobenthos 원문보기

바다 : 한국해양학회지 = The sea : the journal of the Korean society of oceanography, v.24 no.1, 2019년, pp.1 - 17

김은영 (한국해양대학교 해양과학기술전문대학원 해양과학기술융합학과) , 안성민 (한국해양과학기술원 해양생태연구센터) , 최동한 (한국해양대학교 해양과학기술전문대학원 해양과학기술융합학과) , 이호원 (한국해양과학기술원 해양생태연구센터) , 노재훈 (한국해양대학교 해양과학기술전문대학원 해양과학기술융합학과)

초록
AI-Helper

본 연구에서는 태안반도 근소만 갯벌에서 저서미세조류(MPB)의 현존량, 군집조성 및 광생리의 월변화에 대해 알아보기 위하여 2016년 10월부터 2017년 10월까지 월 1~2회씩 총 16회에 걸쳐 갯벌 표층에 분포하는 저서미세조류 색소를 HPLC (High performance liquid chromatography)를 이용 분석하였다. 갯벌 표층 1 cm 깊이에 분포하는 저서미세조류의 광합성 색소 중 현존량의 지표로 사용되는 총 chlorophyll a (TChl a) 농도는 연중 40.4~218.9 mg m-2의 범위를 보였다. 2월 24일에 최대값이 나타났고 3월에도 높은 값을 보인 뒤 이후 감소하였다. 저서미세조류의 현존량은 동계에 높고 하계에 낮은 값을 나타냈다. Phaeophorbide a 농도의 월별 변동을 통해 동계에 상위 포식자의 낮은 포식압이 저서미세조류 동계번성에 일부 기여한 것으로 사료된다. 또한 주요지시색소를 이용한 저서미세조류 군집조성의 분석결과 저서규조류의 지시색소인 fucoxanthin의 농도가 연중 가장 높게 나타났다. Chlorophyll b(녹조류), peridinin(와편모조류)을 제외한 대부분의 지시색소의 농도는 동계에 증가하였으나, fucoxanthin의 농도 증가율이 가장 높아 fucoxanthin을 제외한 TChl a에 대한 주요지시색소의 상대비는 동계에 감소하는 경향이 있었다. 형광광도계와 산소미세전극을 이용하여 측정한 퇴적물 내 Chl a와 산소 농도의 연직분포 특성은 퇴적층 표면에서 깊이가 깊어질수록 Chl a 값과 산소 농도가 함께 감소하는 경향을 보였고, 동계로 갈수록 이런 경향이 더욱 뚜렷하게 나타났다. 하지만 5~7월의 Chl a 농도는 다른 기간에 비해 12 mm까지 연직으로 유사하게 나타났으나, 5월의 산소 농도 분포는 1 mm 이하에서 급격하게 감소하였다. 같은 시기에 phaeophorbide a 농도가 증가하는 것으로 보아 저서동물의 포식활동에 의한 산소 소비량이 증가하였을 가능성이 있으며, 저서동물의 생물교란에 의해 저서미세조류의 세포가 아래로 옮겨진 것으로 추측된다. 한편, 저서미세조류의 광적응의 지표로 사용되는 diadinoxanthin (DD)과 diatoxanthin (DT)로 얻은 상대적인 비(DT/(DD+DT))는 10월에서 3월로 갈수록 감소하며, 5월에는 증가하는 것으로 볼 때, 월별로 Xanthophyll cycle의 활성 정도에 차이가 있었음을 알 수 있었다.

Abstract ▼ AI-Helper

In this study, the surveys were carried out from October (2016) to October (2017) along the tidal flat of Geunso Bay, Taean Peninsula of the western edge of Korea. The sampling trips were carried out for a total of 16 times, once or twice a month. In order to investigate the monthly variation of the microphytobenthos (MPB) biomass, community composition and photo-physiology were analyzed by HPLC (High performance liquid chromatography). The total chlorophyll a (TChl a) concentrations used as an indicator of biomass of MPB in the upper 1 cm sediment layer ranged from 40.4 to $218.9mg\;m^{-2}$ throughout the sampling period. TChl a concentrations showed the maximum level on $24^{th}$ of February and remained high throughout March after which it started to declined. The biomass of MPB showed high values in winter and low values in summer. The monthly variations of Phaeophorbide a concentrations suggested that the low grazing intensity of the predator in the winter may have partly attributed to the MPB winter blooming. As a result of monthly variations of the MPB community composition using the major marker pigments, the concentrations of fucoxanthin, the marker pigment of benthic diatoms, were the highest throughout the year. The concentrations of most of the marker pigments except for chlorophyll b (chlorophytes) and peridinin (dinoflagellates) increased in winter. However, the concentrations of fucoxanthin increased the highest, and the relative ratios of the major marker pigments to TChl a except fucoxanthin decreased during the same period. The vertical distribution of Chl a and oxygen concentrations in the sediments using a fluorometer and an oxygen micro-optode Chl a concentrations decreased with oxygen concentrations with increasing depth of the sediment layers. Moreover, this tendency became more apparent in winter. The Chl a was uniformly vertical down to 12 mm from May to July, but the oxygen concentration distribution in May decreased sharply below 1 mm. The increase in phaeophorbide a concentration observed at this time is likely to be caused by increased oxygen consumption of zoobenthic grazing activities. This could be presumed that MPB cells are transported downward by bioturbation of zoobenthos. The relative ratios (DT/(DD+DT)) obtained with diadinoxanthin (DD) and diatoxanthin (DT), which are often used as indicators of photo-adaptation of MPB, decreased from October to March and increased in May. This indicated that there were monthly differences in activity of Xanthophyll cycle as well.

