[논문]섬애약쑥 용매별 추출물의 생리활성

김동규; 강재란; 신정혜; 강민정

doi:10.5352/jls.2019.29.11.1241

섬애약쑥 용매별 추출물의 생리활성
Biological Activities of Various Solvent Extracts of Seomaeyakssuk (Artemisia argyi H.) 원문보기

생명과학회지 = Journal of life science, v.29 no.11, 2019년, pp.1241 - 1250

김동규 ((재)남해마늘연구소) , 강재란 ((재)남해마늘연구소) , 신정혜 ((재)남해마늘연구소) , 강민정 ((재)남해마늘연구소)

초록
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본 연구에서는 섬애약쑥(Artemisia argyi H.)의 생리활성 규명을 위한 연구의 일환으로 6종의 용매(butanol, chloroform, ethyl acetate, ethyl ether, hexane, methanol)로 추출하여 총 페놀화합물과 플라보노이드 함량, 항산화 및 파골세포 분화 억제 활성을 검증하였다. 섬애약쑥 용매별 추출물의 총 페놀 및 플라보노이드 화합물은 methanol 추출물에서 함량이 가장 높고 다음으로 butanol 추출물이 높으며, ethyl ether 및 hexane 추출물은 여타추출물보다 그 함량이 낮았다. ABTS 및 DPPH 라디칼 소거활성과 FRAP법에 의한 항산화력을 측정한 결과 methanol 추출물의 항산화활성이 유의적으로 가장 높았고 hexane 추출물의 활성이 유의적으로 가장 낮았다. NO 생성억제능은 비교적 저농도인 $2.5{\mu}g/ml$에서 6종 추출물 모두 확인되었으며, $20{\mu}g/ml$ 농도에서는 ethyl acetate가 가장 활성이 높고 다음으로 butanol 추출물에서 높게 측정되었다. ROS 생성 억제능은 농도 의존적으로 활성이 증가하였으며, $20{\mu}g/ml$ 농도에서 ethyl acetate 추출물과 butanol 추출물이 다른 4종의 추출물 대비 활성이 높았다. TRAP 염색을 통해 용매별 추출물들의 파골세포 분화 활성을 확인한 결과 6종 추출물 모두에서 농도 의존적으로 분화 억제 활성이 증가하였으며, butanol 추출물에서 분화 억제 활성이 가장 높았다. 이상의 결과들을 종합하여 볼 때 섬애약쑥 용매별 추출물 중 butanol 추출물이 항산화 활성과 파골세포 분화억제 활성이 모두 높기 때문에 향후 골다공증의 치료 및 예방에 있어서 유효할 것으로 추정된다.

Abstract ▼ AI-Helper

Artemisia argyi H. has been used for centuries as a traditional medicine and food supplement in Asian countries. The objective of this study was to investigate the physiological activities of Artemisia argyi H. extracts prepared by butanol, chloroform, ethyl acetate, ethyl ether, hexane, and methanol extraction. We evaluated total phenol and flavonoid content, antioxidant activity, nitric oxide (NO) and reactive oxygen species (ROS) release, and osteoclastogenesis inhibition. The total phenolic and flavonoid contents were highest in the methanol extract (49.46 mg GAE/g and 24.32 mg QE/g, respectively). The methanol extracts also had the highest antioxidant activity (DPPH and ABTS radical scavenging ability and ferric reducing antioxidant power), while the hexane extract had the lowest. The release of NO and ROS was dose-dependently decreased by pre-treatment with all solvent extracts. At the same concentrations, the ethyl acetate and butanol extracts showed higher inhibition of NO and ROS production when compared with the other extracts. The butanol extract, at a concentration of $20{\mu}g/ml$, inhibited about 89% of the activity of the osteoclast marker, tartrate resistant acid phosphatase (TRAP). These results suggest that butanol extracts of Artemisia argyi H. may be effective natural medications for the prevention and treatment of osteoporosis.

주제어

표/그림 (8)

그림 Fig. 1. Total phenol and flavonoid contents of Seomaeyakssuk (Artemisia Argyi H.) extracts with various solvent. All values are mean ± SD (n=4). ^1)A-FMeans with different superscript within the same item are significantly differ-ent by Duncan's multiple range test (p<0.05).
표 Table 1. ABTS radical scavenging activity of Seomaeyakssuk (Artemisia Argyi H.) extracts with various solvent (%)
표 Table 2. DPPH radical scavenging activity of Seomaeyakssuk (Artemisia Argyi H.) extracts with various solvent (%)
그림 Fig. 2. Cell viability of Seomaeyaksuk (Artemisia argyi H) extracts with various solvent on RAW 264.7 cells. Each bar repre-sents the mean ± SD of three repeated experiments. Control group (untreated).
표 Table 3. Ferric reducing antioxidant power (FRAP) of Seo-maeyakssuk (Artemisia Argyi H.) extracts with various solvent (FeSO₄·7H₂O eq μM)
그림 Fig. 3. Effects of Seomaeyaksuk (Artemisia argyi H) extracts with various solvent on the production of NO on RAW 264.7 cells. Each bar represents the mean ± SD of three re-peated experiments. ^*p<0.05, ^**p<0.01, ^***p<0.001 compared to the control group (LPS alone).
그림 Fig. 4. Effects of Seomaeyaksuk (Artemisia argyi H) extracts with various solvent on the production of ROS on RAW 264.7 cells. Each bar represents the mean ± SD of three re-peated experiments. ^*p<0.05, ^**p<0.01, ^***p<0.001 compared to the control group (LPS alone).
그림 Fig. 5. Effects on osteoclast differentiation by Seomaeyaksuk (Artemisia argyi H) extracts with various solvent ((A) butanol , (B) chloro-form, (C) ethyl acetate, (D) ethyl ether, (E) hexane, (F) methanol). RAW 264.7 cells were cultured for 7 days with RANKL in the presence of Seomaeyaksuk extracts. TRAP-positive cells were measured as osteoclasts. ^*p<0.05, ^**p<0.01, ^***p<0.001 com-pared to the control group (LPS alone).

