한우 등심조직 내 인슐린 조절 유전자의 발현이 도체중에 미치는 영향에 관한 연구 Association of Insulin-related Genes Expression with Carcass Weight in Loin Muscle of Korean Cattle (Hanwoo)원문보기
PPAR signaling pathway는 지방대사와 지방세포 분화를 조절하는 대표적인 대사회로이기 때문에 가축에 있어서 주로 육질과의 연관성 연구가 진행되었다. 하지만, 최근 들어 육량(체중)과 관련이 있다는 연구결과가 보고되고 있다. 본 논문에서는 PPAR signaling pathway에 존재하는 48개 유전자 중에서, pathway 분석을 통하여 체중에 가장 영향을 주는 인슐린 대사 호르몬에 의해 조절 받는 16개 유전자를 선별하여 거세 한우 20두에서 유전자 발현을 조사하였다. 유전자 발현과 도체중과의 관련성 분석을 위하여 회귀분석을 수행하였으며, 3개 유전자(ACSL6, FADS2, ILK)가 통계적으로 유의한 결과(p<0.05)를 보였다. 마지막으로, pathway 분석을 통하여 한우의 도체중과 관련이 있는 3개 유전자를 공통적으로 조절하는 포도당(D-glucose)이 존재함을 확인하였다.
PPAR signaling pathway는 지방대사와 지방세포 분화를 조절하는 대표적인 대사회로이기 때문에 가축에 있어서 주로 육질과의 연관성 연구가 진행되었다. 하지만, 최근 들어 육량(체중)과 관련이 있다는 연구결과가 보고되고 있다. 본 논문에서는 PPAR signaling pathway에 존재하는 48개 유전자 중에서, pathway 분석을 통하여 체중에 가장 영향을 주는 인슐린 대사 호르몬에 의해 조절 받는 16개 유전자를 선별하여 거세 한우 20두에서 유전자 발현을 조사하였다. 유전자 발현과 도체중과의 관련성 분석을 위하여 회귀분석을 수행하였으며, 3개 유전자(ACSL6, FADS2, ILK)가 통계적으로 유의한 결과(p<0.05)를 보였다. 마지막으로, pathway 분석을 통하여 한우의 도체중과 관련이 있는 3개 유전자를 공통적으로 조절하는 포도당(D-glucose)이 존재함을 확인하였다.
The peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) signaling pathway is well known as a candidate pathway related to meat quality in mammals. In particular, there are many studies on the relationship between the PPAR signaling pathway and intramuscular fat. However, recent studies have demonstrat...
The peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) signaling pathway is well known as a candidate pathway related to meat quality in mammals. In particular, there are many studies on the relationship between the PPAR signaling pathway and intramuscular fat. However, recent studies have demonstrated that genes in the PPAR signaling pathway are associated with carcass weight in cattle. Among 48 genes in the PPAR signaling pathway, 16 genes are related to the insulin that regulates the adipocyte glucose metabolism and thus affects body weight. Therefore, we conducted an investigation to try to identify candidate genes associated with the carcass weight and relationships between the expressions of these 16 genes in the loin muscle of Hanwoo (Korean cattle). From regression analysis, the three genes (ACSL6, FADS2, and ILK) showed significant effects with regard to carcass weight (p<0.05). Finally, we analyzed the common regulators of the significant genes from pathway analysis. The significant genes are regulated by insulin as well as D-glucose. These findings show that the differentially expressed genes are possible candidate genes associated with carcass weight in the longissimus muscle of Korean cattle.
The peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) signaling pathway is well known as a candidate pathway related to meat quality in mammals. In particular, there are many studies on the relationship between the PPAR signaling pathway and intramuscular fat. However, recent studies have demonstrated that genes in the PPAR signaling pathway are associated with carcass weight in cattle. Among 48 genes in the PPAR signaling pathway, 16 genes are related to the insulin that regulates the adipocyte glucose metabolism and thus affects body weight. Therefore, we conducted an investigation to try to identify candidate genes associated with the carcass weight and relationships between the expressions of these 16 genes in the loin muscle of Hanwoo (Korean cattle). From regression analysis, the three genes (ACSL6, FADS2, and ILK) showed significant effects with regard to carcass weight (p<0.05). Finally, we analyzed the common regulators of the significant genes from pathway analysis. The significant genes are regulated by insulin as well as D-glucose. These findings show that the differentially expressed genes are possible candidate genes associated with carcass weight in the longissimus muscle of Korean cattle.
