[논문]진균류 균사체의 고체발효 커피생두로부터 조제한 원두커피의 생리활성

신지영; 김훈; 김동구; 백길훈; 정헌상; 유광원

doi:10.3746/jkfn.2013.42.3.487

진균류 균사체의 고체발효 커피생두로부터 조제한 원두커피의 생리활성
Pharmacological Activities of Coffee Roasted from Fermented Green Coffee Beans with Fungal Mycelia in Solid-state Culture 원문보기

한국식품영양과학회지 = Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition, v.42 no.3, 2013년, pp.487 - 496

신지영 ((주)코시스바이오 기업부설연구소) , 김훈 ((주)코시스바이오 기업부설연구소) , 김동구 ((주)코시스바이오 기업부설연구소) , 백길훈 (충북대학교 식품공학과) , 정헌상 (충북대학교 식품공학과) , 유광원 (한국교통대학교 식품영양학과)

초록
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커피의 생리활성을 증진시키기 위해 고체발효를 이용하여 인도네시아산 Mandheling 커피생두에 3종의 버섯 균사체(Phellinus linteus, PL; Hericium erinaceum, HE; Ganoderma lucidum, GL) 및 2종의 홍국균 균사체(Monascus purpureus, MP; Monascus ruber, MR)를 배양하였다. 균사체-고체발효 커피생두를 로스팅하여 얻은 원두커피는 decoction법에 의한 열수추출물과 reflux에 의한 에탄올추출물로 조제하였는데, 열수추출물(HW, 수율 17.7~25.3%)은 에탄올추출물(EE, 9.5~12.2%)보다 더 높은 수율을 나타내었다. 2종의 홍국균 균사체-고체발효 커피생두로부터 조제된 원두커피 열수추출물(MP-CB-HW, MR-CB-HW)은 비발효 원두커피 또는 3종 버섯 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물보다 높은 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량과 DPPH 자유라디칼 소거능을 나타내었다. 또한, 홍국균 균사체-고체발효 원두커피 중에서도 MR-CB-HW는 가장 높은 마크로파지 활성과 마이토젠 활성을 나타내었다(CB-HW의 1.32배와 1.40배). MP-CB-EE와 MR-CB-EE는 $100{\mu}g/mL$의 시료농도에서 세포에 대한 독성을 나타내지 않으면서도 LPS로 유도된 RAW 264.7 세포의 산화질소(NO)의 생성을 효과적으로 억제하였다(LPS 처리군의 38.6과 37.0%). 한편, 홍국균 균사체를 이용한 고체발효는 카페인 함량에 영향을 주지 않으면서 클로로겐산을 유의적으로 증가시켰다($76.21{\sim}76.73{\mu}g/mL$). 결론적으로 원두커피의 생리활성은 M. purpureus 또는 M. ruber와 커피생두의 고체발효에 의해서 증진되었으며 이러한 결과는 홍국균-고체발효 원두커피가 기능성 커피음료의 소재로 이용될 가능성을 제시하는 것으로 사료된다.

Abstract ▼ AI-Helper

Green coffee beans (CB, Indonesian Mandheling) were fermented with three kinds of mushrooms (Phellinus linteus, PL; Hericium erinaceum, HE; Ganoderma lucidum, GL) or two kinds of mycelia from molds (Monascus purpureus, MP; Monascus ruber, MR) using solid-state culture to enhance physiological activity. After the roasting of fermented green coffee beans, roasted coffees were extracted with a hot-water decoction or 95% ethanol reflux. Yields from hot water extracts (HW, 17.7~25.3%) were higher than those from ethanolic extracts (EE, 9.5~12.2%). Hot-water extracts of roasted coffees from green coffee beans fermented with two molds (MP-CB-HW and MR-CB-HW) showed higher total polyphenols, flavonoids, and DPPH free radical scavenging activity than roasted coffees from non-fermented (CB-HW) or fermented green coffee beans with the three mycelia from mushrooms. MR-CB-HW also had the most potent macrophage stimulating and mitogenic activity (1.32 and 1.40-fold of CB-HW, respectively). In addition, MP-CB-EE and MR-CB-EE did not show any cytotoxicity to the RAW 264.7 cell at a concentration of $100{\mu}g/mL$, and these extracts significantly inhibited nitric oxide (NO) production from the LPS-stimulated RAW 264.7 cell line (38.6 and 37.0% of the LPS-treated group). Meanwhile, the chlorogenic acid concentrations of MP-CB-HW or MR-CB-HW highly increased (to 76.21 or $76.73{\mu}g/mL$, respectively), but caffeine concentrations were not affected by solid-state fermentation. In conclusion, the physiological activities of roasted coffees were enhanced by the solid-state culture of green coffee beans with M. purpureus or M. ruber, suggesting that these roasted coffees could possibly serve industrial applications as functional coffee beverages.

주제어

AI 본문요약
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문제 정의

그러므로 본 연구에서는 원두커피의 생리활성 증진을 위하여 식품에 사용이 허가된 버섯 3종(상황, 노루 궁뎅이 및 영지버섯) 및 홍국균 2종의 5종 진균류 균사체를 커피생두에 고체발효 시킨 후 원두커피로 배전하고 추출물의 생리활성을 평가함으로써 다양한 만성질환을 예방할 수 있는 기능성 커피 소재로서의 가능성을 제시하고자 하였다.
본 연구는 커피생두 자체를 고체배지로 이용하여 진균류균사체를 생육시킴으로써 균사체의 생리활성 성분과 함께 커피생두에 대한 균주의 생물학적 전환능력에 의해 커피생두의 기능성을 증진시키는 것이 목적이다. 따라서 KFDA에서 식품으로 사용이 허가된 버섯 균사체 3종(PL, HE 및 GL)과 홍국균 균사체 2종(MP 및 MR)을 이용하여 현재 국내에서 대중적으로 가장 많이 유통되고 있는 대표적인 커피생두 품종 중 하나인 인도네시아산 Mandheling 커피생두에 고체발효시켜 3종 버섯 및 2종 홍국균 균사체–고체발효 커피생두를 조제하였다.

