[논문]산화적 스트레스에 대한 여주(Momordica charantia Linn.)잎의 항산화 활성 및 간세포 보호능

전아영; 천원영; 윤지민; 김대중; 김영화

doi:10.7318/kjfc/2020.35.6.597

[국내논문] 산화적 스트레스에 대한 여주(Momordica charantia Linn.)잎의 항산화 활성 및 간세포 보호능
Antioxidant and Hepatoprotective Activities of Bitter Melon (Momordica charantia Linn.) Leaves against Oxidative Stress 원문보기

韓國食生活文化學會誌 = Journal of the Korean Society of Food Culture, v.35 no.6, 2020년, pp.597 - 604

전아영 (경성대학교 식품생명공학과 대학원) , 천원영 (경성대학교 식품생명공학과 대학원) , 윤지민 (경성대학교 식품생명공학과 대학원) , 김대중 (국립농산물품질관리원 시험연구소) , 김영화 (경성대학교 식품응용공학부)

Abstract ▼ AI-Helper

This study examined the bioactive compound content and the antioxidant activities of bitter melon (Momordica charantia Linn.) leaves. The content of vitamin C, beta-carotene, and total carotenoids was 69.77, 45.68, and 65.08 mg/100 g, respectively. To investigate the antioxidant capacity, bitter melon leaves were extracted using various concentrations of ethanol (60, 80, or 100%). Highest content of total polyphenols (18.07 mg gallic acid equivalent/g) and flavonoids (4.53 mg cathechin equivalent/g) was found in the 100% ethanolic extract of the leaves (E100). Also, the E100 extract showed the highest levels of 2,2'azino-bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) and α-α-diphenyl-β-picrylhydrazyl (DPPH) free radical scavenging activities. Reducing power was also the highest (39.21 mg Trolox equivalent/g) in E100 extract. The E100 extract effectively inhibited lipid peroxidation by 91.45% compared to the control group. Also, the E100 extract showed a cytoprotective effect against oxidative stress in HepG2 cells and decreased the generation of intracellular reactive oxygen species. These results suggest that bitter melon leaves could be regarded as a potential source of natural antioxidants.

Keyword

표/그림 (6)

표 Contents of vitamin C, beta-carotene and total carotenoids in bitter melon leaves (mg/100 g fresh weight)
표 Phenolic compounds contents of ethanol extracts of bitter melon leaves
표 Free radical scavenging activity of ethanol extracts of bitter melon leaves
그림 Effect of various ethanol extracts of bitter melon leaves on lipid peroxidation. The values are means±standard deviation (n=3). ^a-cMeans with different letters are significnatly different (p<0.05). con, control; BHT, butylated hydroxytoluene; E60, 60% ethanol extract; E80, 80% ethanol extract; E100, 100% ethanol extract.
그림 Effect of 100% ethanol extract of bitter melon leaves on cytotoxicity (A) and protective effects against oxidative stress (B) in HepG2 cells. Each value was expressed as the means±standard deviation (n=3). ###p < 0.001, significant difference compared with control. *, **, ***p<0.05, 0.01 and 0.001, respectively, significant difference compared with TBHP-treated group (by ANOVA, p<0.05). con, control; E100, 100% ethanol extract.
그림 Effect of 100% ethanol extract of bitter melon leaves on intracellular reactive species oxygen in HepG2 cells. Each value was expressed as the means±standard deviation (n=3). ^a-e Means with different letters are significantly different (by ANOVA, p<0.05).

AI 본문요약
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문제 정의

그러나 여주잎을 활용한 생리활성에 대한 연구는 여주 열매에 비해 미흡하며, 특히 간세포 보호 작용에 관한 연구는 이루어져있지 않다. 따라서 본 연구에서는 여주잎 추출물의 항산화활성과 간세포에서의 산화적 스트레스에 대한 세포보호 효과를 알아보고자 하였다.
본 연구에서는 여주잎의 항산화 활성 및 간세포 보호 효과를 알아보았다. 여주잎은 vitamin C (69.
본 연구에서는 여주잎의 vitamin C 및 beta-carotene의 함량을 분석하였고, 그 결과를 에 나타내었다.
본 연구에서는 ethanol 농도별 여주잎 추출물의 총 폴리페놀및 플라보노이드 함량을 알아보았고 분석한 결과는 에 나타내었다.
본 연구에서는 여주잎 ethanol 추출물의 생리활성 효과를 평가하기 위해 DPPH 및 ABTS 라디컬 소거능, 환원력 및 지질 과산화 억제능을 측정하였으며, 그 결과를 에 나타내었다.
따라서 본 연구에서는 여주잎 ethanol 추출물의 지질 과산화 저해능 확인을 위한 실험을 진행하였으며, 그 결과를 에 나타내었다.
따라서 간세포에서 여주잎 100% ethanol 추출물 처리에 의한 세포 생존율 및 TBHP에 의한 보호 능을 측정한 결과를 에 나타내었다.
본 연구에서는 여주잎 ethanol 추출물의 활성산소 생성 억제능을 측정하기 위해 실험을 진행하였고, 그 결과를 에 나타내었다.