AI 본문요약
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문제 정의

쑥은 기존에 인대와 뼈의 재생에 관여한다는 보고[2]가 있지만 파골세포 분화에 미치는 영향에 대해서는 그 연구가 미비한 실정이다. 따라서 본 연구에서는 섬애약쑥의 기능성 규명을 위한 연구의 일환으로 다양한 용매로 추출하여 항산화 활성과 파골세포의 분화 억제 효과를 관찰함으로써 생리활성을 검증하고자 하였다.
따라서 섬애약쑥의 골다공증에 대한 억제 활성평가에 앞서 염증성 질환의 예방용 소재로 사용가능한지 확인하고자 LPS로 염증 반응을 유발시킨 RAW 264.7 세포를 대상으로 섬애약쑥 용매별 추출물의 염증 억제 가능성을 검토하였다. LPS를처리한 RAW 264.

제안 방법

이후 시료를 포함하는 배지를 제거한 후 serum-free 배지와 5 mg/ml MTT 용액을 첨가하였다. 37℃에서 2시간 더 배양한 다음 DMSO 용액을 분주하여 sonication하고 10분간 교반 하여 용출시킨 뒤 570 nm에서 흡광도를 측정해 세포 생존율을 구하였다. 세포 생존율은 LPS 처리군에 대한 백분율로 나타내었다.
1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) 라디칼 소거활성은 DPPH 용액(5 mg/100 ml ethanol) 100 μl와 시료 100 μl를혼합한 다음 실온에서 20분간 반응시킨 후 분광광도계를 이용하여 525 nm에서 흡광도를 측정하였다[6]. ABTS 및 DPPH 라디칼 소거활성(%)은 시료 무첨가구에 대한 시료첨가구의 흡광도비로 산출하였다.
LPS 처리 염증세포로부터 생성된 NO의 양을 세포 배양액 중에 존재하는 NO₂^-의 형태로서 Griess 시약을 이용하여 측정하였다. 마우스 대식세포 RAW 264.
LPS를 처리한 RAW 264.7 대식세포에서 섬애약쑥 용매별 추출물들의 ROS 생성 억제 활성을 확인하였다. 추출물을 1시간 전처리하고 LPS로 자극하여 유도되는 ROS 생성량을 측정한 결과(Fig.
7 세포를 대상으로 섬애약쑥 용매별 추출물의 염증 억제 가능성을 검토하였다. LPS를처리한 RAW 264.7 세포에서 섬애약쑥 butanol, chloroform, diethyl ether, ethyl acetate, hexane 및 methanol 추출물 처리에 의한 세포생존율을 확인하기 위하여 MTT assay를 수행하 였다. Butanol, chloroform, diethly ether, ethlyacetate, hexane 및 methanol 추출물을 비교적 저농도인 2.
8 ml를 차례로 가한 후 혼합하여 실온의 암실에서 40분간 정치한 다음 분광광도계를 이용하여 415 nm에서 흡광도를 측정하였다. Quercetin (Sigma-Aldrich Co.)을 표준물질로 하여 얻은 검량선으로부터 총 플라보노이드 함량을 계산하였다.
RAW 264.7 세포를 96-well plate에 well당 1×103개가 되도록 분주하고, 10% FBS가 포함된 DMEM을 배양액으로 하여 4~6시간 배양한 후, 0~20 μg/ml 농도로 추출시료를 첨가한 10% FBS가 첨가된 α-MEM 배지로 교환하였다.
TRAP 효소의 활성 증가는 전구세포에서 파골세포로 분화하는 초기의 지표로 볼 수 있으므로 또 다른 plate에 RANKL과 추출시료를 처리하여 위의 방법과 동일하게 배양한 세포를 PBS로 신중히 세척한 다음 증류수를 70 μl씩 분주하고, sonication하여 세포 추출액을 만들어 TRAP 효소의 활성을 측정하였다.
배양이 끝난 세포에서 배양액을 제거하고 PBS로 세척한 다음 fixation solution (citrate solution 25 ml+acetone 65 ml+formaldehyde 8 ml)으로 10분간 고정시켰다. 고정액을 제거하고 증류수로 3번 세척하고 난후 TRAP 염색용 kit(Sigma-Aldrich Co.)로 TRAP염색을 시행하였다. 기질로 naphthol AS-BI phosphate를 사용하였고, 염색제로는 fast garnet GBC 용액을 사용하였다.
마우스 대식세포 RAW 264.7을 well당 5×105씩 24-well plate에 분주하여 24시간 배양한 후 각각의 추출물을 농도별로 처리한 다음, 30분 배양하고 LPS (1 μg/ml)를 처리하여 20시간 또는 24시간 배양하였다.
섬애약쑥 용매별 추출물들이 파골세포 분화에 미치는 영향을 알아보기 위하여 대식세포에 RANKL을 처리하여 분화를 유도한 후 추출물들을 농도별(2.5~20 μg/ml)로 처리하여 파골 세포 분화 억제 활성을 확인하였다(Fig. 5).