주제어

표/그림 (10)

그림 Fig. 1. Location of tidal flat at the Geunso Bay and sampling site (red point).
표 Table 1. HPLC column and solvent system (Zapata et al., 2000)
그림 Fig. 2. Monthly variation of the total chlorophyll a and phaeophorbide a concentrations from Oct. 2016 to Oct. 2017 in Geunso Bay tidal flat.
표 Table 2. List of sediment chlorophyll contents (modified from MacIntyre et al.(1996)). The number displayed in the duration column indicates the number of months measured, and the survey was conducted once a month. The contents in brackets in the chlorophyll a content column mean the average value of chlorophyll a content
표 Table. 3. The Average concentration of phytosynthetic pigments analyzed by HPLC and The ratio of accessory pigments to total chlorophyll a in Geunso Bay tidal flat
그림 Fig. 3. Monthly variation of marker pigments concentrations from Oct. 2016 to Oct. 2017 in Geunso Bay tidal flat.
그림 Fig. 4. Monthly variation of ratios of marker pigments to total chlorophyll a from Oct. 2016 to Oct. 2017 in Geunso Bay tidal flat.
그림 Fig. 5. Monthly variation of vertical chlorophyll a contents profile from Oct. 2016 to Oct. 2017 in Geunso Bay tidal flat.
그림 Fig. 6. Oxygen profiles obtained from Geunso Bay tidal flat.
그림 Fig. 7. Monthly variation of DT/(DD+DT) relative ratios from Oct. 2016 to Oct. 2017 in Geunso Bay tidal flat. Abbreviations: DD=diadinoxanthin; DT=diatoxanthin.

AI 본문요약
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* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

본 연구의 목적은 근소만에 서식하는 저서미세조류의 월별 현존량과 강 수준의 군집조성의 변동에 대해 조사하고, 저서미세조류의 월별 연직분포 양상과 광보호 색소를 이용한 광적응의 월별 특성에 대해 알아보는 것이다.

제안 방법

2016년 10월부터 2017년 10월까지 근소만에서 각 보조색소(accessory pigment)별 연 평균 농도를 구했다(Table 3). HPLC로 분석한 색소는 총 22개이다.
퇴적층 내 Chl a 연직분포를 측정하기 위해 조사위치에서 채취해 온 1개의 코어를 퇴적물 표면부터 2 mm 단위로 총 14 mm까지 잘랐다. 2017년 2월 1일과 7월 26일 자료는 시료채집을 하지 않아 1년 간 총 14회 조사했다. Chl a 퇴적물 시료는 -45℃ 에서 8~10시간 동안 동결 건조한 뒤Turner 10-AU fluorometer (Turner Designs, USA)로 Chl a을 측정했다.
HPLC 분석 시에는 추출된 시료 1 mL에 water packing을 위해 HPLC 등급 water (J.T.Baker, USA) 400 μL를 혼합하였으며, 분석 결과의 검증을 위해 internal standard(canthaxanthin) 50 μL을 투입하였다.
본 연구에서는 Oxygen Microoptode (Opto-MR, Unisense, Denmark)을 이용해 퇴적층 내 산소 농도도 함께 측정하였다. Oxygen Microoptode는 field Motor (Unisense, Denmark)에 연결된 In Situ Stand(IS19, Unisense, Denmark)를 이용해 햇빛을 바라보도록 설치하여 그림자에 의한 값의 변동이 없도록 하였고, 센서는 퇴적물 표면에서 수직이 되게 고정하였다. 자료는 50~100 μm 간격으로 3 mm 깊이 이상, 산소 농도 변화가 크게 없을 때까지, 1시간 간격으로 측정되었다.
데이터는 Field Microsensor Multimeter (Unisense, Denmark)에 저장되었다. PAR (photosynthetic active radiation)는 LI-190R quantameter와 LI-1400 data logger (LI-COR, USA)를 이용하여 측정하였다.
a), α-carotene (α-Car), β-carotene (β-Car), 19‘-butanoyloxyfucoxanthin (But-fuco), 19‘-hexanoyloxyfucoxanthin (Hex-fuco), fucoxanthin (Fuco), diatoxanthin (Diato), diadinoxanthin (Diadino), peridinin (Perid), neoxanthin (Neo), prasinoxanthin (Pras), violaxanthin (Viola), alloxanthin (Allo), zeaxanthin (Zea), lutein (Lut); (DHI co., Denmark))와 retention time을 비교하여 결정하였다.
Injection volume은 200 μL으로 설정하였다. detector는 photodiade array detector(PAD)를 사용하여 정성 및 정량 분석하였다. Chromatogram의 peak에 대한 동정은 22개 표준색소(chlorophyll a (Chl a), chlorophyll b (Chl b), chlorophyll c₂ (Chl c₂), chlorophyll c₃ (Chl c₃), divinyl chlorophyll a (DV Chl a), chlorophyllide a (Childe a), phaeophytin a (Phytin a), phaeophorbide a (Phide a), α-carotene (α-Car), β-carotene (β-Car), 19‘-butanoyloxyfucoxanthin (But-fuco), 19‘-hexanoyloxyfucoxanthin (Hex-fuco), fucoxanthin (Fuco), diatoxanthin (Diato), diadinoxanthin (Diadino), peridinin (Perid), neoxanthin (Neo), prasinoxanthin (Pras), violaxanthin (Viola), alloxanthin (Allo), zeaxanthin (Zea), lutein (Lut); (DHI co.
Sub-sample들은 모두 HPLC 분석 전까지 초저온 냉동고(-80℃)에 보관하였다. 광합성 색소의 정량분석을 위해 시료 모두 -45℃ 에서 8~10시간 동안 FDU-1200 동결 건조기(EYELA, Japan)를 이용하여 동결 건조하였다. 퇴적물 시료는 동결 건조 과정을 거치면 추출 효율이 극대화된다(Buffan-Dubau and Carman, 2000).
산소미세전극(oxygen microoptodes)은 미세조류의 생식 환경을 변형시키지 않고 산소 농도를 측정하므로 1990년대 이후 광범위하게 이용되고 있다(KIOST, 2010). 본 연구에서는 Oxygen Microoptode (Opto-MR, Unisense, Denmark)을 이용해 퇴적층 내 산소 농도도 함께 측정하였다. Oxygen Microoptode는 field Motor (Unisense, Denmark)에 연결된 In Situ Stand(IS19, Unisense, Denmark)를 이용해 햇빛을 바라보도록 설치하여 그림자에 의한 값의 변동이 없도록 하였고, 센서는 퇴적물 표면에서 수직이 되게 고정하였다.
4 cm의 아크릴코어를 사용하여, 총 3개의 퇴적물 시료를 채집하였다. 시료의 균질화를 위해 각 코어는 상부 1 cm를 잘라 하나의 conical tube에 모은 후, 혼합하여 시료의 용도에 따라 sub-sampling하였다. Sub-sample들은 모두 HPLC 분석 전까지 초저온 냉동고(-80℃)에 보관하였다.
자료는 50~100 μm 간격으로 3 mm 깊이 이상, 산소 농도 변화가 크게 없을 때까지, 1시간 간격으로 측정되었다.
퇴적층 내 Chl a 연직분포를 측정하기 위해 조사위치에서 채취해 온 1개의 코어를 퇴적물 표면부터 2 mm 단위로 총 14 mm까지 잘랐다. 2017년 2월 1일과 7월 26일 자료는 시료채집을 하지 않아 1년 간 총 14회 조사했다.