제안 방법

12시간 뒤 배양액을 모두 제거하고 새로운 10% FBS-DMEM 160 μL와 시료 20 μL를 함께 첨가하고 30분 후에 LPS(1μg/mL)를 처리하여 24시간 동안 배양하였다.
24시간 후 상등액을 제거하고 남은 마크로파지에 0.1% Triton X-100(Sigma–Aldrich Co.) 25 μL로 세포막을 용해시켜 분비된 lysosomal phosphatase에 기질로서 100 mM p-nitrophenyl phosphate(Sigma–Aldrich Co.) 150 μL와 0.1 M citrate buffer 50 μL를 첨가하여 반응시켰다.
2시간 후 상등액을 제거하고 non–adherent cell을 RPMI 1640medium으로 3회 세척한 후 10% FBS–RPMI 180 μL와 시료 20 μL를 분주하여 배양하면서 마크로파지를 자극하였다.
3종 버섯 및 2종 홍국균 균사체–고체발효 커피생두를 coffee roaster(Genecafe, Ansan, Korea)에서 중배전(235～240℃, 12～13분간 로스팅)하여 각각의 원두커피(roasted coffee)로 조제한 후 coffee grinder(Bazzatra, Gyeonggi–do, Korea)를 이용하여 동일 크기로 분쇄하였다.
3종의 버섯 및 2종의 균사체-고체발효 커피생두의 배전과 분쇄로 조제된 원두커피의 열수 및 에탄올추출물의 nitric oxide(NO)의 생성 억제능을 측정하기 위해 먼저 시료의 독성여부를 EZ-Cytox 용액을 사용하여 확인하고(25) saline 대조군에 대한 세포생존율(%)로 표시하였다. 한편 NO 생성억제능은 RAW 264.
커피 생두는 국내에서 많이 유통되고 있는 대중적 품종 중 하나인 인도네시아산 Mandheling 커피생두(green coffee bean, CB)를 사용하였다. 5종 진균류 균사체-고체발효 Mandheling 커피생두(PL-CB, HE-CB, GL-CB, MP-CB 및 MR-CB)는 물로 침지 및 가압 멸균한 커피생두에 종균 10%를 접종하고 10일 동안 배양하여 조제하였다(Table 1). 다음으로 중배전을 통해 원두커피로 조제한 후 원두커피 열수추출물(PL-CB-HW, HE-CB-HW, GL-CB-HW, MP-CB-HW와 MR-CB-HW) 및 에탄올 추출물(PL-CB-EE, HE-CB-EE, GL-CB-EE, MP-CB-EE와 MR-CB-EE)로 조제하였으며, 시료대조군인 비발효-원두커피의 열수추출물(CB-HW)과 에탄올 추출물(CB-EE)도 조제하였다.
CB, roasted coffee from non-fermented Indonesian Mandheling green coffee bean; PL-CB/HE-CB/GL-CB/MP-CB/MR-CB, roasted coffee from fermented green coffee bean with 3 mushroom mycelia (PL, P. linteus; HE, H. erinaceum or GL, G. lucidum) or 2 molds mycelia (MP, M. purpureus or MR, M. ruber) for 10 days, respectively.
UV detector의 파장은 280 nm를 사용하였으며 시료의 주입량은 20 μL로 하였고, 각각의 표준물질을 10～1,000 ppm으로 분석하여 검량선을 작성한 후 진균류 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물의 카페인 및 클로로겐산의 함량(μg/mL)을 도출하였다.
골수세포는 동일 마우스의 대퇴부 뼈에서 회수한 다음 여과, 세척하고 2.5×105 cells/mL로 조정하여 100 μL씩 well에 분주하고 conditioned medium을 50 μL씩 첨가하여 6일간 재배양하였다.
그러나 500μg/mL로 시료농도가 높아진 경우에는 CB와 PL-CB의 열수추출물에서 95% 이하의 유의적인 생존율을 나타냄으로써 RAW 264.7 세포주에 대한 NO 억제 활성을 측정하기 위한 열수 및 에탄올추출물의 농도는 독성이 발휘되지 않는 수준인 100 μg/mL의 농도에서 진행하였다(Table 2).
5종 진균류 균사체-고체발효 Mandheling 커피생두(PL-CB, HE-CB, GL-CB, MP-CB 및 MR-CB)는 물로 침지 및 가압 멸균한 커피생두에 종균 10%를 접종하고 10일 동안 배양하여 조제하였다(Table 1). 다음으로 중배전을 통해 원두커피로 조제한 후 원두커피 열수추출물(PL-CB-HW, HE-CB-HW, GL-CB-HW, MP-CB-HW와 MR-CB-HW) 및 에탄올 추출물(PL-CB-EE, HE-CB-EE, GL-CB-EE, MP-CB-EE와 MR-CB-EE)로 조제하였으며, 시료대조군인 비발효-원두커피의 열수추출물(CB-HW)과 에탄올 추출물(CB-EE)도 조제하였다. Table 1에서 나타낸 바와 같이 수율은 시료대조군인 비발효-커피생두로부터 조제된 원두커피 추출물이 열수에서 25.
따라서 KFDA에서 식품으로 사용이 허가된 버섯 균사체 3종(PL, HE 및 GL)과 홍국균 균사체 2종(MP 및 MR)을 이용하여 현재 국내에서 대중적으로 가장 많이 유통되고 있는 대표적인 커피생두 품종 중 하나인 인도네시아산 Mandheling 커피생두에 고체발효시켜 3종 버섯 및 2종 홍국균 균사체–고체발효 커피생두를 조제하였다.
먼저 구입한 커피생두 100 g(수분함량 13～14%)에 대해2배수의 물로 2시간 동안 30℃에서 침지하여 조직을 연화시킨 후, 물기를 제거한 다음 121℃에서 120분간 고압멸균 하였다. 멸균된 커피생두에 3종의 버섯 균사체(PL, HE 및 GL)및 2종의 홍국균 균사체(MP 및 MR) 액체종균을 10%(w/v)접종하고 PL과 GL은 30℃에서, HE, MP와 MR은 25℃에서 각각 고체배양 하였다.
먼저 구입한 커피생두 100 g(수분함량 13～14%)에 대해2배수의 물로 2시간 동안 30℃에서 침지하여 조직을 연화시킨 후, 물기를 제거한 다음 121℃에서 120분간 고압멸균 하였다. 멸균된 커피생두에 3종의 버섯 균사체(PL, HE 및 GL)및 2종의 홍국균 균사체(MP 및 MR) 액체종균을 10%(w/v)접종하고 PL과 GL은 30℃에서, HE, MP와 MR은 25℃에서 각각 고체배양 하였다. 5종 진균류 균사체-고체발효 커피생두는 모두 상이한 증식속도 및 경향을 나타내었으나, 일관성과 경제성을 고려하여 모두 10일 배양을 통한 고체발효 물로 조제하였으며, 발효가 종료된 커피생두는 모두 50℃ dryingoven(Jeio tech)에서 48시간 동안 건조하여 수분을 제거한5종의 균사체–고체발효 Mandheling 커피생두(PL–CB, HECB, GL–CB, MP–CB 및 MR–CB)로 조제되었다.
