[논문]ARDRA와 DGGE를 이용한 Halichondria panicea 해면의 공생세균 다양성

박진숙

doi:10.7845/kjm.2015.5069

ARDRA와 DGGE를 이용한 Halichondria panicea 해면의 공생세균 다양성
Bacterial diversity of the Marine Sponge, Halichondria panicea by ARDRA and DGGE 원문보기

Korean journal of microbiology = 미생물학회지, v.51 no.4, 2015년, pp.398 - 406

초록
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제주도에서 채집한 해양 해면 Halichondria panicea의 공생세균 군집구조를 배양에 의한 ARDRA와 비배양에 의한 DGGE 분석 방법에 의하여 조사하였다. 16S rRNA gene-ARDRA 분석을 위해 변형된 Zobell 배지와 Marine agar를 이용하여 120균주를 선별하고 제한효소, HaeIII와 MspI을 사용하여 ARDRA type을 구분하였다. ARDRA type으로부터 유래한 16S rRNA gene 염기서열 분석 결과, 알려진 세균 종과 96% 이상의 유사도를 나타내었으며 Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Bacteroidetes, Firmicutes 등 3문 4강이 관찰되었다. 그 중 Alphaproteobacteria가 우점하였다. 같은 해면, H. panicea의 DGGE 분석을 위해 total genomic DNA로부터 16S rRNA gene를 증폭하여 DGGE fingerprinting을 수행한 결과 14개의 밴드가 관찰되었다. 각 밴드의 16S rRNA gene 염기서열은 알려진 세균의 염기서열과 100%의 유사성을 나타내었으며 대부분의 염기서열은 uncultured bacteria에 속하였다. DGGE 분석으로부터 미생물의 군집은 Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Acidobacteria, Actinobacteira, Bacteroidetes, Cyanobacteria, Chloroflexi 등 6문 7강으로 나타났다. ARDRA와 DGGE 방법에 의해 Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Bacteroidetes가 공통적으로 발견되었으나 전체적인 공생세균의 군집구조는 분석방법에 따라 차이를 나타내었다. 배양에 의한 방법보다 비배양 방법에서 더 다양한 세균군집구조를 나타내었다.

Abstract ▼ AI-Helper

Culture-dependent ARDRA and culture-independent DGGE were employed to investigate the bacterial community associated with the marine sponge Halichondria panicea collected from Jeju Island. A total of 120 bacterial strains associated with the sponge were cultivated using modified Zobell and Marine agar media. PCR amplicons of the 16S rRNA gene from the bacterial strains were digested with the restriction enzymes HaeIII and MspI, and then assigned into different groups according to their restriction patterns. The 16S rRNA gene sequences derived from ARDRA patterns showed more than 96% similarities compared with known bacterial species, and the isolates belonged to four classes, Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Bacteroidetes, and Firmicutes, of which Alphaproteobacteria was dominant. DGGE fingerprinting of 16S rRNA genes amplified from the sponge-derived total gDNA showed 14 DGGE bands, and their sequences showed 100% similarities compared with the sequences available in GenBank. The sequences derived from DGGE bands revealed high similarity with the uncultured bacterial clones. DGGE revealed that bacterial community consisted of seven classes, including Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Acidobacteria, Actinobacteira, Bacteroidetes, Cyanobacteria, and Chloroflexi. According to both the ARDRA and DGGE methods, three classes, Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, and Bacteroidetes, were commonly found in H. panicea. However, overall bacterial community in the sponge differed depending on the analysis methods. Sponge showed more various bacterial community structures in culture independent method than in culture-dependent method.

주제어

AI 본문요약
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가설 설정

b All strains used for comparison of sequence similarities were type strains.