대상 데이터

2016년 10월부터 2017년 10월까지 근소만에서 각 보조색소(accessory pigment)별 연 평균 농도를 구했다(Table 3). HPLC로 분석한 색소는 총 22개이다. Chl c3 와 DV Chl a는 검출되지 않았다.
간조 시에 연구 정점에서 직경 21 mm, 길이 15.4 cm의 아크릴코어를 사용하여, 총 3개의 퇴적물 시료를 채집하였다. 시료의 균질화를 위해 각 코어는 상부 1 cm를 잘라 하나의 conical tube에 모은 후, 혼합하여 시료의 용도에 따라 sub-sampling하였다.
본 연구는 충남 태안반도에 위치한 근소만(126.1799°E, 36.7367°N)에서 간조 시에 2016년 10월부터 2017년 10월까지 총 16회에 걸쳐 실시하였다(Fig. 1).
퇴적물 시료는 동결 건조 과정을 거치면 추출 효율이 극대화된다(Buffan-Dubau and Carman, 2000). 식물플랑크톤 광합성 색소의 추출을 위한 용매로는 95% 아세톤(Junsei, Japan)을 이용하였으며, cell의 파쇄를 위하여 5분간 초음파 분쇄(sonication)를 실시한 후, 24시간 동안 냉암소(-2℃)에 보관하였다. 추출된 시료는 syringe filter (PTFE, 0.
연구정점에서의 저서미세조류 군집은 규조류, 펠라고조류, 남세균, 와편모조류, 녹조류, 유글레나류, 황색편모조류, 착편모조류, 그리고 은편모조류로 구성되어 있었다. Chl b, Perid을 제외한 대부분의 지시색소들의 농도는 동계에 증가하는 경향이 있었으나, Chl b 농도는 동계에 가장 낮았다가 추계에 가장 높았고, Perid는 5월인 춘계에 가장 높았다.

이론/모형

광합성 색소 분석에는 Shimadzu LC-20A HPLC system (Shimadzu, Japan)이 이용되었으며, 전체적인 운용 조건들은 Zapata et al.(2000)에 제시된 방법에 따랐다(Table 1). HPLC 분석 시에는 추출된 시료 1 mL에 water packing을 위해 HPLC 등급 water (J.
Chl a 퇴적물 시료는 -45℃ 에서 8~10시간 동안 동결 건조한 뒤Turner 10-AU fluorometer (Turner Designs, USA)로 Chl a을 측정했다. Chl a 측정 시 산을 첨가한 산화형광법을 사용했다(EPA, 1997). 10% HCL 65 μl 첨가 전, 후의 형광값을 이용하여 Chl a 농도값을 산출하며, 그 식은 아래와 같다(식 (5)).
, Denmark))와 retention time을 비교하여 결정하였다. 다음의 색소정량식은 Woods Hole(1997)에 따라 계산하였으며 이 중에서 Response Factor (RF)값은 DHI 사에서 표기된 표준색소 농도를 참고하여구하였다(식 (1)).