이들 성분들은 이미 많은 연구를 통하여 추출법 및 분석법이 확립되어 있다(32-35). 본 연구에서는 자체 동시분석법을 개발하여 분석을 진행하였으며 위 성분들이 물에 용해되는 수용성 성분으로 알려져 있기 때문에(36) 분석은 열수추출물로만 진행하였다.
비장세포 현탁액은 96-well plate에 90 μL씩 분주하고 적당한 농도로 희석한 시료 10 μL를 첨가하여 48시간 동안 5% CO2 배양기에서 배양하였으며, 시료의 마이토젠 활성은 10배 희석한 EZ-Cytox 용액을 사용한 WST assay(25)를 통해 측정하여 비장세포 증식도에 대한 relative activity(%)로 나타내었다.
세포현탁액은 10% FBS-RPMI로 세척하여 2×106cells/mL의 세포농도로 조정한 후 96-well plate에 180 μL씩 분주하고 적당히 희석된 시료를 20 μL 첨가하여 5일간 배양하고 상등 액(conditioned medium)만을 회수하여 골수세포 증식실험에 사용하였다.
시료의 Peyer's patch를 경유한 장관면역 활성은 배양액에 EZ-Cytox 용액 10 μL를 첨가하고 6시간 반응시킨 후 450 nm에서 흡광도를 측정하여 saline 대조군의 골수세포 증식도에 대한 relative activity(%)로 표시하였다.
에탄올추출물의 경우에는 배전 및 분쇄된 5종의 균사체고체발효 원두커피에 10배의 주정(95% ethanol)을 가하고 heating mantle(Misung Scientific Co., Yangjoo, Korea)로 환류추출법을 이용하여 2시간 동안 추출하였으며(3회 반복), 여과로 잔사를 제거하고 추출여과액은 원심분리 후 상등액을 농축 및 동결 건조하여 균사체 종류에 따른 에탄올추출물(PL–CB-EE, HE–CB-EE, GL–CB-EE, MP–CB-EE와 MR-CB-EE)로 조제하였다.
3종 버섯 및 2종 홍국균 균사체–고체발효 커피생두를 coffee roaster(Genecafe, Ansan, Korea)에서 중배전(235～240℃, 12～13분간 로스팅)하여 각각의 원두커피(roasted coffee)로 조제한 후 coffee grinder(Bazzatra, Gyeonggi–do, Korea)를 이용하여 동일 크기로 분쇄하였다. 원두커피의 용매추출물 중 열수추출물은 배전 및 분쇄된 5종 균사체-고체발효 원두커피에 20배 물을 가한 후 decoction법을 이용하여 2시간 동안 half volume이 되도록 추출하였으며(over 90℃), 여과지(No. 2)를 이용하여 잔사를 제거하였다. 추출여과액은 원심분리(7,600×g, 4℃, 30분)로 불용성 침전물을 제거하고 상등액은 농축 및 동결건조 하여 5종 진균류 균사체-고체발효 원두커피의 열수추출물로 조제하였다(상황버섯, PLCB-HW; 노루궁뎅이버섯, HE–CB–HW; 영지버섯, GLCB–HW; M.
이동상은 1% acetic acid(J.T. Baker, Phillipsburg, NJ, USA)와 acetonitrile(Burdick&Jackson, Muskegon, MI, USA)을 1.0 mL/min의 유속으로 사용하였으며, gradient 조건은 1% acetic acid와 acetonitrile을 0분에서 40분까지 92 : 8에서 73 : 27의 비율로 변화시켰고, 40분부터 45분까지는 73 : 27을 다시 92 : 8로 변화시켰다.
즉 0.2 mM DPPH radical 용액에 시료 50 μL를 가한 후 상온에서 60분간 반응시켜 반응액의 흡광도 변화를 517 nm에서 측정하여 표준물질인 ascorbic acid에 대한 mg ascorbic acid equivalents antioxidant capacity(AEAC)/100 mg 추출물로 비교, 산출하여 나타내었다.
즉 Folin–Ciocalteu's reagent가 알칼리 조건에서 시료의 polyphenol 화합물에 의해 환원되면 청색에서 노란색으로 발색되는 원리를 이용하여 추출물 시료 100 μL에 알칼리 조건을 형성하기 위해 2% Na2CO3을 2 mL를 가한 후 3분간 반응시키고 50%의 Folin–Ciocalteu's reagent(Sigma–Aldrich Co., St. Louis, MO, USA) 100 μL를 첨가해 30분간 반응시킨 후 반응액을 750 nm에서 측정함으로써 항산화 성분인 총 polyphenol의 함량을 확인하였다.
일반적으로 미생물 발효과정을 통해 기질 내 다양한 물질이 분해되고, 또 새로운 저분자 화합물이 생성된다고 많은 연구에서 보고되어 있다. 진균류 균사체를 통한 고체발효과정에서 나타나는 활성성분들의 변화를 확인하기 위해 커피의 대표적인 수용성 생리활성성분인 카페인과 클로로겐산을 분석하기로 하였다. 이들 성분들은 이미 많은 연구를 통하여 추출법 및 분석법이 확립되어 있다(32-35).
추출여과액은 원심분리(7,600×g, 4℃, 30분)로 불용성 침전물을 제거하고 상등액은 농축 및 동결건조 하여 5종 진균류 균사체-고체발효 원두커피의 열수추출물로 조제하였다(상황버섯, PLCB-HW; 노루궁뎅이버섯, HE–CB–HW; 영지버섯, GLCB–HW; M. purpureus, MP–CB-HW와 M. ruber, MRCB–HW).
커피에는 다양한 생리활성을 나타내는 화합물이 많이 존재한다고 이미 잘 알려져 있으며, 진균류 균사체를 통한 커피생두의 고체발효과정 동안 이들 성분들 간에도 다양한 변화가 일어날 것으로 예측하고 이들 성분의 변화를 확인하기 위하여 대표적인 생리활성 성분인 카페인과 클로로겐산을 HPLC system(YL Instrument Co. Ltd., Anyang, Korea)으로 분석하였다. 생리활성 성분 분석을 위한 장치로는 YL9110 quaternary pump(YL Instrument Co.
한편 비발효한 인도네시아산 Mandheling 커피생두를 배전한 원두커피의 열수추출물과 에탄올추출물(CB–HW와 CB–EE)을 각각 조제하여 활성을 비교하기 위한 시료대조군으로 사용하였다.
한편 비장세포를 이용한 마이토젠 활성은 BALB/c 마우스를 경추탈구시킨 후 멸균적으로 spleen을 적출하여 마쇄하고 0.2% NaCl로 적혈구를 용혈 시킨 후 금속망(#200)으로 여과하여 splenocyte를 회수하여 RPMI로 3회 세척한 다음5×106 cells/mL로 세포현탁액을 조제하였다.