)은 경남 남해군에서 수확한 것을 남해섬애약쑥영농조합법인으로부터 제공받아 세척한 후 바람이 잘 통하는 실내에서 음건하여 사용하였다. 섬애약쑥 용매별 추출물은 섬애약쑥 200 g에 각각의 용매(butanol, chloroform, ethyl acetate, ethyl ether, hexane, methanol) 4 l를 가하여 추출하였다. 용매별 추출물들은 상온에서 24시간 추출한 후 여과한 여액을 모아 회전식진공농축기(N-1200AVW, EYELA, Tokyo, Japan)로 완전 건고한 것을 DMSO로 희석하여 실험에 사용하였다.
섬애약쑥 추출물들의 intracellular ROS 생성억제 활성은 intracellular ROS assay kit (Cell biolabs, San Diego, CA, USA)을 이용하여 측정하였다. 96 well black plate에 5×10⁴cell/well의 RAW 264.
7 세포를 96-well plate에 well당 1×10³개가 되도록 분주하고, 10% FBS가 포함된 DMEM을 배양액으로 하여 4~6시간 배양한 후, 0~20 μg/ml 농도로 추출시료를 첨가한 10% FBS가 첨가된 α-MEM 배지로 교환하였다. 시료 첨가 후 파골세포 분화인자인 RANKL 100 ng/ml을 첨가하여 2일 간격으로 시료와 RANKL을 포함하는 새 배지로 교환하면서 7일간 배양하였다. 배양이 끝난 세포에서 배양액을 제거하고 PBS로 세척한 다음 fixation solution (citrate solution 25 ml+acetone 65 ml+formaldehyde 8 ml)으로 10분간 고정시켰다.
기질로 naphthol AS-BI phosphate를 사용하였고, 염색제로는 fast garnet GBC 용액을 사용하였다. 염색이 끝난 후 광학 현미경을 이용하여 보라색으로 염색된 세포를 촬영하였다.
섬애약쑥 용매별 추출물은 섬애약쑥 200 g에 각각의 용매(butanol, chloroform, ethyl acetate, ethyl ether, hexane, methanol) 4 l를 가하여 추출하였다. 용매별 추출물들은 상온에서 24시간 추출한 후 여과한 여액을 모아 회전식진공농축기(N-1200AVW, EYELA, Tokyo, Japan)로 완전 건고한 것을 DMSO로 희석하여 실험에 사용하였다.
원심분리(3,000 rpm, 5 min, 4℃)하여 얻은 세포 상등액 50 μl와 sulfanilamide solution 50μl를 혼합하여 5분간 빛을 차단하고 반응시킨 다음 NED solution 50 μl와 혼합하여 상온에서 5분간 반응시켰다. 이것을 ELISA reader (Epoch, BIOTECK, Wiesbaden, Germany)를 이용하여 540 nm에서 흡광도를 측정한 다음 sodium nitrate로 표준곡선을 작성하여 LPS 처리 세포군에 대한 상대적인 생성율로 나타내었다.
총 플라보노이드 화합물의 함량은 시료액 1 ml에 10% aluminum nitrate 100 μl, 1 M potassium acetate 100 μl 및 80% 에탄올 3.8 ml를 차례로 가한 후 혼합하여 실온의 암실에서 40분간 정치한 다음 분광광도계를 이용하여 415 nm에서 흡광도를 측정하였다.
Louis, MO, USA) 1 ml를 넣고 3분 후 10% Na₂CO₃ (Daejung, Siheung, Korea) 용액 1 ml씩을 혼합하여 실온의 암실에서 1시간 정치한 다음 분광광도계(Libra S 35, Biochrom, Cambridge, Cambridgeshire, England)를 이용하여 760 nm에서 흡광도를 측정하였다. 표준물질로는 gallic acid (Sigma-Aldrich Co.)를 사용하여 시료와 동일한 방법으로 분석하여 얻은 검량선으로부터 총 폴리페놀 함량을 계산하였다.
TRAP 효소의 활성 증가는 전구세포에서 파골세포로 분화하는 초기의 지표로 볼 수 있으므로 또 다른 plate에 RANKL과 추출시료를 처리하여 위의 방법과 동일하게 배양한 세포를 PBS로 신중히 세척한 다음 증류수를 70 μl씩 분주하고, sonication하여 세포 추출액을 만들어 TRAP 효소의 활성을 측정하였다. 효소 활성의 측정은 세포추출액을 기질인 100 mM p-nitrophenyl phosphate (pNPP)와 10 mM sodium tartrate가포함된 50 mM citrate 완충액(pH 7.4)에서 30분간 반응시킨 후 pNPP에서 분해된 p-nitrophenol의 양을 흡광 광도계를 이용하여 540 nm에서 측정하여 RANKL 단독 처리군에 대한 백분율로 표기하였다.

