[논문]홍국발효 대두의 항산화 및 항당뇨 활성

김선희; 강순아

doi:10.9799/ksfan.2021.34.2.187

홍국발효 대두의 항산화 및 항당뇨 활성
Antioxidant and Anti-Diabetic Activities of Soybean Fermented with Monascus 원문보기

한국식품영양학회지 = The Korean journal of food and nutrition, v.34 no.2, 2021년, pp.187 - 195

김선희 (호서대학교 벤처대학원 융합공학과) , 강순아 (호서대학교 벤처대학원 융합공학과)

Abstract ▼ AI-Helper

This study was performed to investigate the antioxidant and antidiabetic activities of soybean fermented with Monascus. Also, the changes in the content of isoflavones and Monacolin K were analyzed. It was observed that the glycoside forms of daidzin and genistin were converted to aglycones of daidzein and genistein within 6 days of fermentation. The product can be used as a health functional material that can increase bioavailability. Monacolin K production was found to increase significantly with the progression of fermentation with an increase to 0.04 mg/g and 0.44 mg/g on 6 and 12 days of fermentation, respectively. The DPPH radical scavenging activity of soybean fermented with Monascus was significantly increased compared to that of soybean. The protein expression of inflammation-related genes (TNF-α, IL-6, and COX-2) in the MIN cell was significantly increased in the presence of alloxan compared to the normal group, but a decrease was observed in the presence of soybean fermented with Monascus. In conclusion, soybean fermented with Monascus showed the highest antidiabetic and antioxidant effects. These results suggest that soybean fermented with Monascus has the potential to be used as a beneficial ingredient with antidiabetic and antioxidant effects.

주제어

표/그림 (7)

그림 Fig. 1. The HPLC chromatogram of the bioconversion of soy isoflavones during fermentation of ultrafine pulverized soybean by Monascus sp. RY1. (a) UPS: ultrafine pulverized soybean, (b) 6 d: ultrafine pulverized soybean fermented with Monascus for 6 days, (c) 12 d: ultrafine pulverized soybean fermented with Monascus for 12 days.
표 Table 1. Bioconversion of soy isoflavones during fermentation of ultrafine pulverized soybean by Monascus sp. RY1
그림 Fig. 2. DPPH radical scavenging activity of UPS and UPSM. UPS: ultrafine pulverlized soybean, UPSM: ultrafine pulverlized soybean fermented with Monascus. Each value represents the mean±S.D. (n=3). ^a-dMeans with the different letters are significantly different (p<0.05) by Duncan's multiple range tests.
표 Table 2. Production of Monacolin K during fermentation of ultrafine pulverized soybean by Monascus sp. RY1
그림 Fig. 3. Relative NO concentration of ultrafine pulverlized soybean fermented (UPSM) with Monascus on MIN cell. Con: control, Alloxan: alloxan control, UPSM 25, 50, 100: alloxan control pretreated with UPSM 25, 50, 100 ug/mL. Each value represents the mean±S.D. (n=3). ^a-cMeans with the different letters are significantly different (p<0.05) by Duncan's multiple range tests.
그림 Fig. 4. Effect of ultra finely pulverlized soybean fermented with Monascus on MIN cell. A: control, B: alloxan control, C: alloxan control pretreated with UPSM-25 μg/mL, D: alloxan control pretreated with UPSM-50 μg/mL, E: alloxan control pretreated with UPSM-100 μg/mL.
그림 Fig. 5. Effect of Monacus fermented soybean on protein expression levels of TNF-α, IL-6 and COX-2 against alloxan induced pancreatic β-cell damage. Con: control, Alloxan: alloxan control, Alloxan+UPSM 25, 50, 100: alloxan control pretreated with UPSM 25, 50, 100 ug/mL. Each value represents the mean±S.D. (n=3). ^a-dMeans with the different letters are significantly different (p<0.05) by Duncan's multiple range tests.