제안 방법

본 연구에 사용한 추출물을 제조하기 위해 여주잎을 수세및 건조하여 동결 건조 후 분쇄하였다. 동결 건조된 분말 2 g을 칭량한 후 ethanol 농도별 100배 부피의 용매를 사용하여 18시간 동안 추출하였다.
동결 건조된 분말 2 g을 칭량한 후 ethanol 농도별 100배 부피의 용매를 사용하여 18시간 동안 추출하였다. 추출물은 여과 후 감압농축기 (EYELA N-1000, Rikakikai Co., Tokyo, Japan)를 이용하여 잔사를 얻었고 이를 DMSO에 녹여 추출물을 제조한 후 실험에 사용하였다.
이후 10분간 3, 000rpm으로 원심분리 하여 상등액을 50mL로 정용하였다. 추출물은 0.45μm filter (Whatman Inc., Maidstone, UK)로 여과하여 HPLC/DAD (Chromaster 5000 series, Hitachi)를 분석에사용하였다. 이동상으로 0.
여주잎의 총 carotenoid 함량은 AOAC (2016) 및 Gmez et al. (2020)의 방법을 변형하여 분석을 진행하였다. 시료 1g에 6% pyrogallol 10mL를 첨가한 후 5분간 sonication 한 뒤, 60% KOH 8mL를 첨가하고 환류냉각관을 연결하여 75^oC에서 진탕 추출하였다.
이후 ice에서 냉각시킨 후, 2% NaCl 20mL 및 hexane-ethylacetate 용액 15mL를 첨가하고 진탕하였다. 상등액만 얻어 50mL로 정용한 후 추출물을 0.45μm syringe filter로 여과하여 HPLC/DAD 분석에 사용하였다. 이동상으로 acetonitrile:methanol:dichloromethane =70:10:30과 acetonitrile:methanol:dichloromethane=75: 20:5 용액을 사용하였으며, 유속은 1mL/min, column (YMC-Pack Pro RS C₁₈, 250×4.
여주잎의 총 폴리페놀의 함량은 Folin & Denis (1912)의 방법을 응용하여 사용하였다. DMSO에 희석한 여주잎 ethanol 추출물 50μL에 2% Na₂CO₃1mL와 50% Folin- ciocalteu’s reagents (Sigma Chemical Co.
여주잎에 함유되어 있는 총 플라보노이드 함량을 알아보기 위해 Zhishen et al. (1999)의 방법을 응용하여 실험하였다. DMSO에 희석한 여주잎 ethanol 추출물 250μL에 증류수 1.
여주잎의 DPPH 라디컬에 대한 환원력 측정을 위해 DMSO에 희석된 여주잎 추출물 50μL에 0.2mM의 DPPH 용액 1mL를 가하여 진탕한 후 암소에서 30분간 방치하고 ELISA reader기를 이용하여 520nm에서 흡광도를 측정하였다(Blois 1958). 또한 ABTS 라디컬 소거능을 측정하기 위해 7.
2mM의 DPPH 용액 1mL를 가하여 진탕한 후 암소에서 30분간 방치하고 ELISA reader기를 이용하여 520nm에서 흡광도를 측정하였다(Blois 1958). 또한 ABTS 라디컬 소거능을 측정하기 위해 7.4mM의 ABTS 용액과 2.6mM의 potassium persulfate를 혼합한 후 암소에서 24시간 방치하여, 735nm에서 흡광도가 1.0 정도가 되도록 희석한 후 실험에 사용하였다. 여주잎 추출물 20μL에 희석된 ABTS 라디컬 용액 1mL를 가하여 혼합한 후 30분간 방치하였다.