대상 데이터

)로 TRAP염색을 시행하였다. 기질로 naphthol AS-BI phosphate를 사용하였고, 염색제로는 fast garnet GBC 용액을 사용하였다. 염색이 끝난 후 광학 현미경을 이용하여 보라색으로 염색된 세포를 촬영하였다.
실험에 사용된 RAW 264.7 세포는 한국세포주은행(KCLB)에서 분양 받았으며, 세포 배양을 위해 10% fetal bovine serum (FBS)와 1% penicillin-streptomycin을 포함하는 DMEM 배지를 사용하였다. 세포는 CO₂ incubator (37℃, 5% CO₂)에서 배양하였다.
실험에 사용된 섬애약쑥(Artemisia Argyi H.)은 경남 남해군에서 수확한 것을 남해섬애약쑥영농조합법인으로부터 제공받아 세척한 후 바람이 잘 통하는 실내에서 음건하여 사용하였다. 섬애약쑥 용매별 추출물은 섬애약쑥 200 g에 각각의 용매(butanol, chloroform, ethyl acetate, ethyl ether, hexane, methanol) 4 l를 가하여 추출하였다.

데이터처리

1)a-cMeans with different superscript within the same extraction solvent are significantly different by Duncan's multiple range test (p<0.05).
2)A-FMeans with different superscript within the same sample concentration are significantly different by Duncan's multiple range test (p<0.05).
2)a-cMeans with different superscript within the same extraction solvent are significantly different by Duncan's multiple range test (p<0.05).
3)A-FMeans with different superscript within the same concentration are significantly different by Duncan's multiple range test (p<0.05).
결과는 평균±표준편차로 표시하였고, 실험군에 따른 데이터간의 통계적 유의성 검정을 위해 Duncan's multiple range test, ANOVA 및 t-test를 수행하였다(p<0.05).
모든 실험은 3회 이상 반복하여 실시하였으며 실험으로부터 얻은 결과는 SPSS statistics 18 (IBM, Armonk, NY, USA) 통계 package를 이용하여 분석하였다. 결과는 평균±표준편차로 표시하였고, 실험군에 따른 데이터간의 통계적 유의성 검정을 위해 Duncan's multiple range test, ANOVA 및 t-test를 수행하였다(p<0.

이론/모형

세포에 대한 독성 측정은 3-(4,5-dimethylthiazole-2-yl)-2,5–diphenyltetrazolium bromide (MTT, Sigma-Aldrich Co.) 환원방법을 이용하여 측정하였다.
총 페놀화합물의 함량은 폴리페놀성 물질인 phosphomolybdic acid와 반응하여 청색을 나타내는 원리로 Folin-Denis method (Gutfinger T 1981)을 응용하여 시료액 2 ml에 2 M Folin-Ciocalteau (Sigma-Aldrich Co., St. Louis, MO, USA) 1 ml를 넣고 3분 후 10% Na₂CO₃ (Daejung, Siheung, Korea) 용액 1 ml씩을 혼합하여 실온의 암실에서 1시간 정치한 다음 분광광도계(Libra S 35, Biochrom, Cambridge, Cambridgeshire, England)를 이용하여 760 nm에서 흡광도를 측정하였다. 표준물질로는 gallic acid (Sigma-Aldrich Co.