AI 본문요약
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문제 정의

홍국균에 들어있는 monacolin K는 아세틸콜린을 방출시키는 신경말단의 능력을 강화하여 인슐린 분비를촉진시키며(Chang 등 2005), 흥국균의 발효를 통해 이소플라본은 배당체에서 비배당체로 전환이 증가되므로 한국인이 가장 많이 섭취하는 대두를 흥국균으로 발효하면 식품의 기능성이 향상될 수 있을 것이다. 따라서 본 연구에서는 항당뇨 활성을 상승시키는 monacolin K가 함유된 홍국균을 접종한 홍국발효 대두의 항산화 및 항당뇨 활성 평가를 통해 기능성 신소재 개발에 활용하고자 하였다.
본 연구는 홍국발효 대두의 항산화 및 항당뇨 활성효과를 검증하기 위해 이소플라본 및 monacolin K 함량 변화, 항산화 및 항당뇨 활성효과를 조사하였다. 홍국발효 대두의 이소플라본을 분석한 결과 배당체형인 daidzin과 genistin 형태는 Monascus sp.

제안 방법

Alloxan에 대한 항독소능 측정을 위하여 배지에 3-(4, 5- dimethy thiozol)-2, 5-diphenyl-tetrazolium bromide(MTT, Sigma- Aldrich Co., St. Louis, MO, USA) 100 μg을 첨가하여 4시간 동안 더 배양하였고, 배양이 된 후에는 배지를 버리고, dimethy lsulfoxide(DMSO, Sigma-Aldrich Co., St. Louis, MO, USA) 100 μL를 가하여 MTT의 환원에 의해 생성된 formazan 침전물을용해시킨 후 ELISA reader를 사용하여 540 nm에서 흡광도를 측정하였다(Carmichael 등 1987).
대조군은 추출 시료와 동량의 메탄올 용액을 혼합하여 실험시료와 동일한 과정으로 실험을 진행하였다. DPPH 라디칼 소거 활성능은 대조군이 50% 라디칼을 소거하는 시점의 시료의 양(EC₅₀, effective concen- tration)을 정하였다.
그 이후에 PBS-T 3회, PBS 1회로 세척한 다음 2차 항체를 실온에서 2시간 동안 처리하였다. IL-6, TNF-α, COX-2 및 α-TUBLIN (Santa Cruz, Dallas, TX, USA) 1차 항체를 사용하였고, 각각에 맞는 2차 항체를 사용한 후 LAS-4000(Fujifilm Life Science, Tokyo, Japan)을 이용하여 확인하였다(Feghali & Wright 1997; Pan 등 2018).
MIN celle 10% fetal bovine serum, penicillin(100 U/mL), streptomycin(100 U/mL) 및 nystatin(25 g/mL) 등을 함유한 RPMI 1640 배지에서 CO₂ 배양기(WS-180 CA, World Science Co., Bucheon, Korea)로 37℃, 5% CO₂조건에서 배양하였고, 3일마다 배양액을 교환하면서 배양하였다. MIN 세포에서 인슐린 분비능력을 배양한 췌도에서 농도가 60 mg/mL인 저혈당 농도의 배지(KRBB, 0.
, Bucheon, Korea)로 37℃, 5% CO₂조건에서 배양하였고, 3일마다 배양액을 교환하면서 배양하였다. MIN 세포에서 인슐린 분비능력을 배양한 췌도에서 농도가 60 mg/mL인 저혈당 농도의 배지(KRBB, 0.2% BSA)에서 1시간 동안 분비한 인슐린 농도를 ELISA kit(LINCO Research, Inc., Billerica, MA, USA)를 사용하여 ELISA-reader(VERSA max, micro-reader, MDS Co., MO, USA)를 이용하여 측정하였다.
Blocking 과정 후에는 PVDF membrane을 PBS-T 3회, PBS 1회로 세척한 다음 1차 항체를 4℃에서 overnight하면서 반응시켰다. 그 이후에 PBS-T 3회, PBS 1회로 세척한 다음 2차 항체를 실온에서 2시간 동안 처리하였다. IL-6, TNF-α, COX-2 및 α-TUBLIN (Santa Cruz, Dallas, TX, USA) 1차 항체를 사용하였고, 각각에 맞는 2차 항체를 사용한 후 LAS-4000(Fujifilm Life Science, Tokyo, Japan)을 이용하여 확인하였다(Feghali & Wright 1997; Pan 등 2018).
, Waltham, MA, USA)로 517 nm에서 측정하였다(Sham ma & Bhat 2009). 대조군은 추출 시료와 동량의 메탄올 용액을 혼합하여 실험시료와 동일한 과정으로 실험을 진행하였다. DPPH 라디칼 소거 활성능은 대조군이 50% 라디칼을 소거하는 시점의 시료의 양(EC₅₀, effective concen- tration)을 정하였다.
상등액을 syringe filter(PVDF nonsterile syringe filter 0.45 μm, 17 mm, National Scientific Supply Co., Claremont, CA, USA)로 여과하여 HPLC로 분석하였다(Oh 등 2018). 분석을 위한 columne C₁₈ column(5 μm pore size, 4.
세포의 생존율을 보기 위하여 MIN 세포주를 18시간 배양하고 96 well plate(Thermo Fisher Scientific, Inc., Waltham, MA, USA)에 1×10⁶/well 분포로 배양한 후, 70~80% 정도로 세포가 자라면 실험 시료인 대두 홍국발효물을 농도별로 25, 50, 100 μg/mL로 1시간 동안 전 처리한 후, alloxan 10 mM를 1~2시간 동안 병용 처리하였다. 홍국발효 대두의 농도별 처리에 의한 세포의 분화모습을 관찰하였다.
Column 온도는 35℃, 용매 flow ratee 1 mL/min으로 260 nm에서 측정하였다. 이소플라본 정량은 표준용액을 이용한 검량곡선을 이용하여 계산하였다. Waters HPLC systeme Model 2695 separation module system과 Model 2487 UV detector(Waters Corporation, Milford, MA.
정량하였다(Bradford MM 1976). 추출된 단백질을 SDS- polyacrylamide gel 전기영동으로 분리하고 polyvinylidene fluoride membrane(PVDF, Bio-Rad, National Scientific Supply Co., Claremont, CA, USA)으로 이동시킨 후, PBS-T를 함유한 5% 탈지유로 비특이적인 단백질을 blocking하였다. Blocking 과정 후에는 PVDF membrane을 PBS-T 3회, PBS 1회로 세척한 다음 1차 항체를 4℃에서 overnight하면서 반응시켰다.
췌장 β-세포에만 특이적으로 내독소성을 가지고 있는 alloxan의 처리를 통해 MIN 세포주의 혐기적인 상황에 대한대두 홍국발효물의 방어능력을 NO 생성율로 측정하였다. 세포의 생존율을 보기 위하여 MIN 세포주를 18시간 배양하고 96 well plate(Thermo Fisher Scientific, Inc.
홍국발효 대두 추출물 제조를 위해 일반 대두와 대두 홍국 발효 물을 -20℃에서 냉동시킨 뒤, 동결건조기(FD5512, Ilshin BioBase Co., Yangju, Korea)를 이용하여 건조하였다. 건조된 대두는 ultra-blender(Rumilly, Haute-Savoie, France)로 분말화한 뒤 시료 1 g과 에탄올 10 g을 혼합하여 25℃에서 8시간 동안 3회씩 교반기(MS-53MH, JEIO TECH.
, Waltham, MA, USA)에 1×10⁶/well 분포로 배양한 후, 70~80% 정도로 세포가 자라면 실험 시료인 대두 홍국발효물을 농도별로 25, 50, 100 μg/mL로 1시간 동안 전 처리한 후, alloxan 10 mM를 1~2시간 동안 병용 처리하였다. 홍국발효 대두의 농도별 처리에 의한 세포의 분화모습을 관찰하였다.