여주잎 추출물 20μL에 희석된 ABTS 라디컬 용액 1mL를 가하여 혼합한 후 30분간 방치하였다. 이후 ABTS 라디컬 소거능은 735nm에서 흡광도를 측정하여 계산하였다.
여주잎의 지질 과산화 저해 활성은 Siriwardhana et al. (2003)의 방법을 변형하여 측정하였다. DMSO로 희석한 각 농도별 추출물 1mL에 2.
incubator에서 배양하였다. HepG2 세포는 96 well plate의 각 well당 3×10⁴개의 세포를 seeding하여 CO₂ incubator에서 18시간 동안 배양한 후 FBS가 첨가되지 않은 DMEM 배지에 100% ethanol로 추출한 여주잎 추출물을 농도별(3.125, 6.25 12.5, 25μg/mL)로 처리하여 24시간 후 시료의 독성을 알아보았다. 또한 배양된 세포에 여주잎 추출물과 TBHP를 희석하여 200μL씩 세포에 6시간 동안 처리한후 산화적 스트레스에 대한 보호효과를 측정하였다.
5, 25μg/mL)로 처리하여 24시간 후 시료의 독성을 알아보았다. 또한 배양된 세포에 여주잎 추출물과 TBHP를 희석하여 200μL씩 세포에 6시간 동안 처리한후 산화적 스트레스에 대한 보호효과를 측정하였다. 산화적스트레스에 대한 세포의 생존율은 MTT assay로 측정하였으며, 각 well에 MTT 시약(5mg/mL)을 20μL씩 가하고 2시간 동안 37^oC에서 방치하였다.
또한 배양된 세포에 여주잎 추출물과 TBHP를 희석하여 200μL씩 세포에 6시간 동안 처리한후 산화적 스트레스에 대한 보호효과를 측정하였다. 산화적스트레스에 대한 세포의 생존율은 MTT assay로 측정하였으며, 각 well에 MTT 시약(5mg/mL)을 20μL씩 가하고 2시간 동안 37^oC에서 방치하였다. 이후 formazane DMSO에 녹여 550nm에서 흡광도를 측정하였다(Yeon et al.
본 연구에서는 Lee et al. (2017)의 방법을 변형하여 세포 내생성된 활성산소종의 양을 형광물질인 2'-7'dichlorofluorescin diacetate (DCFH-DA)를 이용하여 확인하였다. HepG2 세포 (1×10⁵ cells/well)를 black 96 well plate에 24시간 배양한뒤 100% ethanol로 추출한 여주잎 추출물을 농도별(3.
(2017)의 방법을 변형하여 세포 내생성된 활성산소종의 양을 형광물질인 2'-7'dichlorofluorescin diacetate (DCFH-DA)를 이용하여 확인하였다. HepG2 세포 (1×10⁵ cells/well)를 black 96 well plate에 24시간 배양한뒤 100% ethanol로 추출한 여주잎 추출물을 농도별(3.125, 6.25 12.5, 25μg/mL)로 DMEM에 녹여 2시간 동안 전처리하였다. 이후 각 well에 1mM TBHP를 첨가하여 산화적 스트레스를 유도하였다.
반응 후 200μL의 phosphate-buffered saline으로 세포를 2 회 세척한 후 Hank’s balanced salt solution을 가해 빛이 들어오지 않도록 하여 37^oC의 CO₂ incubator에 방치하였다. 2시간 후 synergy HTx (BioTek, Winooski, VT, USA)를 이용해 여기파장 485nm와 방출파장 530nm에서 세포 내활성산소종 함량을 측정하였다.