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문제 정의
ILK 유전자가 근육세포 분화에 관여하며, 도체중에 영향을 미치는 myogenin 유전자 발현과 관련되어 있다는 보고는 있으나, 현재까지 ILK 유전자의 연구가 가축의 육량 형질과 관련되어 있다는 직접적인 보고는 없는 실정이다. 그러나 유전자의 발현과도체형질과의 관련성을 연구한 본 연구에서 한우 집단 내 도체중과 유의한 관련성이 확인하였다. 이러한 결과들을 종합해볼 때 ILK 유전자가 근육조직의 발생 및 발달에 관여하는 다양한 유전자들을 조절하여 근육의 생성 및 성장, 그리고 체중에영향을 미치는 것으로 판단되나, 앞으로 관련성에 대한 충분한 연구가 진행되어야 될 것으로 보인다.
본 논문은 소의 PPAR signaling pathway에 관여하는 48개유전자 중, 체중 조절에 관여하는 인슐린에 영향을 받는 16개유전자를 대상으로 한우의 도체중과 유전자 발현에 대한 연관성 분석을 수행하였다. 그 결과 3개 유전자(ILK, FADS2 및ACSL6)가 통계적으로 유의함을 확인할 수 있었으며, 유전자간 상호작용 분석을 통하여 인슐린 이외에 이들을 공통적으로조절하는 포도당이 존재함을 확인할 수 있었다.
본 연구는 소의 PPAR signaling pathway에 관여하는 48개유전자를 대상으로 Ppathway 분석을 통해 체중 조절에 중요한 역할을 담당하는 인슐린과 연관성을 보이는 16개 유전자를선정한 후 한우 집단 20두를 대상으로 유전자 발현 양상과육량 형질을 대표하는 도체중과의 관련성을 살펴보았다. 유전자의 발현량과 도체중과의 관련성 분석결과 3개의 유전자Acyl-CoA synthetase long-chain family member 6 (ACSL6),Fatty acid desaturase 2 (FADS2), Integrin-linked kinase (ILK)가 도체중과 관련성이 확인되었으며, 이러한 결과는 향후 한우 육량 형질 개량을 위한 좋은 후보 유전자로 활용될 수 있을것으로 보인다.
본 연구는 소의 육질 및 육량형질과 관련성이 보고된 PPARsignaling pathway에 존재하는 48개 유전자 중에서 체중 조절에 가장 큰 영향을 미치는 인슐린과 관련된 유전자를 선발하고, 선발된 유전자의 발현과 한우 도체중과의 연관성 분석을위해 진행되었다. PPAR signaling pathway에 존재하는 48개유전자 중에서 인슐린과 상호작용을 하는 유전자를 선발하기위하여 Pathway studio (version 6.
제안 방법
65℃에서 5분간변성 후 즉시 얼음 위에서 냉각한 후 5X buffer 4 μl, 0.1 MDTT 2 μl, RNase inhibitor (Promega) 0.5 U 및 reverse transcriptase (SuperScript Ⅱ Reverse Transcriptase, InvitrogenLife Technologies) 1 μl를 첨가하여 42℃에서 60분간 반응시킨후, 70℃에서 15분간 반응시켜 reverse transcriptase를 불활성화 시킨 후 Real-time PCR의 주형으로 사용하였다.
각 PCR 반응은 95℃에서 10분간 예비 변성한 후 95℃에서 15초, 60℃에서 1분간 40회 반복하여 수행하였다. PCR 반응 종결 후 meltingcurve 작성을 통하여 유전자 증폭의 정확성을 재확인하였다.유전자 발현량 내부 보정을 위해 4개의 house keeping 유전자(GAPDH, ß-actin, RPLP0 및 18S rRNA)의 발현을 조사하여gene-stability 값을 기준으로 가장 안정된 발현을 보이는 2개의 유전자를 선발하였다.