대상 데이터

, Milford, MA, USA)를 이용하여 237 nm에서 분석하였다. Monacolin K의 정량을 위해 표준물질인 mevinolin (Sigma- Aldrich Co., St. Louis, MO, USA)으로 표준정량곡선을 제조하여 이용하였다.
초미세 분쇄 소재의 액상 발효에 적합한 홍국균주는 한국생명공학연구원에서 개발하였고(Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology 2015), 최적 조건에 맞는 Monascus sp. RY1 균주를 이용한 홍국발효 대두를 제공받아 본 연구 시료로 사용하였다. 시료는 대두의 액상홍국발효를 위한 기본 배지로서 초미세분쇄 대두 80 g/L, KH₂PO₄ 2.
이소플라본 정량은 표준용액을 이용한 검량곡선을 이용하여 계산하였다. Waters HPLC systeme Model 2695 separation module system과 Model 2487 UV detector(Waters Corporation, Milford, MA. USA)를 사용하였다.
대두는 경상북도에서 생산한 백태(Glycine max)를 사용하여 건식 분쇄 공정인 에어제트 밀 및 그라인드 밀(Retsch ZM100, Retsch Inc., Rheinische, Germany)을 사용하여 초미세 분쇄하여 분말화하였다. 분말화시킨 대두의 입도를 lazer particle size analyzer(Beckman Coulter Inc.
RY1 균주를 이용한 홍국발효 대두를 제공받아 본 연구 시료로 사용하였다. 시료는 대두의 액상홍국발효를 위한 기본 배지로서 초미세분쇄 대두 80 g/L, KH₂PO₄ 2.5 g/L, MgSO₄ 1.0 g/L를 첨가한 배지로 구성하였다. 무기질소원으로 기본배지에 sodium nitrate, ammonium nitrate, ammonium chloride, ammonium sulfate를 1.
, Daejeon, Korea)로 교반하여 추출하였다. 추출한 용액은 감압농축기 (EYELA Rotary Evaporator N-1110V-W, Rikakikai, Co., Ltd., Tokyo, Japan)를 이용하여 농축 후 dimethyl sulfoxide(DMSO) 를 첨가하여 일정 농도로 제조한 뒤 본 실험의 시료로 사용하였다.