성능/효과

250, 500 및 1,000 μg/ml의 농도에서 ABTS 라디칼 소거활성은 250 μg/ml의 농도에서 5.48~81.77%이던 것이 1,000 μg/ml의 농도에서는 18.28~96.23%로 농도 의존적으로 활성이 증가하였다.
6종 추출물 모두 20 μg/ml 농도에서 대조군 대비 유의성 있는 TRAP 활성의 감소효과가 확인되었다.
6종 추출물 중 butanol 추출물은 20 μg/ml 농도에서 가장 높은 91%의 억제 효과가 확인되었다.
Butanol 추출물은 5 μg/ml의 낮은 농도에서도 48.65%로 파골세포 분화 억제 활성이 높았다.
Butanol, chloroform, diethly ether, ethlyacetate, hexane 및 methanol 추출물을 비교적 저농도인 2.5, 5, 10, 20 μg/ml 농도로 24시간 동안 처리한 결과(Fig. 2) 최대 20 μg/ml 농도까지 모든 용매별 추출물에서 세포독성이 유발되지 않았다.
3과 같다. LPS를 단독으로 처리하였을 때, NO 생성량은 무처리군에 대비 약 3.23배 증가하였고, butanol을 포함하는 6종의 용매 추출물 모두 농도 의존적으로 NO 생성량을 감소시켰다. 용매별 추출물을 각각 20 μg/ml 농도로 처리하였을 경우 NO 생성 억제율은 methanol 추출물이 54.
23%로 농도 의존적으로 활성이 증가하였다. Methanol 추출물의 ABTS 라디칼 소거활성은 81.77~96.23%로 여타 추출물보다 월등히 높았으며 다음으로는 butanol 추출물(43.27~75.11%)에서 활성이 높았다. 시료 중에서 hexane 추출물의 활성이 5.
일반적으로 식물체들의 항산화 활성은 폴리페놀 함량에 기인하는 것으로 알려져 있지만[35] 식물체의 영양성분 중 하나인 vitamin C와 E도 활성산소를 제거하여 산화적 스트레스를 완화시키는 것으로 보고되어 있다[19]. 따라서 실험을 통해 확인된 섬애약쑥 용매별 추출물의 항산화 활성은 플라보노이드와 폴리페놀 화합물 이외에도 여러 성분들의 상호작용으로 나타난 결과로 추정된다.
59%로 활성이 가장 낮았다. 또한 DPPH 라디칼 소거활성도 ABTS 라디칼 소거활성과 같이 methanol 추출물 다음으로 butanol 추출물(29.53~ 69.02%)의 활성이 높았다.
Choi YM 등[11]은 쑥의 항산화 활성을 측정한 결과 추출물의 성분 중 총 페놀화합물 함량에 비례하여 라디칼 소거능이 증가한다고 하였는데, 본 연구에서 섬애약쑥 용매별 추출물도 여타 시료군보다 총 페놀화합물 함량이 상대적으로 높았던 methanol과 butanol 추출물의 ABTS 및 DPPH 라디칼 소거활성이 높았다. 반면 본 연구에서 섬애약쑥 hexane 추출물의 총페놀화합물 함량이 ethyl ether 추출물보다 유의적으로 높았으나 라디칼 소거활성은 더 낮아 총 페놀화합물과 라디칼 소거활성 경향이 완전히 일치하지는 않았다. 일반적으로 식물체들의 항산화 활성은 폴리페놀 함량에 기인하는 것으로 알려져 있지만[35] 식물체의 영양성분 중 하나인 vitamin C와 E도 활성산소를 제거하여 산화적 스트레스를 완화시키는 것으로 보고되어 있다[19].
추출 방법을 달리한 사철쑥, 약쑥 및 개똥쑥의 NO 소거능은 최대 45% 수준이라고 보고되어 있으며[26], 오미자, 하수오, 행인, 팽이버섯 등도 20% 이하의 소거능을 나타낸다고 보고되어 있다[31]. 반면 섬애약쑥 용매별 추출물들의 NO 소거 능은 50% 이상이기 때문에 상대적으로 높은 활성을 가지는 것으로 확인되었다. 또한 Duarte 등[14]은 폴리페놀과 플라보노이드 화합물이 종류에 따른 차이는 있으나 NO의 생성을 억제 한다고 보고한 바 있는데 본 연구의 결과와도 일치하였다.
기존의 연구에 따르면 기생초 꽃 조추출물 및 순차 분획물의 ABTS 라디칼 소거활성은 ethyl acetate> butanol> water> hexane> chloroform 분획물 순으로 높았다는 보고[58]가 있는 반면 다릅나무 용매 분획별 ABTS 라디칼 소거활성은 chloroform> ethyl acetate> hexane> butanol> water 순이었다는 보고도 있다[28]. 본 연구 결과와 비교하여 용매별 추출물들의 ABTS 라디칼 소거활성에 차이가 발생하는 것은 추출시 사용되는 용매의 극성에 의해 항산화 물질이 용해되는 정도가 다르기 때문일 것으로 판단된다.
산화 스트레스와 골다공증에 관한 연구로는 산화스트레스의 증가가 골밀도를 감소시킨다는 보고가 있었고[4], 항산화 비타민을 섭취한 경우 높은 골밀도를 보였다는 보고가 있다 [42]. 본 연구에서 섬애약쑥 용매별 추출물들은 높은 ROS 생성 억제 활성을 통해 산화스트레스를 감소시키고, 이는 파골세포의 활성이나 증식을 억제하여 골밀도 감소를 억제할 것으로 사료된다.
섬애약쑥 용매별 추출물 6종에 대한 DPPH 라디칼 소거활성 측정 결과에서는(Table 2), 6종의 시료 추출물 모두 ABTS 라디칼 소거활성과 마찬가지로 농도에 의존하여 그 활성이 증가하였다. 시료군 중 methanol 추출물이 250, 500 및 1,000 μg/ml 농도에서 64.
시료군 중 methanol 추출물이 250, 500 및 1,000 μg/ml 농도에서 64.07~85.65%로 가장 DPPH 라디칼 소거활성이 높은 반면 hexane 추출물은 10.09~20.59%로 활성이 가장 낮았다.
용매별 추출물을 각각 20 μg/ml 농도로 처리하였을 경우 NO 생성 억제율은 methanol 추출물이 54.59%로 가장 낮았으며, ethyl acetate 추출물이 68.53%로 가장 높았다.
1과 같다. 총 페놀화합물 함량은 18.15~49.46 mg/g의 범위로 그 함량이 가장 높은 methanol 추출물과 가장 낮은 ethyl ether 추출물 간의 함량 차이는 약 2.7배였다. 총 플라보노이드 함량은 6.
총 플라보노이드 함량은 6.29~24.32 mg/g의 범위였으며 methanol> butanol> ethyl acetate> chloroform, hexane> ethyl ether 추출물의 순으로 총 페놀화합물 함량과 유사한 경향이었다.
최고 농도인 20 μg/ml 농도에서 butanol 추출물을 제외한 용매별 추출물의 TRAP 활성 감소율은 대조군 대비 27.28~38.08% 로 diethyl ether 추출물에서 가장 높고, hexane 추출물에서 가장 낮았다.
추출물을 1시간 전처리하고 LPS로 자극하여 유도되는 ROS 생성량을 측정한 결과(Fig. 4), LPS를 처리한 대조군은 무처리군 대비 ROS 생성이 5배 증가되었고, 섬애약쑥 6종 추출물 모두 농도 의존적으로 ROS의 생성을 억제하였으며, 가장 저농도인 2.5 μg/mL에서는 diethly ether 추출물만이 유의성 있게 ROS의 생성을 억제하였다.