대상 데이터

본 실험에 사용된 여주잎은 충남 부여군에서 재배된 것을 재배농 가로부터 제공받아 사용하였으며, 수세 후 건조하여 동결 건조 하였고, 이를 냉동보관 하였다. 또한 dimethyl sulfoxide (DMSO), butylated hydroxytoluene (BHT), Folin- ciocalteu’s reagents, tert-butyl hydroperoxide (TBHP), α- α-diphenyl-β-picrylhydrazyl(DPPH), 2, 2'azino-bis-3-ethyl- benzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) 및 3-(4, 5-dimethyl- thiazol)-2, 5-diphenyltetrazoliumbromide (MTT)는 Sigma사 (Sigma Chemical Co.
건조 하였고, 이를 냉동보관 하였다. 또한 dimethyl sulfoxide (DMSO), butylated hydroxytoluene (BHT), Folin- ciocalteu’s reagents, tert-butyl hydroperoxide (TBHP), α- α-diphenyl-β-picrylhydrazyl(DPPH), 2, 2'azino-bis-3-ethyl- benzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) 및 3-(4, 5-dimethyl- thiazol)-2, 5-diphenyltetrazoliumbromide (MTT)는 Sigma사 (Sigma Chemical Co., St Louis, MO, USA)에서 구입하여 실험에 사용하였다. Gallic acid는 Santa Cruz Biotechnology 사(Santa Cruz, CA, USA)에서 구매하였다.
, St Louis, MO, USA)에서 구입하여 실험에 사용하였다. Gallic acid는 Santa Cruz Biotechnology 사(Santa Cruz, CA, USA)에서 구매하였다. 또한 Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM), penicillin-streptomycin, fetal bovine serum (FBS)은 Gibco사(Lafayette, CO, USA) 에서 구입하였다.
Gallic acid는 Santa Cruz Biotechnology 사(Santa Cruz, CA, USA)에서 구매하였다. 또한 Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM), penicillin-streptomycin, fetal bovine serum (FBS)은 Gibco사(Lafayette, CO, USA) 에서 구입하였다.
45μm syringe filter로 여과하여 HPLC/DAD 분석에 사용하였다. 이동상으로 acetonitrile:methanol:dichloromethane =70:10:30과 acetonitrile:methanol:dichloromethane=75: 20:5 용액을 사용하였으며, 유속은 1mL/min, column (YMC-Pack Pro RS C₁₈, 250×4.6mm, 5μm, YMC Co., Tokyo, Japan) 오븐은 40^oC로 설정하였고 450nm에서 검출하였다.
, USA). 총 폴리페놀의 표준물질은 gallic acid (Santa Cruz Biotechnology Inc., Dallas, TX, USA)를 사용하였고, 결과 값은 mg gallic acid equivalent (GAE)/g으로 표시하였다.
이후 10% AlCl6H₂O를 150μL 첨가하고 5분 후, 1M NaOH 1mL를 가하여 반응액의 흡광도를 510 nm에서 측정하였다. 총 플라보노이드 함량 확인을 위한 표준물질은 catechin (Sigma Chemical Co.)을 사용하였고, 결과 값은 mg catechin equivalent (CE)/g으로 표시하였다.
이후 반응액의 흡광도를 500 nm에서 측정하였다. BHT는 본 실험에서 양성대조군 시료로 사용하였다. 결과 값은 시료를 넣지 않은 대조군의 지질 과산화 흡광도 값을 이용하여 계산하였다.
HepG2 세포는 ATCC (American Type Culture Collection, CL-173, Manassas, VA, USA)에서 구입하여, 1% penicillin 과 10%의 FBS를 함유한 DMEM을 사용하여 37^oC의 5% CO₂ incubator에서 배양하였다. HepG2 세포는 96 well plate의 각 well당 3×10⁴개의 세포를 seeding하여 CO₂ incubator에서 18시간 동안 배양한 후 FBS가 첨가되지 않은 DMEM 배지에 100% ethanol로 추출한 여주잎 추출물을 농도별(3.

데이터처리

BHT는 본 실험에서 양성대조군 시료로 사용하였다. 결과 값은 시료를 넣지 않은 대조군의 지질 과산화 흡광도 값을 이용하여 계산하였다.
본 연구 결과는 모두 2회 이상의 반복 실험을 수행한 값이며, 결과 값은 평균±표준편차(standard deviation, SD)로 표시하였다. 통계분석은 SAS version 9.
통계분석은 SAS version 9.4 (SAS Institute Inc., Cary, NC, USA)를 이용하였으며, one-way ANOVA로 분석하여 Tukey’s test를 통해 p<0.05 수준에서 검증하였다.

이론/모형

여주잎의 vitamin C 함량은 기존 보고된 방법에 의해 진행하였다(Phillips et al 2010). 시료 2g에 5% MPA (meta- phosphoric acid) 용액[1mM ethylenediaminetetraacetate disodium salt, 5mM tris(2-carboxyethyl) phosphine 첨가] 30mL를 첨가하고 균질화하였다.
여주잎의 환원력 측정은 Oyaizu (1986)의 방법을 응용하였다. 여주잎 ethanol 추출물 250μL에 0.