데이터처리

(n=3). ^a-cMeans with the different letters are significantly different (p<0.05) by Duncan’s multiple range tests.
(n=3). ^a-dMeans with the different letters are significantly different (p<0.05) by Duncan’s multiple range tests.
모든 실험의 데이터는 평균±표준편차(standard deviation, SD) 로 나타냈다. 통계분석을 위해 SPSS ver.
나타냈다. 통계분석을 위해 SPSS ver. 18 statistical software package(SPSS Inc., Chicago, IL, USA)를 이용하여 One-way analysis of variance(ANOVA)를 실시한 후 Duncan’s multiple range test를 이용하여 각 실험군 간의 유의성을 검증하였고, 모든 검정의 유의수준은 p<0.05을 적용하였다.

이론/모형

Western blot을 이용한 염증 단백질 발현 측정을 위하여 분리한 단백질은 Bradford assay 방법을 이용하여 단백질의 농도를 정량하였다(Bradford MM 1976). 추출된 단백질을 SDS- polyacrylamide gel 전기영동으로 분리하고 polyvinylidene fluoride membrane(PVDF, Bio-Rad, National Scientific Supply Co.
대두와 홍국발효대두의 발효기간에 따라 이소플라본 분석을 위해 Pyo & Lee(2006)과 Sun 등(2011)의 방법을 참고하였다. 시료 0.