성능/효과

13로 나타났다. (DT/(DD+DT))는 10월에서 3월로 갈수록 감소하며, 2월에 가장 낮고, 5월부터 증가하여 7월까지 높은 값을 유지했다(Fig. 7). Tagus 하구역에서도 월별로 관측한 저서미세조류의 DT/(DD+DT) 상대비 범위는 본 연구결과와 유사하였고, 2월에 가장 낮고, 5월에 증가하는 변동양상도 일치하였다(van Leeuwe et al.
Viola/TChl a의 비는 적지만 연중 검출되는 것으로 보아 Fuco와 Viola를 주요색소로 가지는 황색편모조류(chrysophytes)가 출현하고 있는 것으로 생각된다. Hex-fuco와 Allo는 각각 착편모조류(prymnesiophytes)와 은편모조류(cryptophytes)의 지시색소로 근소만에서 연중 낮은 비율로 출현함을 확인할 수 있었다.
Chl c3 와 DV Chl a는 검출되지 않았다. TChl a에 대한 보조색소들의 상대비를 살펴보면, Fuco가 보조색소 중에서 가장 큰 비율인 0.30으로 나타났고, 그다음으로 상위포식자에 의한 포식압의 지표색소로 사용되는 Phide a와 광보호색소인 Diadino 순으로 검출되었다.
계절별 변화를 살펴보면, 근소만에서 TChl a농도는 동계에 최대치를 보였고, 춘계부터 감소하다가 추계에 서서히 증가하였다. 일반적으로 북반구 온대지역의 경우, 수층에 존재하는 식물플랑크톤의 현존량은 동계에 주로 낮은 농도를 보이지만, 퇴적층에 사는 저서미세조류는 보통 동계에 높은 현존량을 보인다(Colijn and de Jonge, 1984; de Jonge and Colijn, 1994).
관측기간 동안 근소만의 TChl a 농도의 범위는 타 지역 결과에 근소만 연구정점에서 2016년 10월부터 2017년 10월까지 퇴적물 표면부터 1 cm까지의 TChl a 농도는 40.4~218.9 mg m-2의 범위를 보였고 평균 농도는 98.2±48.6 mg m-2 였다(Fig. 2).
4에는 TChl a에 대한 지시색소별 기여도의 월별 변동을 나타내었다. 규조류(Bacillariophytes)의 주요색소인 Fuco의 TChl a에 대한 상대비는 연중 가장 높은 값으로 나타났다. 한편, Fuco를 제외한 나머지 보조색소들의 TChl a에 대한 상대비는 모두 0.
근소만 퇴적물 내 산소 농도 분포는 퇴적물 표면으로부터 0~1 mm 구간에서 전체 산소 농도 중 71.5±12.6%로 집중적으로 나타났다(Fig. 6).
근소만에서 측정한 DD+DT에 대한 DT의 상대비(DT/(DD+DT))의 범위는 0.21~0.66, 평균은 0.41±0.13로 나타났다.
Fuco를 제외한 모든 색소들의 TChl a에 대한 상대비는 동계에 감소하는 것으로 나타났다. 따라서 녹조류와 와편모조류를 제외한 분류군의 현존량은 동계에 다소 증가하지만, 그 중에서도 저서규조류의 현존량 증가가 동계번성에 가장큰 영향을 주었을 것으로 예상된다. 본 연구 결과에 나타난 것과 같이 대부분의 선행연구에서도 갯벌 퇴적층에서 저서규조류의 지시색소인 Fuco가 연중 가장 높은 농도로 나타났다.
, 1997). 또한 2월 24일 자 퇴적물 코어 시료는 형광광도계와 함께 HPLC 분석을 함께 수행하였는데, TChl a와 Fuco의 연직 농도 분포가 매우 높은 상관관계(R²=0.99)를 보였고, 관측 깊이의 모든 층에서 보조색소 중 Fuco 농도가 가장 높게 관측되었다(Data not shown). 기존 문헌에 따르면, 퇴적물 최상부에서 발견 되는 저서규조류의 반 이상이 진흙착생생물(motile epipelon)이며, 2~10 mm 깊이에 있는 저서규조류의 90~97%가 사생생물(episammon)이라고 한다(Kingston, 1999, 2002; Du et al.
펠라고조류(pelagophytes)의 보조색소인 But-fuco의 TChl a에 대한 상대비는 11월, 1월과 5월에 증가하는 추세를 보였다. 또한 각각 남세균(cyanobacteria)와 와편모조류(dinoflagellates)의 주요색소인 Zea/TChl a와 Perid/TChl a의 비율은 5월과 6월에 최대값이 나타났다. 녹조류(chlorophytes)와 유글레나류(euglenophytes) 가 주요색소로 가지고 있는 Chl b/TChl a와 Lut/TChl a의 비율은 2016년 10월에 최대, 2월 15일에 최소, 하계 증가로 유사한 변동양상을 보였다.
따라서 녹조류와 와편모조류를 제외한 분류군의 현존량은 동계에 다소 증가하지만, 그 중에서도 저서규조류의 현존량 증가가 동계번성에 가장큰 영향을 주었을 것으로 예상된다. 본 연구 결과에 나타난 것과 같이 대부분의 선행연구에서도 갯벌 퇴적층에서 저서규조류의 지시색소인 Fuco가 연중 가장 높은 농도로 나타났다. 또한 Perid가 온도가 높아지면서 TChl a에 대한 상대기여도가 다소 증가하는 점은 타 지역의 결과와 유사한 경향을 보였다(Barranguet et al.
본 조사에서는 춘·하계에 속하는 2017년 5~7월이 다른 기간에 비해 Chl a가 더 깊은 수심까지 분포하였고(Fig 5), 특히 5월은 12 mm 깊이까지 연직으로 균일하게 Chl a 농도가 높았으나, 5월의 산소 농도 분포는 1 mm 이하에서 급격하게 감소하였다.
, 1996; Hwang and Cho, 2005). 산소 농도 분포 깊이는 동계인 1월과 2월에 약4.5 mm로 최대값을, 5월에 약1.5 mm로 최소값을 보여 시간적인 변동이 있음을 확인했다. 장화리와 동막리 갯벌, 인천 북항 갯벌의 경우에도 산소 농도 분포 깊이가 이른 하계에 낮아지는 경향이 있었고, 그 원인을 하계 기간 저서 미생물의 활발한 활동으로 보았다(Hwang and Cho, 2005).