성능/효과

여주잎의 vitamin C의 함량은 69.44mg/100g이었고, beta- carotene의 함량은 43.68mg/100g으로 나타났다. 또한, 총함량은 65.
675mg/100g이 검출된다고 보고된 바 있다. 따라서 여주잎은 여주 생과보다 더 많은 beta-carotene을 함유하고 있음을 알 수 있었다.
본 연구에서는 ethanol 농도별 여주잎 추출물의 총 폴리페놀및 플라보노이드 함량을 알아보았고 분석한 결과는 <Table 2>에 나타내었다. 여주잎 추출물의 총 폴리페놀 함량은 100% ethanol 추출물이 18.07mg GAE/g residue이었고, 이는 60% ethanol 추출물(8.65mg GAE/g residue) 및 80% ethanol 추출물(11.92mg GAE/g residue)보다 높은 폴리페놀 함량을 보여주었다. 또한 총 플라보노이드 함량은 100% ethanol 추출물(4.
92mg GAE/g residue)보다 높은 폴리페놀 함량을 보여주었다. 또한 총 플라보노이드 함량은 100% ethanol 추출물(4.53mg CE/g residue)이 80% ethanol 추출물(4.04mg CE/g residue)과 60% ethanol 추출물(3.55mg CE/g residue)보다 높은 플라보노이드 함량을 함유하고 있는것으로 나타났다. Kang et al.
8배 높다고 하였다. 따라서 본 연구 결과를 통해 국내 여주잎의 영양학적 가치와 천연 항산화제로서의 활용 가능성을 확인할 수 있었다.
본 연구에서는 여주잎 ethanol 추출물의 생리활성 효과를 평가하기 위해 DPPH 및 ABTS 라디컬 소거능, 환원력 및 지질 과산화 억제능을 측정하였으며, 그 결과를 <Table 3>에 나타내었다. DPPH 라디컬 소거능은 100% ethanol 추출물 (70.30%)에서 80% ethanol 추출물(65.17%)과 60% ethanol 추출물(59.33%)보다 높게 나타났다. ABTS 라디컬 소거능은 100% ethanol 추출물(64.
07%를 나타낸다고 보고하였다. 따라서 다른 잎 ethanol 추출물의 라디컬소거능과 비교했을 때, 여주잎 ethanol 추출물은 우수한 라디컬 소거 활성을 나타냄을 확인하였고 전반적으로 100% ethanol 추출물의 항산화 활성이 가장 우수하였다.
여주잎 추출물을 첨가하지 않은 대조군에서는 시간이 지남에 따라 과산화 지질이 생성되어 지질 과산화 저해능이 점차적으로 감소하였다. 모든 추출물이 1mg/ mL 농도에서 유의적으로 지질 과산화를 억제하였으며, 2.5 시간이 지난 후 시료를 첨가하지 않은 대조군을 100%로 하였을 때 이에 비하여 60% ethanol 추출물은 73.77%, 80% ethanol 추출물은 72.90%, 100% ethanol 추출물은 91.45% 의 저해능을 나타냈다. 양성대조군으로 사용한 BHT는 200 μg/mL 농도에서 66.
79%로 보고하였다. 따라서 본 연구 결과, 여주잎은 우수한 라디컬 소거능 및지질 과산화 저해활성을 가진 것을 알 수 있었고, 천연 항산화제로서의 가치가 높을 것으로 기대할 수 있다.
본 연구에서 진행된 여주잎 ethanol 추출물의 항산화 활성 결과를 바탕으로, 100% ethanol 추출물의 항산화 활성이 가장 우수함을 확인하였다. 따라서 간세포에서 여주잎 100% ethanol 추출물 처리에 의한 세포 생존율 및 TBHP에 의한 보호 능을 측정한 결과를 <Figure 2>에 나타내었다.
따라서 간세포에서 여주잎 100% ethanol 추출물 처리에 의한 세포 생존율 및 TBHP에 의한 보호 능을 측정한 결과를 <Figure 2>에 나타내었다. 그 결과 세포 생존율은 100% ethanol 추출물 3.125, 6.25, 12.5, 25 μg/mL의 농도에서 각각 104.50, 98.53, 101.89, 102.65%로 나타나, 여주잎에 의한 세포에 대한 독성이 없음을 확인하였다. 또한, 산화적 스트레스에 의한 세포 보호능은 100% ethanol 추출물 3.