참고문헌 (58)

Al-Mustafa, A. H. and Al-Thunib, O. Y. 2008. Antioxidant activity of some Jordanian medicinal plants used traditionally for treatment of diabetes. Pak. J. Biol. Sci. 11, 351-358.

상세보기
Bailey, M. E., Wang, A. C., Hao, J., Janssen, W. G., Hara, Y., Dumitriu, D., Hof, P. R. and Morrison, J. H. 2011. Interactive effects of age and estrogen on cortical neurons: implications for cognitive aging. Neuroscience 191, 148-158.

상세보기
Barcelos-Ferreira, R., Izbicki, R., Steffens, D. C. and Bottino, C. M. 2010. Depressive morbidity and gender in community- dwelling Brazilian elderly: systematic review and meta-analysis. Int. Psychogeriatr. 22, 712-726.

상세보기
Basu, S., Michaelsson, K., Olofsson, H., Johansson, S. and Melhus, H. 2001. Association between oxidative stress and bone mineral density. Biochem. Biophys. Res. Commun. 288, 275-279.

상세보기
Benzie, I. F. F. and Strain, J. J. 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of "antioxidant power": The FRAP assay. Anal. Biochem. 239, 70-76.

상세보기
Blois, M. S. 1958. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature 181, 1199-1200.

상세보기
Boyle, W. J., Simonet, W. S. and Lacey, D. L. 2003. Osteoclast differentiation and activation. Nature 423, 337-342.

상세보기
Bromberger, J. T., Matthews, K. A., Schott, L. L., Brockwell, S., Avis, N. E., Kravitz, H. M., Everson-Rose, S. A., Gold, E. B., Sowers, M. and Randolph, J. F. Jr. 2007. Depressive symptoms during the menopausal transition: the Study of Women's Health Across the Nation (SWAN). J. Affect. Disord. 103, 267- 272.

상세보기
Bromberger, J. T., Schott, L. L., Kravitz, H. M., Sowers, M., Avis, N. E., Gold, E. B., Randolph, J. F. Jr. and Matthews, K. A. 2010 Longitudinal change in reproductive hormones and depressive symptoms across the menopausal transition: results from the Study of Women's Health Across the Nation (SWAN). Arch. Gen. Psychiatry 67, 598-607.

상세보기
Cho, S. B., Ha, S. Y., Lee, S. R. and Koh, K. J. 2003. Effects of irradiation on the mRNA expression of the osteocalcin and osteopontin in MC3T3-E1 osteoblastic cell line. Kor. J. Oral Maxillofac. Radiol. 33, 179-185.
Choi, Y. M., Chung, B. H., Lee, J. S. and Cho, Y. G. 2006. The Antioxidant activities of Artemisia spp. collections. Kor. J. Crop. Sci. 51, 209-214.
Cohen, L. S., Soares, C. N., Vitonis, A. F., Otto, M. W. and Harlow, B. L. 2006. Risk for new onset of depression during the menopausal transition: the Harvard study of moods and cycles. Arch. Gen. Psychiatry 63, 385-390.

상세보기
Cole, M. G. and Dendukuri, N. 2003. Risk factors for depression among elderly community subjects: a systematic review and meta-analysis. Am. J. Psychiatry 160, 1147-1156.

상세보기
Duarte, J., Francisco, V. and Perez-Vizcaino, F. 2014. Modulation of nitric oxide by flavonoids. Food Funct. 5, 1653-1668.

상세보기
Faravelli, C., Alessandra Scarpato, M., Castellini, G. and Lo Sauro, C. 2013. Gender differences in depression and anxiety: the role of age. Psychiatry Res. 210, 1301-1303.

상세보기
Ha, G. J., Kim, N. K., Shin, H. Y., Bae, W. Y. and Heo, H. J. 2014. Characterization as cosmetic substances of Artemisia argyi H. extracts. J. Agric. Life Sci. 48, 119-131.
Ha, G. J., Lee, D. S., Seung, T. W., Park, C. H., Park, S. K., Jin, D. E., Kim, N. K., Shin, H. Y. and Heo, H. J. 2015. Anti-amnesic and neuroprotective effects of Artemisia argyi H. (seomae mugwort) extracts. Kor. J. Food Sci. Technol. 47, 380-387.