대상 데이터

에서 구입하였고, 마이토젠 및 장관면역활성 측정에 사용된 EZ–Cytox cell viability kit는 Daeil Labservice Co.(Seoul, Korea)에서 입수하여 실험에 사용하였다.
) purpureus(MP)와 Monascus ruber(MR)의 홍국균 2종을 농촌진흥청 국립농업과 학원 농업유전자원센터(Suwon, Korea)로부터 분양받았다. 5종 진균류 균사체는 potato dextrose agar(PDA, Difco, Detroit, MI, USA) 평판배지에서 25～30℃로 10～15일간 배양한 후 potato dextrose broth(PDB, Difco)가 담긴 flask에 접종하고 shaking incubator(Jeio tech, Daejeon, Korea)에서 4~7일간 배양하여 커피생두 고체발효용 진균류 종균으로 제조하여 추후 실험에 사용하였다.
다양한 생리활성과 함께 오래전부터 식용으로 사용되어 식품의약품안전청(KFDA, Chungwon, Korea)에서 식품으로 사용이 허가된 버섯과 홍국균의 5종 진균류를 이용하여 생리활성이 증진된 균사체–고체발효 커피생두를 제조하기 위하여 상황버섯(P hellinus(P.) linteus, PL), 노루궁뎅이버섯(Hericium(H.) erinaceum, HE), 영지버섯(Ganoderma(G.) lucidum, GL)과 Monascus(M.) purpureus(MP)와 Monascus ruber(MR)의 홍국균 2종을 농촌진흥청 국립농업과 학원 농업유전자원센터(Suwon, Korea)로부터 분양받았다.
마크로파지 활성은 lysosomal phosphatase 효소 활성도를 통해 측정하였는데, ICR 마우스 복강에 3% thioglycollate medium(Sigma–Aldrich Co.)을 2 mL 주입하고 72시간 경과된 후에 유도된 복강 마크로파지를 회수하여 실험에 이용하였다.
생리활성 성분 분석을 위한 장치로는 YL9110 quaternary pump(YL Instrument Co. Ltd.)와 YL-9120UV/Vis detector(YL Instrument Co. Ltd.)를 이용하였으며, 분석칼럼은 Phenomenex(Torrance, CA, USA)의 Luna 5μC18을 사용하였다.
실험동물은 생후 6주령의 C3H/He, ICR 및 BALB/c 마우스(♀)를 (주)샘타코(Osan, Korea)에서 구입한 후 사육조에 넣고 정수된 물과 실험동물용 펠렛사료(Samyang Co., Incheon, Korea)를 자유 공급하였다. 한편 세포독성 및 nitricoxide 생성 억제실험에 사용된 RAW 264.
인도네시아산 Mandheling 커피생두는 (주)발리빈(Goyang, Korea)에서 구입하여 5종 진균류 균사체–고체발효의 커피생두로 제조하였다.
커피생두의 기능성을 증진시키기 위하여 식품으로 사용이 허가된 진균류 중 버섯 균사체 3종(PL, HE 및 GL)과 홍국균 균사체 2종(MP 및 MR)의 고체발효를 이용하였다. 커피 생두는 국내에서 많이 유통되고 있는 대중적 품종 중 하나인 인도네시아산 Mandheling 커피생두(green coffee bean, CB)를 사용하였다. 5종 진균류 균사체-고체발효 Mandheling 커피생두(PL-CB, HE-CB, GL-CB, MP-CB 및 MR-CB)는 물로 침지 및 가압 멸균한 커피생두에 종균 10%를 접종하고 10일 동안 배양하여 조제하였다(Table 1).
커피생두의 기능성을 증진시키기 위하여 식품으로 사용이 허가된 진균류 중 버섯 균사체 3종(PL, HE 및 GL)과 홍국균 균사체 2종(MP 및 MR)의 고체발효를 이용하였다. 커피 생두는 국내에서 많이 유통되고 있는 대중적 품종 중 하나인 인도네시아산 Mandheling 커피생두(green coffee bean, CB)를 사용하였다.
커피의 생리활성을 증진시키기 위해 고체발효를 이용하여 인도네시아산 Mandheling 커피생두에 3종의 버섯 균사체(Phellinus linteus, PL; Hericium erinaceum, HE; Ganoderma lucidum, GL) 및 2종의 홍국균 균사체(Monascus purpureus, MP; Monascus ruber, MR)를 배양하였다. 균사체-고체발효 커피생두를 로스팅하여 얻은 원두커피는 decoction법에 의한 열수추출물과 reflux에 의한 에탄올추출물로 조제하였는데, 열수추출물(HW, 수율 17.
한편 세포독성 및 nitricoxide 생성 억제실험에 사용된 RAW 264.7(murine macrophage cell line) 세포주는 한국세포주은행(Seoul, Korea)에서 분양받았으며, GenDEPOT(Houston, TX, USA)에서 구입한 10% fetal bovine serum(FBS), 100 U/mL의 penicillin 및 100 μg/mL의 streptomycin이 함유된 DMEM 배지를 사용하여 37℃, 5% CO2 배양기(Vision Scientific, Daejeon, Korea)에서 2～3일 간격으로 계대하면서 배양하였다.