65%로 나타나, 여주잎에 의한 세포에 대한 독성이 없음을 확인하였다. 또한, 산화적 스트레스에 의한 세포 보호능은 100% ethanol 추출물 3.125, 6.25, 12.5, 25μg/mL의 농도에서 각각 63.12, 69.74, 73.89, 87.44%로 나타났다. 이는 대조군인 TBHP 처리군(50.
44%로 나타났다. 이는 대조군인 TBHP 처리군(50.19%)보다 모두 유의적으로 높은 생존율로, 그 중 25μg/mL의 농도에서 산화적 스트레스에 대해 가장 높은 생존율을 보여주었다. 따라서 TBHP 처리로 인해 발생한 산화적 스트레스의 증가를 여주잎 ethanol 추출물이 감소시킴으로써 간세포 보호 효과를 나타내는 것을 확인할 수 있었다.
19%)보다 모두 유의적으로 높은 생존율로, 그 중 25μg/mL의 농도에서 산화적 스트레스에 대해 가장 높은 생존율을 보여주었다. 따라서 TBHP 처리로 인해 발생한 산화적 스트레스의 증가를 여주잎 ethanol 추출물이 감소시킴으로써 간세포 보호 효과를 나타내는 것을 확인할 수 있었다. 기존 연구에서 flavonoid의 함량이 높다고 알려진 양파추출물은 TBHP에 의해 유도된 간세포 독성을 유의적으로 감소시켰다(Rhim & Lim 2005).
본 연구에서는 여주잎 ethanol 추출물의 활성산소 생성 억제능을 측정하기 위해 실험을 진행하였고, 그 결과를 <Figure 3>에 나타내었다. 100% ethanol 여주잎 추출물을 3.125, 6.25, 12.5, 25μg/mL의 농도별로 세포에 처리하였을 때 활성산소종의 발생이 각각 221.92, 187.87, 171.92, 157.55%였으며, TBHP 처리군(273.56%)보다 모두 유의적으로 활성산소의 생성을 억제시키는 것으로 나타났다. Cheon et al.
2019). 따라서 여주잎 추출물은 산화적 스트레스에 의한 활성산소 생성을 억제함으로써 세포 보호 효과를 나타내는 것으로 판단된다.
08mg/ 100g)를 풍부하게 함유하고 있었다. 또한 여주잎을 ethanol 농도에 따라 추출하여 폴리페놀 및 플라보노이드 함량을 분석한 결과, 100% ethanol 추출물에서 각각 18.07mg GAE/g residue 및 4.53mg CE/g residue로 가장 높게 나타났다. 여주잎 추출물의 라디컬 소거능과 환원력 또한 100% ethanol 추출물에서 ABTS 및 DPPH 라디컬 소거능이 각각 64.
53mg CE/g residue로 가장 높게 나타났다. 여주잎 추출물의 라디컬 소거능과 환원력 또한 100% ethanol 추출물에서 ABTS 및 DPPH 라디컬 소거능이 각각 64.28 및 70.30%이었으며 60 및 80% ethanol 추출물에 비하여 높은 라디컬 소거능을 보여주었고 환원력은 100% ethanol 추출물에서 가장 높게 나타났으나 80% ethanol 추출물과 유의적인 차이가 없었다. 지질 과산화 저해능은 100% ethanol 추출물이 91.
30%이었으며 60 및 80% ethanol 추출물에 비하여 높은 라디컬 소거능을 보여주었고 환원력은 100% ethanol 추출물에서 가장 높게 나타났으나 80% ethanol 추출물과 유의적인 차이가 없었다. 지질 과산화 저해능은 100% ethanol 추출물이 91.45%로 가장 높게 나타났고, 80% ethanol 추출물은 72.90% 및 60% ethanol 추출물은 73.77%의 억제 효과를 나타내었다. 간 세포에서 TBHP로 유도한 산화적 스트레스에 대하여 여주잎 추출물 최대 87.
77%의 억제 효과를 나타내었다. 간 세포에서 TBHP로 유도한 산화적 스트레스에 대하여 여주잎 추출물 최대 87.44%의 세포 보호 효과를 나타내었다. 뿐만 아니라 여주잎 추출물은 농도 의존적으로 활성산소종의 생성을 효과적으로 억제시켰다.
뿐만 아니라 여주잎 추출물은 농도 의존적으로 활성산소종의 생성을 효과적으로 억제시켰다. 본 연구 결과, 여주잎은 우수한 항산화 활성과 간세포 보호 효과를 나타냈으며, 천연 항산화제로서 활용 가능성을 보여주었다.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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