후속연구

그러나 퇴적물 내 산소 농도에 영향을 주는 요인에는 퇴적물 입도와 퇴적물 유광층, 및 저서 미세조류의 광합성 저서미세생물의 산소 호흡 등 여러 가지 요인들이 복합적으로 영향을 미친다(Hwang and Cho, 2005). 따라서 저서미세조류의 연직 이동에 의한 산소증감을 확인하기 위해서는 후속연구에서 Low temperature scanning electronmicroscopy (LTSEM)을 이용한 시간별 퇴적물 표층 내의 저서미세조류의 관측(Jesus et al., 2005)과 여러 이화학적 요인들을 함께 측정해야 할 필요가 있는 것으로 사료된다.
근소만에서 2016년 10월에 (DT/(DD+DT)) 상대비가 가장 높게 나타났던 것은 흐린날씨탓에 오후 약1~2시경 PAR값이 213~216 μmol m^-2s^-1으로 낮은 값을 보이다가 3시경에 다시 714 μmol m^-2s^-1 로짧은 시간 PAR값이 높아진 탓에 DT의 양이 일시적으로 증가한 결과로 추정된다. 이러한 가능성은 추후에 근소만에서 시간별 광량에 따른 DT와 DD의 상대비 변화에 대한 추가적인 조사를 통해 확인할 필요가 있다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	저서미세조류의 구성은?	퇴적물 상부층에 서식하는 저서미세조류(Microphytobenthos, MPB)는 하구역 일차생산력의 50%까지 기여하는 중요한 일차생산자이다(Underwood and Kromkamp, 1999). 저서미세조류는 저서성 규조류, 남조류, 녹조류, 유글레나, 광합성 박테리아 등으로 구성되고, 퇴적물 식자의 먹이원인 동시에, 수층으로 재부유 시 부유물 식자의 중요한 먹이원이다(MacIntyre et al., 1996; Sullivan and Moncreiff, 1990; Heip et al.
	현미경을 이용한 저서미세조류 분석 방법의 단점은?	현미경을 이용한 저서규조류 군집 연구에는 인천연안 갯벌(Shim and Joe, 1984), 금강하구 조간대(Kim and Cho, 1985), 만경 동진 갯벌(Oh, 1990) 등에서 수행되었다. 하지만 현미경을 이용한 분석 방법은 실험자의 전문성과 많은 시간이 요구되므로 최근에는 HPLC (High performance liquid chromatography)를 이용한 저서미세조류 군집 연구가 활발히 진행되고 있다. HPLC는 시료 내 각 지시색소의 정량적 분석을 가능케 하였으며, 따라서 주요색소(chlorophyll a)를 통해 현존량을 추정하거나, 지시색소(marker pigments)를 이용하여 강(class) 수준의 군집조성을 파악할 수 있다(Lee et al.
	HPLC의 섭식강도 파악 측면에서의 장점은?	, 2009). 뿐만 아니라 chlorophyll 분해산물을 통해 저서미세조류 군집의 생리적 상태와 상위포식자에 의한 섭식강도(grazing intensity) 파악에도 응용할 수 있어 활용 가치가 높다(Bidigare et al., 1986; Burkill et al.

참고문헌 (81)

An, S.M., D.H. Choi, H. Lee and J.H. Noh, 2017. Identification of benthic diatoms isolated from the eastern tidal flats of the Yellow Sea: Comparison between morphological and molecular approaches. Plos one, 12(6): e0179422.

상세보기
An, S.M., D.H. Choi, H. Lee, J.H. Lee and J.H. Noh, 2018. Next-generation sequencing reveals the diversity of benthic diatoms in tidal flats. Algae, 33(2): 167-180.

원문보기 상세보기
Admiraal, W., 1984. The ecology of estuarine sediment inhabiting diatoms. Prog. phycol. Res., 3: 269-322.
Barranguet, C., P.M.J. Herman and J.J. Sinke, 1997. Microphytobenthos biomass and community composition studied by pigment biomarkers: importance and fate in the carbon cycle of a tidal flat. J. Sea. Rea., 38: 59-70.

상세보기
Bebout, B.M. and F. Garcia-Pichel, 1995. UV B-induced Vertical Migrations of Cyanobacteria in a Microbial Mat. Environ. Microbiol., 61: 4215-4222.
Bidigare, R.P., T.J. Frank, C. Zastrow and J.M. Brooks, 1986. The distribution of algal chlorophylls and their degradation products in the Southern Ocean. Deep-Sea Res., 33: 923-937.
Brown, B.E., R.P. Dunne, M.E. Warner, I. Ambarsari, W.K. Fitt, W. Gibb and D.G. Cummings, 2000. Damage and recovery of Photosystem II during a manipulative field experiment on solar bleaching in the coral Goniastrea aspera. Mar. Ecol. Prog. Ser., 195: 117-124.

상세보기
Buffan-Dubau, E. and K.R. Carman, 2000. Extraction of benthic microalgal pigments for HPLC analyses. Mar. Ecol. Prog. Ser., 204: 293-297.