마지막으로, Pathway Studio 소프트웨어를 활용하여 도체중과 유의한 관련성을 보인 3개의 유전자에 대하여 유전자간상호작용 분석을 수행하여 공통적으로 유전자들과 관련성이있는 인자를 탐색하였다. 그 결과 3개의 유전자는 인슐린에영향을 받고 있는 것 이외에 포도당인 D-glucose라는 저분자(small molecule)를 공통 조절인자로 공유하는 것을 알 수 있었다(Fig.
선발된 2개의 유전자 ß-actin과 18SrRNA의 발현량을 이용하여 각각의 유전자 발현량을 보정하였고, 보정된 발현량을 이용하여 통계분석에 사용하였다.
시료로부터 추출된 총 RNA를 이용하여 cDNA를합성하고, 합성된 cDNA 0.2 μg을 주형으로 2X Power SYBRGreen PCR Master mix (Applied Biosystems, UK)와 각각의primer set을 이용하여 7500 Real time PCR system (AppliedBiosystems)을 통하여 분석하였다.
유전자 발현량 내부 보정을 위해 4개의 house keeping 유전자(GAPDH, ß-actin, RPLP0 및 18S rRNA)의 발현을 조사하여gene-stability 값을 기준으로 가장 안정된 발현을 보이는 2개의 유전자를 선발하였다.
총 RNA 2 μg에 random primer(Promega, USA) 1 μl, 2.5 mM dNTP 1 μl를 첨가하고, DEPC를 처리한 증류수로 총 12 μl가 되도록 하였다.
한우 등심 육으로부터 총 RNA의 추출, cDNA의 합성 및Real-time PCR을 통한 유전자 발현량 분석은 기존에 보고된방법을 약간 변형하여 아래와 같이 진행하였다[18]. 등심 육으로부터 총 RNA는 TRIzol (Invitrogen Life Technologies, USA)을 이용하여 다음과 같이 진행하였다.
대상 데이터
본 연구는 소의 육질 및 육량형질과 관련성이 보고된 PPARsignaling pathway에 존재하는 48개 유전자 중에서 체중 조절에 가장 큰 영향을 미치는 인슐린과 관련된 유전자를 선발하고, 선발된 유전자의 발현과 한우 도체중과의 연관성 분석을위해 진행되었다. PPAR signaling pathway에 존재하는 48개유전자 중에서 인슐린과 상호작용을 하는 유전자를 선발하기위하여 Pathway studio (version 6.0, Stratagene, La Jolla, CA)[30]를 활용하였다. Pathway studio는 기존 보고된 문헌을 바탕으로 유전자와 유전자의 상호작용을 추출해주는 소프트웨어로써, 선정된 16개 유전자와 인슐린과의 관련성에 대한 문헌자료는 Table 3에 정리하였다.
획득된 RNA pellet은 70% 에탄올을 이용하여 세척한 후 건조하고, DEPC를 처리한 멸균증류수에 녹여 사용하였다. RNA 추출을 위해 사용한 chloroform,isopropanol, 에탄올 및 DEPC는 모두 Sigma 회사의 제품을사용하였으며, 추출된 총 RNA는 RNeasy MiniElute cleanupkit (Qiagen Co., Ltd., USA)을 이용하여 정제 후 cDNA 합성에이용하였다.
유전자의 발현양상과 도체중과의 관련성 분석을 위하여 국립축산과학원에서 생산한 한우 고급육 생산용 배합사료를 사용하여 동일한 조건으로 사양된 28~30개월령의 거세 한우 20두를 활용하였다. 동물실험은 축산과학원 동물실험윤리위원회(Institutional Animal Care and Use Committee)의 승인(승인번호 8552)하에 수행되었다.
조직으로부터 추출된 총 RNA는 유전자 발현분석을 위한cDNA 합성에 이용하였다. 총 RNA 2 μg에 random primer(Promega, USA) 1 μl, 2.