제안 방법

, 2007) neighbor-joining 방법(Saitou and Nei, 1987)에 의해 진화거리를 계산하고 계통수를 추론하였다. 1,000회 반복 bootstrap 분석에 의해 계통 수를 확인하였다.
16S rRNA gene-ARDRA 분석에 의해 22개의 type으로 나뉜, H. panicea에서 분리된 세균들에 대해 각 ARDRA type 별로 1–2개의 분리 균주를 선별하여 부분 염기서열을 분석하였다.
16S rRNA gene의 증폭을 확인하기 위해 1% agarose gel (Roche)를 이용하여 PCR 반응물 3 μl를취해 Mupid-ex (ADVANCE)로 100 V, 25분간 1X TAE buffer (40 mM Tris-acetate, 1 mM EDTA, pH 8.0)에서 전기영동 하였다.
DGGE gel 상에서 분리된 band 중, 각 band를 gel에서 잘라내어 Gel extraction kit (Qiagen)을 이용하여 DNA를 회수하였다. 염기서열 분석을 위해 band로부터 회수된 DNA를 주형으로 사용하였다.
GeneAmp PCR system 2700 thermal cycler (Applied Biosystems, Version 2.0)를 사용하여 94°C에서 5분간 초기변성한 후 94°C에서 40초간 변성, 55°C에서 40초간 냉각, 72°C에서 1분간 신장하는 과정을 30 cycle 반복 후 최종적으로 72°C에서 10분간 신장시켰다.
PCR 반응 혼합물의 조성은 앞에서 설명한 16S rRNA gene의 PCR 증폭의 경우와 동일하게 하였으며 PCR 조건은 94°C에서 40초간 변성, 65°C (1 cycle 당 0.5°C touch down)에서 40초간 냉각, 72°C에서 1분간 신장, 이 과정을 30 cycle 반복 수행한 후 최종 적으로 72°C에서 10분간 신장시켰다.
PCR 반응의 혼합물 조성은 5 μl 10× reaction buffer, 1 μl의 10 mM dNTPs, 5 unit/μl Taq polymerase (Solgent), 각각의 primer 10 pmol, 그리고 100 ng의 시료 DNA를 1 μl 첨가하여 최종 부피 50 μl이 되도록 하여 PCR 반응을 수행하였다.
Primer는 341f와 518r을 이용하여 위와 동일한 조건으로 PCR을 수행하였다. PCR 증폭산물은 Wizard SV Gel and PCR clean-up system (Promega)을 이용하여 정제한 후 염기서열 분석(Macrogen)을 의뢰하였다.
염기서열 분석을 위해 band로부터 회수된 DNA를 주형으로 사용하였다. Primer는 341f와 518r을 이용하여 위와 동일한 조건으로 PCR을 수행하였다. PCR 증폭산물은 Wizard SV Gel and PCR clean-up system (Promega)을 이용하여 정제한 후 염기서열 분석(Macrogen)을 의뢰하였다.
Primer는 GC clamp가 추가된 341f (5′-CGC CCG CCG CGC CCC GCG CCC GGC CCG CCG CCC CCG CCC GCC TAC GGG AGG CAG CAG-3′)와 518r (5′-ATT ACC GCG GCT GCT GG-3′)을 이용하여 GeneAmp PCR system 2700 thermal cycler에 의해 16S rRNA gene을 증폭하였다.
해면 균질액이 도말 된 배지는 26℃에서 7일간 배양하였다. 각각의 해면으로부터 120개의 균주를 분리하고 순수분리를 위해 동일한 배지에서 계대 배양하여 단일 콜로니를 얻었다.
동결 건조된 해면은 멸균된 막자 사발에 넣고 분쇄하였으며, 분쇄 후 멸균된 증류수 500 μl를 넣어 -80°C와 상온에서 냉동과 해동을 3회 반복하였다.
반복 후 Dneasy blood & tissue kit (Qiagen)를 이용하여 제조사의 방법대로 추출한 후 DGGE를 위한 PCR 반응의 주형으로 사용하였다.
반응물은 3% agarose gel을 사용하여 100 V, 30분간 1× TAE buffer에서 전기영동 한 후 EtBr로 염색한 다음 Gel Logic 200을 이용하여 각 균주의 밴드유형을 확인하였다.
분리된 세균의 DNA는 각각의 콜로니로부터 gDNA isolation kit (Qiagen)를 이용하여 분리하였다. 분리한 DNA를 PCR 반응의 주형으로 이용하여 16S rRNA gene을 증폭하였다.
분리된 세균의 DNA는 각각의 콜로니로부터 gDNA isolation kit (Qiagen)를 이용하여 분리하였다. 분리한 DNA를 PCR 반응의 주형으로 이용하여 16S rRNA gene을 증폭하였다. 증폭에는 27f (5′-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3′)와 1492r (5′-TAC GGY TAC CTT GTT ACG AC-3′) primer 쌍을 사용하였다.