상세보기
Burkill, P.H., R.F.C Mantoura, C.A. Llewellyn and N.J.P. Owens, 1987. Microzooplankton grazing and selectivity of phytoplankton in coastal waters. Mar. Biol., 93: 581-590.

상세보기
Cadee, G.C. and J. Hegeman, 1974. Primary production of the benthic microflora living on tidal flats in the Dutch Wadden Sea. Neth. J. Sea Res., 8: 260-291.

상세보기
Chan, A.T., 1978. Comparative physiological study of marine diatoms and dinoflagellates in relation to irradiance and cell size. I. Growth under continuous light. J Phycol., 14: 396-402.

상세보기
Choi, Y.H., Y.S. Choi, Y.S. Cho, Y.T. Kim and S.R. Jeon, 2016. A study on the habitat suitability considering survival, Growth, Environment for Ruditapes philippinarum in Geunso Bay (Pado and Beopsan). J. Korean. Soc. Mar. Environ. Saf., 22: 723-730.

원문보기 상세보기
Colijn, F. and V.N. de Jonge, 1984. Primary production of microphytobenthos in the Ems-Dollard Estuary. Mar. Ecol. Prog. Ser., 14: 185-196.

상세보기
Consalvey, M, D.M. Paterson and G.J.C Underwood, 2004. The ups and downs of life in a benthic biofilm: Migration of benthic diatoms. Diatom Res., 19: 181-202.

상세보기
de Jonge, V.N. and F. Colijn, 1994. Dynamics of microphytobenthos biomass in the Ems estuary. Mar. Ecol. Prog. Ser., 104: 185-196.

상세보기
Davis, M.W. and C.D. Mcintire, 1983. Effects of physical gradients on the production dynamics of sediment-associated algae. Mar. Ecol. Prog. Ser., 13: 103-114.

상세보기
Demers, S., S. Roy, R. Gagnon and C. Vignault, 1991. Rapid light-induced changes in cell fluorescence and in xanthophyll-cycle pigments of Alexandrium excavatum (Dinophyceae) and Thalassiosira pseudonana (Bacillariophyceae): a photo-protection mechanism. Mar. Ecol. Prog. Ser., 76: 185-193.

상세보기
Denis, L., F. Gevaert and N. Spilmont, 2012. Microphytobenthic production estimated by in situ oxygen microprofiling: short-term dynamics and carbon budget implications. J. Soils sediments, 12: 1517-1529.

상세보기
Du, G.Y., M. Son, S. An and I.K. Chung, 2010. Temporal variation in the vertical distribution of microphytobenthos in intertidal flats of the Nakdong River esturary, Korea. Estuar. Coast. Shelf Sci., 86: 62-70.

상세보기
Elisabeth, A. and J.M. Bernhard, 1995. Vertical migratory response of benthic foraminifera to controlled oxygen concentrations in an experimental mesocosm. Mar. Ecol. Prog. Ser., 116: 137-151.

상세보기
EPA, 1997. Method 445.0. In vitro determination of chlorophyll a and pheophytin a in marine and freshwater algae by fluorescence. 8-9 pp.
Falkowski, P.G. and T.G. Owens, 1980. Light-shade adaptation: 2 strategies in marine phytoplankton. Plant Physiol., 66: 592-595.

상세보기
Forster, R.M. and J.C. Kromkamp, 2004. Modelling the effects of chlorophyll fluorescence from subsurface layers on photosynthetic efficiency measurements in microphytobenthic algae. Mar. Ecol. Prog. Ser., 264: 9-22.
Frank, H.A. and R.J. Cogdell, 1996. Carotenoids in photosynthesis. Photochem. Photobiol., 63: 257-364.

상세보기
Gould, D.M. and E.D. Gallagher, 1990. Field measurements of specific growth rate, biomass, and primary production of benthic diatoms of Savin Hill Cove, Boston. Limnol. Oceanogr., 35: 1757-1770.

상세보기
Goto, N., O. Mitamura and H. Terai, 2000. Seasonal variation in primary production of microphytobenthos at the Isshiki intertidal flat in Mikawa Bay. Limnol. (Japanese), 1: 133-138.

상세보기
Halldal, P., 1970. The photosynthetic apparatus of microalgae and its adaptation to environmental factors. In: Photobiology of microorganisms, edited by Halldal, P., Wiley, New York, 17-56 pp.
Hay, S.I., T.C. Maitland and D.M. Paterson, 1993. The speed of diatom migration through natural and artificial substrata. Diatom Res., 8: 371-384.

상세보기
Heip, C.H.R., N.K. Goosen, P.M.J. Herman, J. Kromkamp, J.J. Middelburg and K. Soetaert, 1995. Production and consumption of biological particles in temperate tidal estuaries. Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev., 33: 1-149.
Hejdukova, E., 2016. Tolerance of pennate diatoms (Bacillariophyceae) to experimental freezing: comparison of polar and temperate strains. Ph.D. Thesis, Charles University, Czech, 13-14, 43-44 pp.
Hwang, C.Y. and B.C. Cho, 2005. Measurement of net photosynthetic Rates in intertidal flats of Ganghwa-gun and Incheon north harbor using oxygen microsensors. J. Korean Soc. Ocean., 10: 31-37.
Jesus, B., V. Brotas, M. Marani and D.M. Paterson, 2005. Spatial dynamics of microphytobenthos determined by PAM fluorescence. Estuar. Coast. Shelf Sci., 68: 547-556.
Jonsson, B., K. Sundback and C. Milsson, 1994. An upright life-form of an epipelic motile diatom: on the behavior of Gyrosigma balticum. Eur. J. Phycol., 29: 11-15.