데이터처리
Pathway studio는 기존 보고된 문헌을 바탕으로 유전자와 유전자의 상호작용을 추출해주는 소프트웨어로써, 선정된 16개 유전자와 인슐린과의 관련성에 대한 문헌자료는 Table 3에 정리하였다. 선정된 16개 유전자에 대하여동일한 사양 조건으로 사육된 거세 한우 집단 20두를 대상으로 유전자 발현량을 분석하였고, 발현량과 도체중과의 관련성분석을 위해 회귀분석을 실시하였다. 그 결과, ACSL6, FADS2및 ILK 유전자의 발현이 도체중에 있어 유의한 결과(p<0.
이론/모형
House keeping 유전자의 선발 및 발현량 보정은 R의‘SLqPCR’ package [19]를 활용하였다.
유전자의 발현량이 도체중에 미치는 영향을 분석하기 위하여 R statistical program의 Rregression 모델을 이용하였고,분석에 사용한 모형은 다음과 같다.
유전자의 발현양상을 분석하기 위하여 Real-time PCR법을이용하였다. 시료로부터 추출된 총 RNA를 이용하여 cDNA를합성하고, 합성된 cDNA 0.
성능/효과
본 논문은 소의 PPAR signaling pathway에 관여하는 48개유전자 중, 체중 조절에 관여하는 인슐린에 영향을 받는 16개유전자를 대상으로 한우의 도체중과 유전자 발현에 대한 연관성 분석을 수행하였다. 그 결과 3개 유전자(ILK, FADS2 및ACSL6)가 통계적으로 유의함을 확인할 수 있었으며, 유전자간 상호작용 분석을 통하여 인슐린 이외에 이들을 공통적으로조절하는 포도당이 존재함을 확인할 수 있었다. 이러한 결과는 향후 한우 육량 형질 개량을 위한 좋은 후보 유전자로 활용될 수 있을 것으로 보인다
마지막으로, Pathway Studio 소프트웨어를 활용하여 도체중과 유의한 관련성을 보인 3개의 유전자에 대하여 유전자간상호작용 분석을 수행하여 공통적으로 유전자들과 관련성이있는 인자를 탐색하였다. 그 결과 3개의 유전자는 인슐린에영향을 받고 있는 것 이외에 포도당인 D-glucose라는 저분자(small molecule)를 공통 조절인자로 공유하는 것을 알 수 있었다(Fig. 2). 포도당은 각 세포들의 에너지원으로 작용하며,인슐린은 생체 내 근육과 지방조직에서 포도당을 흡수하여이용할 수 있도록 유도한다.
그 결과, ACSL6, FADS2및 ILK 유전자의 발현이 도체중에 있어 유의한 결과(p<0.05)를보임을 확인하였다(Table 3, Fig. 1).
현재까지 ACSL에 대한 가축 형질과의 관련성연구는 부족한 실정이며, 특히 육량 형질에 대한 연구는 아직보고된 바 없다. 그러나 본 연구에서 유전자들의 발현량과 도체중과의 관련성을 분석한 결과 지방대사에 관여하는 ACSL6유전자가 도체중과 양의 상관관계가 있음을 확인하였다. 근육의 성장에 있어 ACSL6 유전자의 발현은 glucose 대사에 관여하는 Glucose transporter type 4 (GLUT4) 유전자와 함께 증가됨을 확인하였고[3], myostatin-null (Mstn-/-) 모델을 이용한유전자 발현 연구를 통해 myostatin 결핍 마우스에서 지방대사에 관여하는 ACSL6 등의 유전자 발현이 증가됨이 확인되었다[37].
인슐린 분비에 따른 간의 포도당 신생(gluconeogenesis) 및 당원분해(glycogenolysis)에 대한 대사 작용은 체중과 직접적인 관계가 있다고 보고되었다[4]. 따라서 인슐린과 포도당과의 상호작용은 3개 유전자(ACSL6, FADS2 및 ILK)가 인슐린에 의해 조절되며, 포도당역시 3개의 유전자 발현에 영향을 주는 요소로 작용할 수 있을것으로 보인다.
또한 Zhu등[39]은 FADS2 유전자 발현조절 영역 내 유전자변이(SNP)가닭의 성장형질에 밀접하게 관련되어 있음을 보고하였다. 본연구에서도 FADS2 유전자의 발현이 한우 도체중과 양의 상관관계가 확인되었으며, 이러한 결과들은 PPAR signaling pathway 내 존재하는 FADS2 유전자가 지방함량 등 육질 형질뿐만 아니라 도체중과 같은 육량 형질과도 관련되어 있음을 나타낸다고 할 수 있다.