원문보기 상세보기
Ha, G. J., Lee, Y. H., Kim, N. K., Shon, G. M., Rho, C. W., Jeong, H. R., Heo, H. J. and Jeong, C. H. 2012. Nutritional chemical composition in the different parts of Artemisia argyi H. J. Agric. Life Sci. 46, 155-164.
Hong, J. K. 2009. A Study on skin aging caused by free-radical and on efficacy of antioxidant vitamins. Kor. J. Aesthet. Cosmetol. 7, 51-62.
Hwang, C. R., Seo, W. T., Bae, W. Y., Kang, M. J. and Shin, J. H. 2014. Physicochemical characteristics and biological activities of Artemisia argyi H. J. Life Sci. 24, 377-385.

원문보기 상세보기
Hwang, C. R., Seo, W. T., Kang, M. J. and Shin, J. H. 2013. Antioxidant activity of Sumaeyaksuk tea extracts prepared with different drying and extract conditions. Kor. J. Food Preserv. 20, 546-553.

원문보기 상세보기
Hyun, M. R., Lee, Y. S. and Park, Y. H. 2011. Antioxidative activity and flavonoid content of Chrysanthemum zawadskii flowers. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 29, 68-73.
Jo, S. K., Oh, H., Cheon, E. H., Jeong, U. and Jo, N. J. 2004 Protective effects of a herb, Artemisia capillaris, against radiation induced DNA damage. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 33, 22-27.

원문보기 상세보기
Joffe, H., Petrillo, L. F., Koukopoulos, A., Viguera, A. C., Hirschberg, A., Nonacs, R., Somley B., Pasciullo, E., White, D. P., Hall, J. E. and Cohen, L. S. 2011. Increased estradiol and improved sleep, but not hot flashes, predict enhanced mood during the menopausal transition. J. Clin. Endocrinol. Metab. 96, E1044-E1054.

상세보기
Kang, J. R., Kang, M. J., Shin, J. H., Park, J. H., Kim, D. I., Chung, S. Y. and Shin, J. H. 2017. Antioxidant and antidiabetic activities of various solvent extracts from Stachys sieboldii Miq. Kor. J. Food Preserv. 24, 615-622.

원문보기 상세보기
Kang, K. M. and Lee, S. H. 2013. Effects of extraction methods on the antioxidative activity of Artemisia sp. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 42, 1249-1254.

원문보기 상세보기
Kang, Y. H., Park, Y. K., Oh, S. R. and Moon, K. D. 1995. Studies on the physiological functionality pine needle and mugwort extract. Kor. J. Food Sci. Technol. 27, 978-984.
Kim, G. S., Chang, J. P., Doh, E. S., Kil, K. L. and Yoo, J. H. 2016. Stem bark of Maackia amurensis extract according to extraction solvent. Kor. J. Herbology 31, 43-48.
Kim, J. Y., Jung, K. S. and Jeong, H. G. 2004. Suppressive effects of the kahweol and cafestol on cyclooxygenase-2 expression in macrophages. FEBS Lett. 569, 321-326.

상세보기
Kim, R. J., Kang, M. J., Hwang, C. R., Jung, W. J. and Shin, J. H. 2012. Antioxidant and cancer cell growth inhibition activity of five different varieties of Artemisia cultivars in Korea. J. Life Sci. 22, 844-851.

원문보기 상세보기
Kim, S. M., Cho, Y. S. and Sung, S. K. 2001. The antioxidant ability and nitrite scavenging ability of plant extracts. Kor. J. Food Sci. Technol. 33, 626-632.
Kwak, C. S. and Choi, H. I. 2015. In vitro antioxidant and anti-Inflammatory activities of ethanol extract and sequential fractions of flowers of Prunus persica in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 44, 1439-1449.

원문보기 상세보기
Lee, C. K. and Seo, J. J. 2003. Antimicrobial activity of the aerial part of Artemisia capillaries extracts on the food-borne pathogens. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 32, 1227-1232.

원문보기 상세보기
Lee, H. J., Hwang, Y. I., Park, E. J. and Choi, S. U. 2011. Antihepatotoxic and antigenotoxic effects of herb tea composed of Chrysanthemum morifolium Ramat. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 40, 78-83.

원문보기 상세보기
Lee, J. H. and Lee, S. R. 1994. Some physiological activity of phenolic substances in plant foods. Kor. J. Food Sci. Technol. 26, 317-323.
Lee, K. D., Kim, J. S., Bae, J. O. and Yoon, H. S. 1992. Antioxidative effect of water and ether extract of Artemisia capillaris. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 2, 17-22.
Lee, S. J., Chung, H. Y., Lee, I. K. and Yoo, I. D. 1999. Isolation and identification of flavonoid from ethanol extracts of Artemisia vulgaris and their antioxidant activity. Kor. J. Food Sci. Technol. 31, 815-822.
Lee, W. Y., Lee, S. D., Son, S. I., Chang, H. S., Kim, Y. H., Oh, T. H., Eom, K. D., Chang, K. H., Park, S. C., Yamato, O., Maede, Y. and Lee, K. W. 2003. The effect of Artemisia capillaris crude juice extract on $CCl_4$ induced liver damage in dogs. J. Vit. Clin. 20, 389-395.
Luppa, M., Sikorski, C., Luck, T., Ehreke, L., Konnopka, A., Wiese, B., Weyerer, S., Konig, H. H. and Riedel-Heller, S. G. 2012. Age- and gender-specific prevalence of depression in latest-life-systematic review and meta-analysis. J. Affect. Disord. 136, 212-221.