성능/효과

Monacolin K는 생체 내 활성형인 acid 형과 비활성형인 lactone 형으로 생산되므로 각각에 대해 분석한 결과, 초미세 분쇄 대두를 발효한 경우 생산되는 monacolin K는 acid 형이 대부분인 것으로 나타났으며, lactone형의 생산은 매우 적었다. Acid 형과 lactone 형의 합계인 총 monacolin K 함량은, 발효 6일에는 0.04±0.01 mg/g으로 서서히 생산되어 발효 12일에 총 monacolin K는 0.44±0.02 mg/g으로 유의하게 증가하였고(p<0.05), 발효 20일에는 1.14±0.02 mg/g에 도달하면서 유의하게 증가하였다(p<0.05). Kang 등(2003)과 Lee 등(2015) 의 홍국발효 발아현미 연구에서도 홍국균 발효가 monacolin K 함량이 증가하여 본 연구와 유사한 경향을 보였다.
5에 나타내었다. Alloxan 처리에 의하여 증가되었던 TNF-α와 IL-6의 발현은 홍국발효 대두(UPSM)를 농도에 의존하여 유의적으로 감소하는 것을 볼 수 있었고, 특히 50 ug/mL와 100 ug/mL 처리군에서 크게 감소하였다(p<0.05). 또한, alloxan 처리에 의하여 증가한 COX-2 발현은 홍국발효 대두를 25 ug/mL와 50 ug/mL 처리에 의하여 통계적으로 유의하게 감소하는 것을 볼 수 있었다(p<0.
같다. Monacolin K는 생체 내 활성형인 acid 형과 비활성형인 lactone 형으로 생산되므로 각각에 대해 분석한 결과, 초미세 분쇄 대두를 발효한 경우 생산되는 monacolin K는 acid 형이 대부분인 것으로 나타났으며, lactone형의 생산은 매우 적었다. Acid 형과 lactone 형의 합계인 총 monacolin K 함량은, 발효 6일에는 0.
대두의 대표적인 이소플라본이며 배당체형인 daidzin과 genistin 형태는 Monascus sp. RY1 균주에 의한 발효 과정 중 생체활성형인 비배당체 daidzein 및 genistein으로 6일 이내에 거의 대부분 전환되는 것으로 나타났다. 대두의 daidzein 및 genistein 함량은 48.
05). UPSM의 라디칼 소거 능은 홍국쌀(33.62±1.33 mg/mL)보다 항산화 활성이 유의하게 높게 나타남으로서(p<0.05) 홍국 접종이 대두의 항산화 활성을 높인 것으로 나타났다. Park 등(2009)의 연구에 의하면 홍삼 추출물보다 홍국발효홍삼의 항산화능이 더 높아 본연구 결과와 유사한 경향을 보였다.
4에 나타내었다. 그 결과 홍국발효 대두(UPSM)의 농도가 증가할수록 세포의 생존율이 증가하였는데, 이는 alloxan 에 의하여 파괴되는 정도가 감소하였기 때문인 것으로 사료된다.
RY1 균주에 의한 발효 과정 중 생체활성형인 비배당체 daidzein 및 genistein으로 6일 이내에 거의 대부분 전환되는 것으로 나타났다. 대두의 daidzein 및 genistein 함량은 48.50±9.33 ug/g 및 2.04±1.34 ug/g이었으나 홍국발효 대두는 각각 315.59±20.67 ug/g 및 289.35±16.55 ug/g으로 홍국에 의한 발효과정에서 비 배당체의 전환이 유의하게 증가하였다(p<0.05). 또한, 발효 6일 째에각각 739.
05). 또한, alloxan 처리에 의하여 증가한 COX-2 발현은 홍국발효 대두를 25 ug/mL와 50 ug/mL 처리에 의하여 통계적으로 유의하게 감소하는 것을 볼 수 있었다(p<0.05). Suh 등(2003)의 연구에서는 대두의 이소플라본이 TNF-α와 IL-6의 발현을 억제한다는 보고를 하였고 본 연구에서는 홍국발효 과정에 의하여 염증성 사이토카인을 감소시키는 결과를 보였다.
2에 나타내었다. 본 실험에서 홍국발효 대두의 DPPH 라디칼 소거능 효과는 26.55±2.10 mg/mL로 발효 전 대두의 소거능 효과(88.70±1.58 mg/mL)에 비하여 유의하게 라디칼을 소거할 수 있는 항산화 활성이 높았다(p<0.05). 항산화 활성이 높은 양성대조군인 ascorbic acid(7.
즉, MIN 세포주의 혐기적인 상황에 대하여 홍국발효 대두(UPSM) 처리에 의한 방어능력이 입증되었다. 본 연구 결과에서 홍국발효 대두의 발효 과정 중 비배당체의 전환 및 Monacolin K 함량의 증가를 볼 수 있었고, 항산화 및 항당뇨 효과를 검증하였다. 이상과 같은 결과는 질환예방용 기능성식품개발에 홍국균 활용에 의한 기능성 소재개발에 도움이 될 것으로 사료된다.
대두에 함유된이소플라본은 aglycone(daidzein, genistein, glycitein), β-glucoside conjugates(glucosides, malonyl glucosides, acetyl glucosides) 등 3가지 타입이 있고 4개의 다른 화학 구조를 가지는데 대부분이 β-glucoside 형태로 존재하며 발효, 열처리와 같은 가공 과정은 기존 이소플라본의 화학적 구조, 구성 요소 등에 영향을 미친다(Ikeda 등 1995). 본 연구에서 홍국발효 시간이 경과함에 따라 비배당체 함량이 증가한 결과는 홍국발효는 대두의 이소플라본을 매우 효과적인 생리활성 형태인 유리 형태로 전환되는 것이 확인됨으로서 건강기능 소재로서 활용 가능성을 높여 주었다.
, Rheinische, Germany)을 사용하여 초미세 분쇄하여 분말화하였다. 분말화시킨 대두의 입도를 lazer particle size analyzer(Beckman Coulter Inc., Pasadena, CA, USA)로 분석한 결과, 평균 입도는 30.1 μm로 나타났으며 홍국발효 대두 제조 전, 액상 기질화를 진행하였다. 초미세 분쇄 소재의 액상 발효에 적합한 홍국균주는 한국생명공학연구원에서 개발하였고(Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology 2015), 최적 조건에 맞는 Monascus sp.
-6 및 COX-2의 발현은 홍국발효 대두(UPSM)에 의하여 농도 의존적으로 유의하게 감소하였다. 즉, MIN 세포주의 혐기적인 상황에 대하여 홍국발효 대두(UPSM) 처리에 의한 방어능력이 입증되었다. 본 연구 결과에서 홍국발효 대두의 발효 과정 중 비배당체의 전환 및 Monacolin K 함량의 증가를 볼 수 있었고, 항산화 및 항당뇨 효과를 검증하였다.
05)(Table 1). 즉, 홍국발효대두의배당체는 홍국균에 의하여 발효가 6일 진행될 때부터 비 배당체로 전환되는 양이 유의하게 증가하였다(p<0.05). 홍국발효 대두는 발효 6일 째에 배당체는 239.
Monacolin K 생성은 홍국발효가 진행됨에 따라 함량이 유의적으로 증가하는 것으로 나타났다. 항산화 활성을 측정한 결과 대두보다홍국발효대두의 DPPH 라디칼 소거능은 유의하게 증가하여홍국발효에 의해 항산화 효과가 증가하는 것으로 나타났다. 항당뇨 효과는 췌장 β-세포에만 특이적으로 내독소성을 가지고 있는 alloxan의 처리에 의하여 증가되었던 TNF-α, Ⅱ.
3과 같다. 홍국발효 대두(UPSM)을 농도별로 전 처리하였을 때 UPSM25는 49.9±4.8%, UPSM50은 77.1±5.6%, UPSM100은 79.5±5.9%로 50~100 ug/mL 농도에서 유의적으로 NO 생성률이 증가하여 가장 높은 NO 저해능을 보였다(p<0.05). Lee 등 (2010)의 보고에 의하면 높은 항산화능을 가진 식품 소재일수록 높은 NO 저해능을 보인다고 하였는데, 이는 본 연구에서 홍국발효 대두(UPSM)이 높은 항산화 활성과 NO 저해 능을 보인 결과와도 유사하였다.
05). 홍국발효 대두는 발효 6일 째에 배당체는 239.56±15.68 ug/g이었으나 비배당체는 1, 864.27±21.59 ug/g으로 홍국에 의한 발효 과정에서 비배당체로의 전환이 유의하게 증가하면서 이루어짐을 확인하였다(p<0.05). 본 연구에서 보여준 결과는 Hwang & Pyo(2018)의 연구에서도 홍국발효 콩에서 발효 기간에 따라 배당체 이소플라본은 대부분 비배당체형으로 생물 전환되는 것으로 보고되었다.