05)과 양의 상관관계를 가지고 있음이 확인되었다[36]. 이러한 결과로 살펴보았을 때, 육량 또는 도체중과 지방 형질에 관여하는 유전자군은 비슷한 대사회로 내에서 상호조절을 통해 형질을 결정할 것으로 판단되며, PPAR signaling pathway에서 지방산 조성(fatty acids composition)에 관련된 유전자인FADS2 및 ACSL6 유전자가 근육 내 지방산 함량과 조성뿐만아니라 도체 형질을 결정하는 등지방 두께, 배최장근 단면적,체지방 형질을 결정하는 원인 유전자로 작용할 것이라 예측된다.
또한 FADS2 transgenic mice를이용한 연구에 따르면, 근육 내 linoleic acid 함량이 19% 증가되며, 87%의 arachidonic acid 증가를 확인하였다[5]. 이러한연구 결과들을 살펴보면, 잘 알려진 바와 같이 FADS2 유전자는 불포화지방산 생합성에 관여하는 주요한 유전자임을 확인할 수 있다. 뿐만 아니라 FADS2는 최근 연구들을 통해 지방산함량 등과의 관련성 이외에 도체 형질과 관련되어 있음이 보고되고 있다.
후속연구
한우는 육질을 목표로 지난 30여 년간 개량을 통해근내지방도는 높아졌지만, 상대적으로 육량 등급은 떨어지는실정이다. 따라서 육질 개선 연구뿐 아니라 육량을 보완할 수있는 연구가 동시에 진행되어야 할 것이다. 도체중은 근육 또는 결합조직(connective tissue), 체지방(body fat)의 발달에 따라 영향을 받으며, 최종적으로 육량 변화의 요인으로 작용하게 된다.
본 연구는 소의 PPAR signaling pathway에 관여하는 48개유전자를 대상으로 Ppathway 분석을 통해 체중 조절에 중요한 역할을 담당하는 인슐린과 연관성을 보이는 16개 유전자를선정한 후 한우 집단 20두를 대상으로 유전자 발현 양상과육량 형질을 대표하는 도체중과의 관련성을 살펴보았다. 유전자의 발현량과 도체중과의 관련성 분석결과 3개의 유전자Acyl-CoA synthetase long-chain family member 6 (ACSL6),Fatty acid desaturase 2 (FADS2), Integrin-linked kinase (ILK)가 도체중과 관련성이 확인되었으며, 이러한 결과는 향후 한우 육량 형질 개량을 위한 좋은 후보 유전자로 활용될 수 있을것으로 보인다.
본 연구는 소의 PPAR signaling pathway에 관여하는 48개유전자를 대상으로 Ppathway 분석을 통해 체중 조절에 중요한 역할을 담당하는 인슐린과 연관성을 보이는 16개 유전자를선정한 후 한우 집단 20두를 대상으로 유전자 발현 양상과육량 형질을 대표하는 도체중과의 관련성을 살펴보았다. 유전자의 발현량과 도체중과의 관련성 분석결과 3개의 유전자Acyl-CoA synthetase long-chain family member 6 (ACSL6),Fatty acid desaturase 2 (FADS2), Integrin-linked kinase (ILK)가 도체중과 관련성이 확인되었으며, 이러한 결과는 향후 한우 육량 형질 개량을 위한 좋은 후보 유전자로 활용될 수 있을것으로 보인다.
그러나 유전자의 발현과도체형질과의 관련성을 연구한 본 연구에서 한우 집단 내 도체중과 유의한 관련성이 확인하였다. 이러한 결과들을 종합해볼 때 ILK 유전자가 근육조직의 발생 및 발달에 관여하는 다양한 유전자들을 조절하여 근육의 생성 및 성장, 그리고 체중에영향을 미치는 것으로 판단되나, 앞으로 관련성에 대한 충분한 연구가 진행되어야 될 것으로 보인다.