데이터처리

실험결과에 대한 통계분석은 SPSS 통계프로그램(Statistical Package for the Social Science, Ver. 12.0, SPSS Inc., Chicago, IL, USA)을 이용하여 실험결과의 평균과 표준편차를 산출하고 평균치±SD로 나타내었으며, 분산분석(ANOVA)을 실시한 후 각 측정값 간의 유의성을 Duncan's multiple range test로 검증하였다.

이론/모형

3종의 버섯 및 2종의 홍국균 균사체–고체발효 커피생두로부터 조제된 원두커피의 열수 및 에탄올추출물의 총 폴리페놀 화합물 함량은 Folin–Ciocalteu법(20)을 이용하여 측정하였다.
LPS로 유도된 NO의 측정은 세포배양 상등액을 50 μL 취하여 Griess 시약 반응법(27)을 이용하여 측정하고 LPS처리군에 대한 억제율(%)로 나타내었다.
또한 Peyer's patch를 경유한 장관면역 활성은 Yu 등의 방법(26)을 이용하여 측정하였는데, C3H/He 마우스 복부를 절개하여 소장벽 위의 Peyer's patch를 적출한 후 마쇄하고 금속망(#200)으로 여과하여 Peyer's patch 세포액으로 조제하였다.
총 플라보노이드 함량은 Zhishen 등(21)의 방법에 따라 flavonoid에 알칼리를 반응시키면 flavan 또는 flavonol 배당체가 황색을 나타내는 것을 원리로 이용하여 측정하였는데, 80% 에탄올을 사용해 적당히 희석한 추출물 시료 500 μL에 10% aluminium nitrate 100 μL와 1 M potassium acetate 100 μL를 가한 후 암소에서 40분간 방치하고 변화한 흡광도 값을 415 nm에서 측정하여 표준물질인 quercetin에 대한 mg quercetin equivalents(QE)/100 mg 추출물로 나타내었다.