후속연구

이상과 같은 결과에서 홍국균을 이용한 발효과정은 항염증효과를 증가시키는 결과를 보임으로써 기능성 소재의 가공 방법에 활용가치를 높일 것으로 보인다. 그러나 국내 및 국외에서 홍국발효 대두의 항당뇨 활성을 검증한 자료는 미비하고홍국발효를 통해 항당뇨 활성효과를 얻은 연구는 없어 본 연구 결과가 홍국균 활용에 의한 당뇨병 예방 기능성 소재개발에 도움이 될 것이라 생각된다.
본 연구 결과에서 홍국발효 대두의 발효 과정 중 비배당체의 전환 및 Monacolin K 함량의 증가를 볼 수 있었고, 항산화 및 항당뇨 효과를 검증하였다. 이상과 같은 결과는 질환예방용 기능성식품개발에 홍국균 활용에 의한 기능성 소재개발에 도움이 될 것으로 사료된다.
Lee 등(2020)의 곡류 및 두류의 항산화, 항당뇨 효과를 조사한 연구에 의하면 항산화 활성이 항당뇨 효과와 유의적 상관관계를 보이면서 두류가 간세포의 포도당흡수를 증가시켜 당뇨병에 도움을 준다고 보고하였다. 이상과 같은 결과에서 홍국균을 이용한 발효과정은 항염증효과를 증가시키는 결과를 보임으로써 기능성 소재의 가공 방법에 활용가치를 높일 것으로 보인다. 그러나 국내 및 국외에서 홍국발효 대두의 항당뇨 활성을 검증한 자료는 미비하고홍국발효를 통해 항당뇨 활성효과를 얻은 연구는 없어 본 연구 결과가 홍국균 활용에 의한 당뇨병 예방 기능성 소재개발에 도움이 될 것이라 생각된다.
04 ㎎/㎏)에서 가장 높은 함량을 보였다. 이와 같은 결과로 보아 홍국발효 대두는 생체 내 활성형인 monacolin K 함유율이 높아 건강기능 소재로 활용 가치가 높을 것으로 판단된다.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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