또한 사람을 대상으로 한 지방산 산화와 지방축적 및 체중변화에 대한 연구에서 지방산 산화의 감소는 지방의 축적을 증가시키고 체중의 감소를 유발하는 것으로 확인되었다[17]. 이러한 선행 연구 결과들을 종합해보면 지방 대사, 특히 지방산 산화가 체중과 밀접하게 관련되어 있음을 확인할 수 있으며, 본 연구에서 나타난 ACSL6 유전자의 발현량과 도체중과의 양의 상관관계에 대한 결과를 설명하는 좋은 연구 결과라고 생각된다.
질의응답
핵심어
질문
논문에서 추출한 답변
PPAR signaling pathway의 최상위 조절인자 중 PPAR gamma의 특징은?
PPAR signaling pathway의 최상위 조절인자인 3개 아형(α, δ, γ)은 레티노 산 수용체(retinoic acid receptor, RAR)와 이합체(heterodimer)를 이루어 작용한다. 특히 PPAR gamma는 에너지 대사에서 인슐린의 감수성(insulin sensitivity)을 증가시키는 thiazolidinedione (TZD) 계열에 대한 수용체로써 체내 포도당 이용률을 증가시켜 인슐린 감수성을 향상시키는 역할을 한다[21]. 뿐만 아니라, PPARs 유전자의 발현은 인슐린, 당질코르티코이드(glucocorticoids) 조절에 의해 지방세포 호르몬인 leptin, adiponectin 등을 활성화시켜 에너지 대사를 조절하여 최종적으로 체중 및 체지방의 변화를 유도한다[13, 35].
인슐린 대사 호르몬에 의해 조절받는 유전자 중, 한우의 도체중과 관련이 있는 3개 유전자는?
본 논문에서는 PPAR signaling pathway에 존재하는 48개 유전자 중에서, pathway 분석을 통하여 체중에 가장 영향을 주는 인슐린 대사 호르몬에 의해 조절 받는 16개 유전자를 선별하여 거세 한우 20두에서 유전자 발현을 조사하였다. 유전자 발현과 도체중과의 관련성 분석을 위하여 회귀분석을 수행하였으며, 3개 유전자(ACSL6, FADS2, ILK)가 통계적으로 유의한 결과(p<0.05)를 보였다.
PPAR signaling pathwa란?
PPAR signaling pathway는 핵 호르몬 수용체(nuclear hormone receptor)군에 속하는 Peroxisome proliferator-activated receptors (PPARs)를 중심으로 구성된 지방대사(lipid metabolism)와 지방세포 분화(adipocyte differentiation)에 관여하는 대표적인 대사회로이다[12]. 특히 가축에 있어 육질 형질에 관여하는 후보유전자 탐색 연구로 PPAR signaling pathway에 대한 다양한 연구[8, 28]가 진행되고 있지만, 최근 들어 육질뿐만 아니라 육량에 관여한다는 연구들이 보고되고 있다[11, 26].
참고문헌 (39)
Bass, J., Oldham, J., Sharma, M. and Kambadur, R. 1999. Growth factors controlling muscle development. Domest Anim. Endocrinol. 17, 191-197.
Bhuiyan, M. S. A., Kim, N. K., Cho, Y. M., Yoon, D., Kim, K. S., Jeon, J. T. and Lee, J. H. 2009. Identification of SNPs in MYOD gene family and their associations with carcass traits in cattle. Livest. Sci. 126, 292-297.
Bu, S. Y. 2013. Characterization of the role of long chain acyl-CoA synthetase 6 in skeletal muscle energy metabolism. FASEB J. 27, 1017.13.
Cambien, F., Warnet, J. M., Eschwege, E., Jacqueson, A., Richard, J. L. and Rosselin, G. 1987. Body mass, blood pressure, glucose, and lipids. Does plasma insulin explain their relationships. Arteriosclerosis 7, 197-202.
Chen, Q., Liu, Q., Wu, Z., Wang, Z. and Gou, K. 2009. Generation of fad2 transgenic mice that produce omega-6 fatty acids. Sci. China C. Life Sci. 52(11), 1048-1054.