상세보기
Kim, D.S. and K.H. Kim, 2008. Tidal and seasonal variations of nutrients in Keunso bay, the yellow sea. Ocean Polar Res., 30(1): 1-10.
Kim, J.H. and K.J. Cho, 1985. The Physico-chemical properties of sediment, the species composition and biomass of benthic diatoms in the intertidal zone of Kum river estuary. J. Ecol. Environ., 8: 21-29.
Kim, J.N., Y.J. Choi, K.H. Im, K.H. Choi and C.W. Ma, 2005. Species composition and seasonal variation of decapod crustacean assemblage in Hampyeong Bay. Korea. J. Kor. Fish Soc., 38(1): 20-28.
Kingston, M.B. and J.S. Gough, 2009. Vertical migration of a mixed-species Euglena (Euglenophyta) assemblage inhabiting the high-intertidal sands of Nye beach, Oregon. J. Phycol., 45: 1021-1029.

상세보기
KIOST, 2010. Studies on sediments waters and biota to understand major environmental factors in rehabilitation of degraded tidal flats. Korean Institute of Ocean Science and Technology. BSPE98462-2253-5. 436 p.
Krembs, C., H. Eicken and J.W. Deming, 2011. Exopolymer alteration of physical properties of sea ice and implications for ice habitability and biogeochemistry in a warmer Arctic. PNAS, 108: 3653-3658.

상세보기
Kromkamp, J.C., C. Barranguet and J. Peene, 1998. Determination of microphytobenthos PSII quantum efficiency and phytosynthetic activity by means of variable chlorophyll fluorescence. Mar. Ecol. Prog. Ser., 162: 45-55.

상세보기
Kuhl, M., R.N. Glud, H. Ploug, N.B. Ramsing, 1996. Microenvironmental control of photosynthesis and photosynthesis-coupled respiration in an epilithic cyanobacterial biofilm. J. Phycol., 32: 799-812.

상세보기
Larras, F., B. Montuelle, F. Rimet, N. Chevre, and A.Bouchez, 2014. Seasonal shift in the sensitivity of a natural benthic microalgal community to a herbicide mixture: impact on the protective level of thresholds derived from species sensitivity distributions. Ecotoxicology, 23(6): 1109-1123.

상세보기
Lee, H.Y., 2013. Diversity and biomass of benthic diatoms in Hampyeong bay tidal flats. Korean J. Environ. Biol., 31(4): 295-301.

원문보기 상세보기
Lee, I.G., S.M. Boo and S.H. Lee, 2004. Diversity and system of Microalgae. Life Science Publishing Co., Lehi, 66 pp.
Lee, Y.W., 2001. Studies on pigment analysis of microphytobenthos by HPLC in sediment of Gomso Bay, Korea. M.S. Thesis, Pukyong National University, Busan, 56-69 pp.
Lee, Y.W., E.J. Choi, Y.S. Kim and C.K. Kang, 2009. Seasonal variations of microphytobenthos in sediments of the estuarine muddy sandflat of Gwangyang Bay: HPLC Pigment Analysis. J. Korean Soc. Oceanogr., 14: 48-55.
Lukatelich, R.J. and A.J. McComb, 1986. Distribution and abundance of benthic microalgae in a shallow southwestern Australian esturarine system. Mar. Ecol. Prog. Ser., 27: 287-297.

상세보기
MacIntyre, H.L., R.J. Geider and D.C. Miller, 1996. Microphytobenthos: The ecological role of the "secret garden" of unvegetated, shallow-water marine habitats. 1. Distribution, abundance and primary production. Estuar. Coast., 19: 186-201.

상세보기
Meyer, A.A., M. Tackx and N. Daro, 2000. Xanthophyll cycling in Phaeocystis globosa and Thalassiosira sp.: a possible mechanism for species succession. J. Sea Res., 43: 273-384.
Min, W.G., D.S. Kim and J.H. Le, 2006. Community structure and spatial variation of meiobenthos associated with and artificial structure. J. Kor. Fish Soc., 39: 223-230.
NASA, 2012. The Fifth SeaWiFS HPLC Analysis Round-Robin Experiment (SeaHARRE-5). NASA ocean color paper NASA/TM-2012-217503, 12 p.
Nielsen, L.P., P.B. Christensen and N.P. Revsbech, 1990. Denitrification and photosynthesis in stream sediment studied with microsensors and whole-core techniques. Limnol. Oceanogr., 35: 1135-1144.

상세보기
Nowicki, B.I. and S.W. Nixon, 1985. Benthic community metabolism in a coastal lagoon ecosystem. Mar. Ecol. Prog. Ser., 22: 21-30.

상세보기
Oh, S.H., 1990. Environmental characteristics and diatom communities on the Mangyung-Dongjin Tidal flat, West coast of Korea. M.D. Thesis, Seoul National University, Seoul, 99 p.
Oh, S.J., C.H. Moon and M.O. Park, 2004. HPLC analysis of biomass and community composition of microphytobenthos in the Saemankeum tidal flat, west coast of Korea. J. Kor. Fish Soc., 37: 215-225.
Olaizola, M. and H.Y. Yamamoto, 1994. Short-term response of the diadinoxanthin cycle and fluorescence yield to high irradiance in Chaetoceros-muelleri (Bacillariophyceae). J. phycol., 20: 606-612.
Perkins, R.G., K. Oxborough, A.R.M. Hanlon, G.J.C. Underwood and N.R. Baker, 2002. Can chlorophyll fluorescence be used to estimate the rate of photosynthetic electron transport within microphytobenthic biofilm? Mar. Ecol. Prog. Ser., 228: 47-56.