성능/효과

2%)보다 더 높은 수율을 나타내었다. 2종의 홍국균 균사체-고체발효 커피생두로부터 조제된 원두커피 열수추출물(MP-CB-HW, MR-CB-HW)은 비발효 원두커피 또는 3종 버섯 균사체-고체발효 원두커피 열수 추출물보다 높은 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량과 DPPH 자유라디칼 소거능을 나타내었다. 또한, 홍국균 균사체-고체발효 원두커피 중에서도 MR-CB-HW는 가장 높은 마크로파지 활성과 마이토젠 활성을 나타내었다(CB-HW의 1.
3종의 버섯 및 2종의 홍국균 균사체-고체발효 원두커피열수 및 에탄올추출물의 LPS 자극에 의한 RAW 264.7 세포주에 대한 nitric oxide(NO) 억제 활성을 검토하기 위하여 먼저 시료의 RAW 264.7 세포주에 대한 독성을 검토한 결과(Table 2), 100 μg/mL의 농도에서는 에탄올추출물의 경우saline 대조군과 유의적인 차이를 보이지 않거나 열수추출물에서는 95% 이상의 높은 생존율을 나타내었다.
5종 진균류 균사체-고체발효 커피생두는 모두 상이한 증식속도 및 경향을 나타내었으나, 일관성과 경제성을 고려하여 모두 10일 배양을 통한 고체발효 물로 조제하였으며, 발효가 종료된 커피생두는 모두 50℃ dryingoven(Jeio tech)에서 48시간 동안 건조하여 수분을 제거한5종의 균사체–고체발효 Mandheling 커피생두(PL–CB, HECB, GL–CB, MP–CB 및 MR–CB)로 조제되었다.
LPS로 유도된 RAW 264.7 세포에 대한 NO 생성 억제활성을 측정한 결과, 열수추출물의 경우 가장 높은 억제능을 나타낸 MR-CB-HW에서 LPS 자극군의 29.9%의 NO 생성을 억제하였으나, 이는 시료대조군인 비발효-원두커피 열수 추출물인 CB-HW(22.6% 억제)와 비교하여 유의적인 차이를 나타내지는 않았다(Fig. 2). 그러나 에탄올추출물에서는 2종의 홍국균-고체발효 원두커피 에탄올추출물인 MP-CBEE와 MR-CB-EE에서 각각 38.
MP-CB-EE와 MR-CB-EE는 100 μg/mL의 시료농도에서 세포에 대한 독성을 나타내지 않으면서도 LPS로 유도된 RAW 264.7 세포의 산화질소(NO)의 생성을 효과적으로 억제하였다(LPS 처리군의 38.6과 37.0%).
73 μg/mL). 결론적으로 원두커피의 생리활성은 M. purpureus 또는 M. ruber와 커피생두의 고체발효에 의해서 증진되었으며 이러한 결과는 홍국균-고체발효 원두커피가 기능성 커피음료의 소재로 이용될 가능성을 제시하는 것으로 사료된다.
결론적으로 홍국균 균사체를 이용한 고체발효-원두커피는 비 발효 일반 원두커피에 비해서 항산화, 면역 및 NO 생성을 억제하는 항염증활성을 증가시켰으며, 항산화 및 면역 활성에는 고분자 물질이, 염증유발 성분인 산화질소(NO)의 억제활성에는 저분자 성분이 관여하고 있음을 확인할 수 있었다. 또한 홍국균 균사체-고체발효 원두커피는 카페인 함량은 변화시키지 않은 채 중요한 생리활성에 관여하는 클로로겐산의 함량을 유의적으로 증가시켰다.
커피의 생리활성을 증진시키기 위해 고체발효를 이용하여 인도네시아산 Mandheling 커피생두에 3종의 버섯 균사체(Phellinus linteus, PL; Hericium erinaceum, HE; Ganoderma lucidum, GL) 및 2종의 홍국균 균사체(Monascus purpureus, MP; Monascus ruber, MR)를 배양하였다. 균사체-고체발효 커피생두를 로스팅하여 얻은 원두커피는 decoction법에 의한 열수추출물과 reflux에 의한 에탄올추출물로 조제하였는데, 열수추출물(HW, 수율 17.7～25.3%)은 에탄올추출물(EE, 9.5～12.2%)보다 더 높은 수율을 나타내었다. 2종의 홍국균 균사체-고체발효 커피생두로부터 조제된 원두커피 열수추출물(MP-CB-HW, MR-CB-HW)은 비발효 원두커피 또는 3종 버섯 균사체-고체발효 원두커피 열수 추출물보다 높은 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량과 DPPH 자유라디칼 소거능을 나타내었다.
한편, 에탄올추출물에서는 총 폴리페놀과 플라보노이드 함량 및 DPPH 자유라디칼 소거능 모두 시료대조군인 CB-EE에 비해 3종의 버섯 균사체-고체발효 열수추출물이 모두 낮은 활성을 나타내었다. 그러나 2종 홍국균 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물인 MP-CB-HW와 MR-CB-HW는 시료대조군인 비 발효-원두커피 또는 3종의 버섯 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물에 비해서 항산화 성분중 총 폴리페놀 함량에서는 CB-HW에 비해 1.2배, 플라보노이드 함량에서는 1.8배의 유의적으로 증가된 함량을 나타내었으며 DPPH 자유라디칼 소거능도 CB-HW보다 1.2배의 유의적인 활성의 증진을 확인할 수 있었다(Table 1). 그러나 에탄올추출물에서는 2종의 홍국균-고체발효 원두커피 열수추출물인 MP-CB-EE와 MR-CB-EE가 시료대조군인 비발효-원두커피 에탄올 추출물인 CB-EE와 유사한 총 폴리페놀(0.
2). 그러나 에탄올추출물에서는 2종의 홍국균-고체발효 원두커피 에탄올추출물인 MP-CBEE와 MR-CB-EE에서 각각 38.6과 37.0%의 억제효과를 나타내어, 시료대조군인 CB-EE(각각 27.4% 및 23.3% 억제)와 비교하여 유의적으로 높은 억제활성을 확인할 수 있었다(Fig. 2). 이러한 결과로부터 염증성 분자인 NO의 억제활성은 면역활성과 달리 저분자가 주로 포함되어 있다고 사료되는 에탄올추출물, 특히 MP-CB-EE와 MR-CB-EE에서 증가됨을 알 수 있었다.
2배의 유의적인 활성의 증진을 확인할 수 있었다(Table 1). 그러나 에탄올추출물에서는 2종의 홍국균-고체발효 원두커피 열수추출물인 MP-CB-EE와 MR-CB-EE가 시료대조군인 비발효-원두커피 에탄올 추출물인 CB-EE와 유사한 총 폴리페놀(0.9배)과 플라보노이드 함량(0.9～1.0배)을 보이거나 다소 저하된 DPPH 자유라디칼 소거능(0.8배)을 나타내었다(Table 1). 이러한 결과로부터 진균류 중 홍국균에 의한 커피 생두의 고체발효는 비 발효-커피생두 또는 버섯 균사체-고체발효보다 항산화 성분과 활성을 증진시키는 것으로 확인되었으며, 감소된 수율(CB-HW, 25.
결론적으로 홍국균 균사체를 이용한 고체발효-원두커피는 비 발효 일반 원두커피에 비해서 항산화, 면역 및 NO 생성을 억제하는 항염증활성을 증가시켰으며, 항산화 및 면역 활성에는 고분자 물질이, 염증유발 성분인 산화질소(NO)의 억제활성에는 저분자 성분이 관여하고 있음을 확인할 수 있었다. 또한 홍국균 균사체-고체발효 원두커피는 카페인 함량은 변화시키지 않은 채 중요한 생리활성에 관여하는 클로로겐산의 함량을 유의적으로 증가시켰다. 현재 커피는 대중적으로 맛과 향이 중요한 기호식품으로만이 주로 이용되고 있지만, 홍국균 균사체를 이용한 고체발효 원두커피는 식품 외 기능성소재 등의 다양한 소재로 이용 가능할 것으로 사료된다.