Cherfaoui, M., Durand, D., Bonnet, M., Cassar-Malek, I., Bauchart, D., Thomas, A. and Gruffat, D. 2012. Expression of enzymes and transcription factors involved in n-3 long chain PUFA biosynthesis in Limousin bull tissues. Lipids 47, 391-401.
Cook, H. W., Byers, D. M., Palmer, F. B., Spence, M. W., Rokoff, H., Duval, S. M. and Emken, E. A. 1991. Alternate pathways in the desaturation and chain elongation of linolenic acid 18:3(n-3), in cultured glioma cells. J. Lipid Res. 32, 1265-1273.
Cui, H. X., Liu, R. R., Zhao, G. P., Zheng, M. Q., Chen, J. L. and Wen, J. 2012. Identification of differentially expressed genes and pathways for intramuscular fat deposition in pectoralis major tissues of fast-and slow-growing chickens. BMC Genomics 13, 213.
Doran, A. G., Berry, D. P. and Creevey, C. J. 2014. Whole genome association study identifies regions of the bovine genome and biological pathways involved in carcass trait performance in Holstein-Friesian cattle. BMC Genomics 15, 837.
Fan, Y. Y., Fu, G. W., Fu, C. Z., Zan, L. S. and Tian, W. Q. 2012. A missense mutant of the PPAR-γ gene associated with carcass and meat quality traits in Chinese cattle breeds. Genet. Mol. Res. 11, 3781-3788.
Fernyhough, M. E., Okine, E., Hausman, G., Vierck, J. L. and Dodson, M. V. 2007. PPARγ and GLUT-4 expression as developmental regulators/markers for preadipocyte differentiation into an adipocyte. Domest. Anim. Endocrinol. 33, 367-378.
Ferré, P. 2004. The biology of peroxisome proliferator-activated receptors relationship with lipid metabolism and insulin sensitivity. Diabetes 53, S43-S50.
Hannigan, G., Leung-Hagesteijn, C., Fitz-Gibbon, L., Coppolino, M., Radeva, J., Filmus, I. B. G. and Dedhar, S. 1996. Regulation of cell adhesion and anchorage-dependent growth by a new ßl-integrin-linked protein kinase. Nature 379, 91-96.
Huang, Y., Li, J., Zhang, Y. and Wu, C. 2000. The roles of integrin-linked kinase in the regulation of myogenic differentiation. J. Cell Biol. 150, 861-871.
Fiems, L. O., De Campeneere, S., Van Caelenbergh, W., De Boever, J. L. and Vanacker, J. M. 2003. Carcass and meat quality in double-muscled Belgian Blue bulls and cows. Meat Sci. 63, 345-352.
Kelley, D. E., Goodpaster, B., Wing, R. R. and Simoneau, J. A. 1999. Skeletal muscle fatty acid metabolism in association with insulin resistance, obesity, and weight loss. Am. J. Physiol. 277, E1130-1141.
Kim, N. K., Lee, S. H., Lim, D., Yoon, D., Lee, C. S., Kim, O. H., Kim, H. C., Oh, S. J. and Hong, S. K. 2012. Association of succinate dehydrogenase and triose phosphate isomerase gene expression with intramuscular fat content in loin muscle of Korean (Hanwoo) Єcattle. J. Life Sci. 22, 31-35.
Kohl, M. 2007. SLqPCR: Functions for analysis of real-time quantitative PCR data at SIRS-Lab GmbH. R Package, SIRS-Lab GmbH, Jena.
Lange, A., Wickström, S. A., Jakobson, M., Zent, R., Sainio, K. and Fässler, R. 2009. Integrin-linked kinase is an adaptor with essential functions during mouse development. Nature 461, 1002-1006.
Lehmann, J. M., Moore, L. B., Smith-Oliver, T. A., Wilkison, W. O., Willson, T. M. and Kliewer, S. A. 1995. An antidiabetic thiazolidinedione is a high affinity ligand for peroxisome proliferator-activated receptor γ (PPARγ). J. Biol. Chem. 270, 12953-12956.
Lyons, G. E., Swanson, B. J., Kim, S. K., Herr, M. J. and Micales, B. K. 1996. In situ analysis of muscle gene expression in mouse embryos. J. Anim. Sci. 74, 1-8.