상세보기
Perry, M.J., M.C. Talbot and S.A. Alberts, 1981. Photoadaptation in marine phytoplankton: response of the photosynthetic unit. Mar Biol., 62: 91-101.

상세보기
Plante-Cuny, M.R. and A. Bodoy, 1987. Biomasse et production primarie du phytoplankton et du microphytobenthos de deux biotopes sableux (Golfe de Fos, France). Oceanology Acta.,10: 223-237.
Prezelin, B.B. and B.M. Sweeney, 1978. Photoadaptation of photosynthesis in Gonyaulax polyedra. Mar. Biol., 48: 17-35.
Pesce, S., I. Batisson, C. Bardot, C. Fajon, C. Portelli, B. Montuelle and J. Bohatier, 2009. Response of spring and summer riverine microbial communities following glyphosate exposure. Ecotoxicol. Environ. Saf., 72(7): 1905-1912.

상세보기
Raven, P.H., P.F. Evert and S.E. Eichorn, 1992. Biology of Plants. Worth Publishers, New York, 791 pp.
Riper, D.M., T.G. Owens and P.G. Falkowski, 1979. Chlorophyll turnover in Skeletonema costatum, a marine plankton diatom. Plant Physiol., 64: 49-54.

상세보기
Roy, S., C. Llewelly, E.S. Egeland and G. Johnsen, 2011. Phytoplankton pigments (Characterization, chemotaxonomy and Applications of Oceanography). Cambridge University Press, Cambridge, 37, 46-54 pp.
Serodio, J., J.M. da Silca, F. Catarino, 1997. Non-destructive tracing of migratory rhythms of intertidal benthic microalgae using in vivo chl-a fluorescence. J. phycol., 33: 545-553.
Shim, J.H. and B.C. Joe, 1984. Community composition of microphytobenthos living in intertidal zone near Incheon, Symposium of College of Natural science, Seoul National University, 9: 135-150.
Shin, A.Y., D.S. Kim, T.W. Kang, J.H. Oh, J.M. Lee and J.S. Hong, 2016. Seasonal fluctuation of meiobenthic fauna community at Keunso tidal flat in Taean, Korea. J. Korean soc. Ocean., 21(4): 144-157.
Sukenik, A., K.D. Wyman, J. Bennnett and P.G. Falkowski, 1987. A novel mechanism for regulating the excitation of photosystem II in a green alga. Nature Lond., 327: 704-707.

상세보기
Sullivan, M.J. and F.C. Daiber, 1975. Light, nitrogen, and phosphorous limitation of edaphic algae in a Delaware salt marsh. J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 18: 79-88.

상세보기
Sullivan, M.J. and C. Moncreiff, 1990. Edaphic algae are an important component of salt marsh food-webs: evidence from multiple stable isotope analysis, Mar. Ecol. Prog. Ser., 32: 149-159.
Sun, M.Y., R.C. Aller and C. Lee, 1994. Spatial and temporal distributions of sedimentary chloropigments as indicators of benthic processes in Long Island Sound. J. Mar. Res., 52: 149-176.
Underwood, G.J.C. and J. Kromkamp, 1999. Primary production by phytoplankton and microphytobenthos in estuaries. Adv. Ecol. Res., 29: 93-153.
van Leeuwe, M.A., V. Brotas, M. Consalvey, R.M. Forster, D. Gillespie, B. Jesus, J. Roggeveld and W.W.C. Gieskes, 2008. Photoacclimation in microphytobenthos and the role of xanthophyll pigments. Eur. J. Phycol., 43(2): 123-132.

상세보기
Varela, M. and E. Penas, 1985. Primary production of benthic microalgae in an intertidal sand flat of the Ria de Arosa, NM spain. Mar. Ecol. Prog. Ser., 25: 111-119.

상세보기
Welsh, D.T., 2000. Ecological significance of compatible solute accumulation by micro-organisms: from single cells to global climate. FEMS Microbiology Reviews, 24: 263-290.

상세보기
Woods Hole, 1997. U.S. Joint Global Ocean Flux Study, Bermuda Atlantic Time-series Study. Data Report for BATS 61-BATS 72.
Yallop, M.L., B. Winder, D.M. Paterson and L.J. Stal, 1994. Comparative structure, Primary production and biogenic stabilization of cohensive and non-cohensive marine sediments inhabited by microphytobenthos. Estuar. Coast. Shelf Sci.,39: 565-582.

상세보기
Yoo, M.H. and J.K. Choi, 2005. Seasonal distribution and primary production of microphytobenthos on an intertidal mud flat of the Janghwa in Ganghwa Island, Korea. J. Korean Soc. Ocean., 10: 8-18.
Young, A.J. and H.A. Frank, 1996. Energy transfer reactions involving carotenoids: quenching of chlorophyll fluorescence. J. Photochem. Photobiol. B: Biol., 36: 3-15.

상세보기
Yun, M.S., C.H. Lee and I.K. Chung, 2009. Influence of Temperature on the Photosynthetic Responses of Benthic Diatoms: Fluorescence Based Estimates. J. Korean Soc. Ocean., 14(2): 118-126.
Zapata, M., F. Rodriguez and L. Garrido, 2000. Separation of chlorophylls and carotenoids from marine phytoplankton: a new HPLC method using a reversed phase C8 column and pyridine-containing mobile phases. Mar. Ecol. Prog. Ser., 195: 29-45.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

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용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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