2종의 홍국균 균사체-고체발효 커피생두로부터 조제된 원두커피 열수추출물(MP-CB-HW, MR-CB-HW)은 비발효 원두커피 또는 3종 버섯 균사체-고체발효 원두커피 열수 추출물보다 높은 총 폴리페놀 및 플라보노이드 함량과 DPPH 자유라디칼 소거능을 나타내었다. 또한, 홍국균 균사체-고체발효 원두커피 중에서도 MR-CB-HW는 가장 높은 마크로파지 활성과 마이토젠 활성을 나타내었다(CB-HW의 1.32배와 1.40배). MP-CB-EE와 MR-CB-EE는 100 μg/mL의 시료농도에서 세포에 대한 독성을 나타내지 않으면서도 LPS로 유도된 RAW 264.
마크로파지 증식활성은 Fig. 1A와 같이 나타내었는데, 시료농도 100 μg/mL에서 시료대조군인 비발효-원두커피 열수추출물(CB-HW)과 3종의 버섯 균사체-고체발효원두커피 열수추출물인 PL-CB-HW, HE-CB-HW 및 GLCB-HW는 유사한 활성(0.9～1.0배)을 나타낸 반면, 2종의 홍국균 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물인 MP-CBHW와 MR-CB-HW는 각각 CB-HW에 비해 1.18배와 1.32배의 유의적으로 증가된 활성을 나타내었다.
면역 활성을 측정하기 위해 3종의 버섯 및 2종의 홍국균 균사체-고체발효 원두커피 열수 및 에탄올추출물은 모두 증류수에 일정농도로 용해시켜 사용하였다. 마크로파지, 마이토젠 및 장관면역 활성 등의 면역활성에서 에탄올추출물은 열수추출물에 비해 대체적으로 낮은 활성을 나타냄으로써 에탄올추출물의 저분자보다는 물에 추출되는 고분자 물질이 주로 면역활성에 관여하는 것으로 관찰되었다. 일반적으로 면역 활성을 자극하는 활성성분, 즉 다당류 또는 단백다당 등의 고분자 화합물은 저분자가 용출되는 에탄올추출물보다 물 추출물에 포함되는 보고(28)와도 일치되는 결과를 나타내었다.
먼저 xanthine 유도체 중의 하나로 인체 내 신경 전달체계를 자극하여 각성, 강심 및 이뇨작용(37) 등의 생리활성을 나타내는 카페인의 경우 Fig. 3에서 나타낸 바와 같이 5종의 진균류 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물에서 비 발효 원두커피 열수추출물과 비교하여 모두 변화가 거의 없는 것으로 나타났다(44.28～55,46 μg/mL).
3종 버섯 및 2종 홍국균 균사체를 이용하여 제조한 균사체-고체발효 커피생두로부터 중배전을 통하여 조제한 원두커피의 열수 및 에탄올추출물에 대한 총 폴리페놀과 플라보노이드 함량 및 DPPH 자유라디칼 소거능은 Table 1과 같이 나타내었다. 먼저 버섯 균사체의 경우, 열수추출물에서는 노루궁뎅이버섯 균사체-고체발효 열수추출물(HE-CB-HW)만이 시료대조군인 비발효-원두커피 열수추출물(CB-HW)에 비해 유의적으로 높은 총 폴리페놀 함량을 나타내었으며, 플라보노이드 함량에서는 3종의 버섯 균사체-고체발효 열수추출물 모두 CB-HW보다 유사하거나 약간 높은 경향을 확인할 수 있었다. 그러나 DPPH 라디칼 소거능에서는 대조군인 HE-CB-HW보다 유의적으로 증가된 활성을 나타내지는 않았다.
32배의 유의적으로 증가된 활성을 나타내었다. 에탄올추출물에서는 전체적으로 열수추출물에 비해 낮은 활성(CB-HW에 비해 0.73～0.90배)을 나타내었으며, 열수추출물에서 가장 높은 활성을 나타낸 2종의 홍국균 균사체-고체발효 원두커피의 경우에도 에탄올추출물(MP-CB-EE 및 MR-CB-EE)에서는 CB-HW에 비해 0.79～0.83의 활성만을 나타내었다(Fig. 1A).
2). 이러한 결과로부터 염증성 분자인 NO의 억제활성은 면역활성과 달리 저분자가 주로 포함되어 있다고 사료되는 에탄올추출물, 특히 MP-CB-EE와 MR-CB-EE에서 증가됨을 알 수 있었다.
8배)을 나타내었다(Table 1). 이러한 결과로부터 진균류 중 홍국균에 의한 커피 생두의 고체발효는 비 발효-커피생두 또는 버섯 균사체-고체발효보다 항산화 성분과 활성을 증진시키는 것으로 확인되었으며, 감소된 수율(CB-HW, 25.3%; MP-CB-HW, 22.2%; MR-CB-HW, 23.1%)에도 불구하고 항산화활성이 증진된 효과를 나타낸 것으로 미루어 홍국균 균사체 발효과정 중 커피생두에서 다양한 물질로부터 항산화 관련 성분으로의 전환 가능성이 일어나고 있음을 나타내는 것으로 확인되었다.
3). 최근 커피에서 추출 및 정제된 클로로겐산이 Svetol 및 GCA라는 이름으로 상품화되었으며, 식품첨가물로 다양하게 유통되고 있는 것을 감안할 때 본 연구에서 나타난 바와 같이 비 발효 원두커피에 비해 클로로겐산이 약 2배 정도 증가된 홍국균 균사체-고체발효 원두커피는 산업화에도 매우 긍정적일 것이라 사료된다.
02배)를 나타내지 않았다. 한편 장관면역 활성 결과에서는 Fig. 1C에서 나타낸 바와 같이 3종의 버섯 및 2종의 홍국균 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물 또는 에탄올추출물이 시료대조군인 비발효-원두커피 및 비발효-발아 원두커피 열수 또는 에탄올추출물과 유의적인 활성 차이를 나타내지 않았다.
3%를 나타내었다. 한편 진균류 균사체-고체발효 커피생두의 경우에는 2종 홍국균 균사체-고체발효 커피생두의 원두커피가 3종 버섯 균사체의 원두커피에 비해 열수추출물에서는 2.1～4.5%, 에탄올 추출물의 경우에도 0.3～2.5% 가량 수율이 높은 것으로 나타났는데, 이러한 수율에서의 차이는 균사체의 증식과도 연관이 있는 것으로 사료되었다. 즉 Table 1의 하단 사진에서 제시한 것처럼 5종 균사체의 증식을 육안으로 관찰한 결과, 균사체의 종류에 따라 증식속도는 상이하게 다르겠지만 동일한 배양시간(10일) 동안 홍국균 균사체-고체발효 커피생두가 버섯 균사체-고체발효 커피생두보다 월등히 높은 증식을 나타내고 있음을 확인할 수 있었기 때문이다.
그러나 DPPH 라디칼 소거능에서는 대조군인 HE-CB-HW보다 유의적으로 증가된 활성을 나타내지는 않았다. 한편, 에탄올추출물에서는 총 폴리페놀과 플라보노이드 함량 및 DPPH 자유라디칼 소거능 모두 시료대조군인 CB-EE에 비해 3종의 버섯 균사체-고체발효 열수추출물이 모두 낮은 활성을 나타내었다. 그러나 2종 홍국균 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물인 MP-CB-HW와 MR-CB-HW는 시료대조군인 비 발효-원두커피 또는 3종의 버섯 균사체-고체발효 원두커피 열수추출물에 비해서 항산화 성분중 총 폴리페놀 함량에서는 CB-HW에 비해 1.