상세보기
Min, S. W., Kim, N. J., Baek, N. I. and Kim, D. H. 2009. Inhibitory effect of eupatilin and jaceosidin isolated from Artemisia princeps on carrageenan-induced inflammation in mice. J. Ethnopharmacol. 125, 497-500.

상세보기
Minkin, C. 1982. Bone acid phosphatase: tartrate-resistant acid phosphatase as a marker of osteoclast function. Calcif. Tissue Int. 34, 285-290.

상세보기
Morton, D., Barrett-Connor, E. L. and Schneider, D. L. 2001. Vitamin C supplement use and bone mineral density in postmenopausal women. J. Bone Miner. Res. 16, 135-140.

상세보기
Munhoz, T. N., Santos, I. S. and Matijasevich, A. 2013. Major depressive episode among Brazilian adults: a cross-sectional population-based study. J. Affect. Disord. 150, 401-407.

상세보기
Nair, S., Meghji, P. S., Wilson, M., Reddi, K., White, P. and Henderson, B. 1996. Bacterially induced bone destruction: mechanisms and misconceptions. Infect. Immun. 64, 2371-2380.

상세보기
Ntutela, S., Smiyh, P., Matika, L., Mukinda, J., Arendse, H., Allie, N., Estes, D. M., Mabusela, M., Folb, P., Steyn, M., Johnson, Q., Folk, W. R., Syce, J. and Jacobsb, M. 2009. Efficacy of Artemisia afra phytotherapy in experimental tuberculosis. Tuberculosis (Edinb) 89, S33-S40

상세보기
Park, E. K., Kwon, B. M., Jung, I. K. and Kim, J. H. 2014. Hypoglycemic and antioxidant effects of jaceosidin in streptozotocin-induced diabetic mice. J. Nutr. Health 10, 313-320.
Park, H. S. 2011. Antioxidant activity of solvent extracts from Vitis coignetiea skins. Kor. J. Culinary Res. 17, 208-217.
Patel, R. P., McAndrew, J., Sellak, H., White, C. R., Jo, H., Freeman, B. A. and Darley-Usmar, V. M. 1999. Biological aspects of reactive nitrogen species. Biochim. Biophys. Acta. 1411, 385-400.

상세보기
Pinsonneault, J. K., Sullivan, D., Sadee, W., Soares, C. N., Hampson, E. and Steiner, M. 2013. Association study of the estrogen receptor gene ESR1 with postpartum depression. Arch. Womens Ment. Health 16, 499-509.

상세보기
Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M. and Rice-Evans, C. 1999. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic. Biol. Med. 26, 1231-1237.

상세보기
Rocca, W. A., Grossardt, B. R., Shuster, L. T. and Stewart, E. A. 2012. Hysterectomy, oophorectomy, estrogen, and the risk of dementia. Neurodegener. Dis. 10, 175-178.

상세보기
Ryu, J. H., Kim, R. J., Lee, S. J., Kim, I. S., Lee, H. J. and Sung, N. J. 2011. Nutritional properties and biological activities of Artemisia annua L. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 40, 163-170.

원문보기 상세보기
Schmidt, P. J., Haq, N. and Rubinow, D. R. 2004. A longitudinal evaluation of the relationship between reproductive status and mood in perimenopausal women. Am. J. Psychiatry 161, 2238-2244.

상세보기
Seibel, M. J. 2005. Biochemical markers of bone turnover part I: biochemistry and variability. Clin. Biochem. Rev. 26, 97-122.

상세보기
Seritan, A. L., Iosif, A. M., Park, J. H., DeatherageHand, D., Sweet, R. L. and Gold, E. B. 2010. Self-reported anxiety, depressive, and vasomotor symptoms: a study of perimenopausal women presenting to a specialized midlife assessment center. Menopause 17, 410-415.

상세보기
Suda, K., Udagawa, N., Sato, N., Takami, M., Itoh, K., Woo, J. T., Takahashi, N. and Nagai, K. 2004. Suppression of osteoproteger in expression by prostaglandin E2 is crucially involved in lipopolysaccharide-induced osteoclast formation. J. Immunol. 172, 2504-2510.

상세보기
Suda, T., Takahashi, N. and Martin, T. J. 1992. Modulation of osteoclast differentiation. Endocr. Rev. 13, 66-80.

상세보기
Woo, J. H., Jeong, H. S., Chang, Y. D., Shin, S. L. and Lee, C. H. 2010. Antioxidant activities of fractions obtained from flowers of Coreopsis tinctoria Nutt. Kor. J. Hort. Sci. Technol. 28, 115-119.

저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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