Marszalek, J. R., Kitidis, C., Dirusso, C. C. and Lodish, H. F. 2005. Long-chain acyl-CoA synthetase 6 preferentially promotes DHA metabolism. J. Biol. Chem. 280, 10817-10826.
Meng, H., Zhao, J. G., Li, Z. H. and Li, H. 2005. Single nucleotide polymorphisms on peroxisome proliferator-activated receptor genes associated with fatness traits in chicken. Asian-Aust J Anim Sci 18, 1221-1225. cleotide polymorphisms on peroxisome proliferator-activated receptor genes associated with fatness traits in chicken. Asian-Aust. J. Anim. Sci. 18, 1221-1225.
Mercadé, A., Estellé, J., Pérez-Enciso, M., Varona, L., Silió, L., Noguera, J. L., Sánchez, A. and Folch, J. M. 2006. Characterization of the porcine acyl-CoA synthetase long-chain 4 gene and its association with growth and meat quality traits. Anim. Genet. 37, 219-224.
Moyes, K. M., Drackley, J. K., Morin, D. E., Bionaz, M., Rodriguez-Zas, S. L., Everts, R. E. and Loor, J. J. 2009. Gene network and pathway analysis of bovine mammary tissue challenged with Streptococcus uberis reveals induction of cell proliferation and inhibition of PPARγ signaling as potential mechanism for the negative relationships between immune response and lipid metabolism. BMC Genomics 10, 542.
Nikitin, A., Egorov, S., Daraselia, N. and Mazo, I. 2003. Pathway studio—the analysis and navigation of molecular networks. Bioinformatics 19, 2155-2157.
Pariacote, F., Van Vleck, L. D. and Hunsley, R. E. 1998. Genetic and phenotypic parameters for carcass traits of American Shorthorn beef cattle. J. Anim. Sci. 76, 2584-2588.
Pas, M. F., Soumillion, A., Harders, F. L., Verburg, F. J., Bosch, T. J., Galesloot, P. and Meuwissen, T. H. 1999. Influences of myogenin genotypes on birth weight, growth rate, carcass weight, backfat thickness, and lean weight of pigs. J. Anim. Sci. 77, 2352-2356.
Renaville, B., Prandi, A., Fan, B., Sepulcri, A., Rothschild, M. F. and Piasentier, E. 2013. Candidate gene marker associations with fatty acid profiles in heavy pigs. Meat Sci. 93(3), 495-500.
Ryu, J., Kim, Y., Kim, C., Kim, J. and Lee, C. 2012. Association of bovine carcass phenotypes with genes in an adaptive thermogenesis pathway. Mol. Biol. Rep. 39(2), 1441-1445.
Vidal-Puig, A. J., Considine, R. V., Jimenez-Liñan, M., Werman, A., Pories, W. J., Caro, J. F. and Flier, J. S. 1997. Peroxisome proliferator-activated receptor gene expression in human tissues. Effects of obesity, weight loss, and regulation by insulin and glucocorticoids. J. Clin. Invest. 99, 2416.
Waldman, R. C., Suess, G. G. and Brungardt, V. H. 1968. Fatty acids of certain bovine tissue and their association with growth, carcass and palatability traits. J. Anim. Sci. 27(3), 632-635.
Zhang, C., McFarlane, C., Lokireddy, S., Masuda, S., Ge, X., Gluckman, P. D., Sharma, M. and Kambadur, R. 2012. Inhibition of myostatin protects against diet-induced obesity by enhancing fatty acid oxidation and promoting a brown adipose phenotype in mice. Diabetologia 55, 183-193.
Zhu, M. J., Ford, S. P., Nathanielsz, P. W. and Du, M. 2004. Effect of maternal nutrient restriction in sheep on the development of fetal skeletal muscle. Biol. Reprod. 71(6), 1968-1973.
Zhu, S. K., Tian, Y. D., Zhang, S., Chen, Q. X., Wang, Q. Y., Han, R. L. and Kang, X. T. 2014. Adjacent SNPs in the transcriptional regulatory region of the FADS2 gene associated with fatty acid and growth traits in chickens. Genet. Mol. Res. 13, 3329-3336.
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