후속연구

오래전부터 한방 및 민간생약으로 사용되어 온 진균류는 특히 최근에 액체배양을 통해 얻은 균사체의 항산화활성, 항암활성과 면역증강 활성 등의 생리활성에 대한 연구가 꾸준히 진행되고 있다(16-19). 따라서 이러한 진균류 균사체가 커피생두를 영양원으로 이용하여 생육함으로써 균류의 생물학적 전환능력(biotransformation)을 유도할 수 있다면 커피생두의 유용성분 증진과 균사체 증식에 따른 생리활성 시너지 효과 및 카페인 중독증 등의 부작용 완화를 기대할 수 있어 균사체가 배양된 커피생두의 커피음료 또는 기능성 소재 활용성이 높을 것으로 사료된다.
한편, 본 연구에서 가장 우수한 효과를 나타낸 홍국균에는 azaphilone 색소류(monascin, ankaflavin, rubropuctatin, monascorbiurin, rubropunctamine 및 monascorburamine)에 의한 항염증 작용, γ-aminobutyric acid의 신경전달 및 혈압강하 효과, dimerumic acid, tannin, phenol 및 unsaturated fatty acids 등에 의한 항산화 작용 등 다양한 생리활성이 이미 보고되어 있으므로(43-47), 홍국균 균사체의 단순한 첨가에 의한 커피의 생리활성 증진이 아니라 발효과정에 의해 균사체의 생물학적 전환이 유도되었음을 명백히 밝히기 위해서는 활성 획 분의 정제 및 구조 동정 등이 수반되어야 할 것이다. 또한 다양한 생리활성의 추가연구로 기존 커피에서 문제가 되고 있는 카페인 중독증(caffeinism) 및 대사질환 억제활성 등과 관련된 추가적인 연구 또한 필요할 것으로 사료된다.
한편, 본 연구에서 가장 우수한 효과를 나타낸 홍국균에는 azaphilone 색소류(monascin, ankaflavin, rubropuctatin, monascorbiurin, rubropunctamine 및 monascorburamine)에 의한 항염증 작용, γ-aminobutyric acid의 신경전달 및 혈압강하 효과, dimerumic acid, tannin, phenol 및 unsaturated fatty acids 등에 의한 항산화 작용 등 다양한 생리활성이 이미 보고되어 있으므로(43-47), 홍국균 균사체의 단순한 첨가에 의한 커피의 생리활성 증진이 아니라 발효과정에 의해 균사체의 생물학적 전환이 유도되었음을 명백히 밝히기 위해서는 활성 획 분의 정제 및 구조 동정 등이 수반되어야 할 것이다.
또한 홍국균 균사체-고체발효 원두커피는 카페인 함량은 변화시키지 않은 채 중요한 생리활성에 관여하는 클로로겐산의 함량을 유의적으로 증가시켰다. 현재 커피는 대중적으로 맛과 향이 중요한 기호식품으로만이 주로 이용되고 있지만, 홍국균 균사체를 이용한 고체발효 원두커피는 식품 외 기능성소재 등의 다양한 소재로 이용 가능할 것으로 사료된다. 한편, 본 연구에서 가장 우수한 효과를 나타낸 홍국균에는 azaphilone 색소류(monascin, ankaflavin, rubropuctatin, monascorbiurin, rubropunctamine 및 monascorburamine)에 의한 항염증 작용, γ-aminobutyric acid의 신경전달 및 혈압강하 효과, dimerumic acid, tannin, phenol 및 unsaturated fatty acids 등에 의한 항산화 작용 등 다양한 생리활성이 이미 보고되어 있으므로(43-47), 홍국균 균사체의 단순한 첨가에 의한 커피의 생리활성 증진이 아니라 발효과정에 의해 균사체의 생물학적 전환이 유도되었음을 명백히 밝히기 위해서는 활성 획 분의 정제 및 구조 동정 등이 수반되어야 할 것이다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	커피란 무엇인가?	커피는 쓴맛, 떫은 맛, 신맛, 단맛 등이 조화되어 만들어지는 대표적인 음료로서 전 세계적으로 가장 널리 음용되고 있는 기호식품으로 우리나라에서도 커피전문점 확산과 자가소비 증가 등 커피시장이 지속적으로 성장하고 있다. 커피에는 다른 식품에 비해 폴리페놀 등의 항산화성분 함량이 높아 세포 손상을 유발하는 자유라디칼 소거능이 높다고 알려져 있으며(1,2), 최근에는 신경세포 보호효과를 갖는 lipophilic antioxidant와 chlorogenic acid 등이 커피생두보다 로스 팅한 원두커피에 높은 함량을 나타낸다는 결과도 보고되고 있다(3).
	홍국균 균사체를 이용한 고체발효 원두커피가 식품 외 기능성소재 등의 다양한 소재로 이용 가능할 것으로 사료되는 이유는 무엇인가?	결론적으로 홍국 균 균사체를 이용한 고체발효-원두커피는 비 발효 일반 원두커피에 비해서 항산화, 면역 및 NO 생성을 억제하는 항염증활성을 증가시켰으며, 항산화 및 면역 활성에는 고분자 물질이, 염증유발 성분인 산화질소(NO)의 억제활성에는 저분자 성분이 관여하고 있음을 확인할 수 있었다. 또한 홍국 균 균사체-고체발효 원두커피는 카페인 함량은 변화시키지 않은 채 중요한 생리활성에 관여하는 클로로겐산의 함량을 유의적으로 증가시켰다. 현재 커피는 대중적으로 맛과 향이 중요한 기호식품으로만이 주로 이용되고 있지만, 홍국균 균사체를 이용한 고체발효 원두커피는 식품 외 기능성소재 등의 다양한 소재로 이용 가능할 것으로 사료된다.
	커피의 과다섭취는 어떤 문제를 유발하는가?	또한 커피는 알츠하이머(4), 파킨슨 병(5), 제2형 당뇨병(6), 콜레스테롤(7), 심장 질환 및 간경변(8-10) 등에도 우수한 보호효과를 갖는 것으로 알려지면서 기호식품을 넘어서 커피의 약리적인 효과에도 많은 연구가 이루어지고 있는 추세이다. 그러나 커피의 과다섭취는 정서불안, 신경과민, 수면장애 및 위장장애 등의 카페인 중독증(caffeinism)을 유발할 수 있다고 알려져 있으며(11), 카페인이 지방산화를 증가시켜 혈중 유리지방산, 콜레스테롤 및 중성지질함량을 높여 심혈관계, 특히 관상동맥질환을 발생시킬 수 있다는 연구(12,13)와 함께 이를 부정하는 연구도(14,15) 지속적으로 보고되어 커피 섭취와 심혈관계 질환과의 상관성 은 여전히 논쟁이 되고 있다. 따라서 커피의 유용성분 극대화와 함께 유해성분을 감소시키기 위한 다양한 공정개발과 이에 따른 기능성커피의 개발은 일상적으로 섭취하는 기호식품을 통한 다양한 만성질환 예방에 크게 기여할 수 있다고 사료된다.

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표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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