분석 후 16S rRNA gene-ARDRA 타입에 따라 각각의 타입 별로 1–2개의 균주들을 선별하였다.
비배양법에 기초한 16S rRNA gene의 PCR-DGGE를 수행 하여 H. panicea의 해면 공생세균의 계통학적 다양성을 알아 보았다. 해면 시료로부터 추출한 genomic DNA를 주형으로 16S rRNA gene의 V3영역을 증폭하여 180 bp의 예상된 크기의 PCR 산물을 얻었다.
분석 후 16S rRNA gene-ARDRA 타입에 따라 각각의 타입 별로 1–2개의 균주들을 선별하였다. 선별된 균주들의 증폭된 PCR 산물은 MG^TM PCR DNA purification kit (Macrogen)를 이용하여 정제하였으며, 27f 프라이머를 이용한 염기서열 분석(Macrogen)을 의뢰하였다.
선택된 균주들의 결정된 16S rRNA gene 염기서열은 GenBank (http://ncbi.nlm.nih.gov)에 등록된 염기서열을 대상으로 Blast search를 수행하였다. 각 염기서열의 alignment는 CLUSTAL W (Thompson et al.
DGGE gel 상에서 분리된 band 중, 각 band를 gel에서 잘라내어 Gel extraction kit (Qiagen)을 이용하여 DNA를 회수하였다. 염기서열 분석을 위해 band로부터 회수된 DNA를 주형으로 사용하였다. Primer는 341f와 518r을 이용하여 위와 동일한 조건으로 PCR을 수행하였다.
염기서열이 분석된 총 40개의 분리 균주는 모두 기존에 보고된 세균 종과 96% 이상의 유사도를 나타내었다(Table 1). 염기서열이 분석된 22개의 ARDRA type은 15개의 세균 종을 나타내었으며(Table 1), 이 결과를 근거로 처음 ARDRA 분석에 쓰여진 120균주들을 분석하고 이들의 분석 결과에 근거하여 다양성의 차이를 분석하였다. 16S rRNA gene의 ARDRA 분석에 의해 H.
, 2010b). 이 연구에서는 2011년 여름 제주도 용머리 해안에 서 채집한 해면 H. panicea를 대상으로 배양에 근거한 ARDRA (amplified ribosomal DNA restriction analysis)방법과 비배양에 의한 DGGE (denaturing gradient gel electrophoresis) 방법을 이용하여 공생세균의 다양성을 조사하였다.
2). 이 해면 종의 DGGE band가 나타내는 세균 다양성을 파악하기 위하여 16S rRNA gene의 부분 염기서열을 분석하였다.
증폭된 DNA의 확인을 위해 PCR 반응액 2 μl를 취하여 2% agarose gel (Bio-Rad)을 이용하여 Mupid-ex로 100 V에서 25분간 1× TAE buffer에서 전기영동 하였다. 전기 영동 후 EtBr로 염색하여 Gel Logic 200을 이용, 자외선 조사로 확인하였다. 증폭된 DNA의 크기를 확인하기 위한 marker로는 100 bp ladder (Intron)를 사용하였다.
1× TAE buffer를 사용하여 60°C, 30 V에서 1시간 안정화시킨 후 60 V로 전압을 올려 15시간 전기영동을 수행하였다. 전기영동 후 DGGE gel은 EtBr (50 ng/ml)로 1시간 염색하여 Gel Logic 200을 이용, 자외선 조사로 확인하였다.
0)에서 전기영동 하였다. 전기영동 후 agarose gel은 EtBr (ethidium bromide, 50 ng/ml)에 10분간 염색하여 Gel Logic 200 (Kodak)을 이용하여 UV하에서 약 1.5 kb 단편을 확인하였다.
제주도 용머리 해안에서 채집된 H. panicea 해면의 배양 가능한 공생세균 군집구조를 16S rRNA gene의 PCR-ARDRA 방법에 의해 조사하기 위하여 총 120균주를 분리하고 분리된 균주에 대하여 두 종류의 제한효소를 이용하여 16S rRNA gene 의 ARDRA type을 분석하였다(Fig. 1). ARDRA type은 각각 HaeIII를 이용한 경우 20개, MspI의 경우 19개의 type이 관찰 되었으며, 두 효소를 이용하여 총 22개의 서로 다른 ARDRA type이 구분 되었다(Table 1).
증폭된 DNA의 확인을 위해 PCR 반응액 2 μl를 취하여 2% agarose gel (Bio-Rad)을 이용하여 Mupid-ex로 100 V에서 25분간 1× TAE buffer에서 전기영동 하였다.
DGGE는 Bio-Rad Dcode system (Bio-Rad)을 이용하여 수행하였다. 증폭된 PCR 산물은 bis acrylamide (Bio-Rad)를 포함한 10% polyacrylamide를 이용하여 30%에서 70%의 농도 구배 조성(7 M urea, 40% formamide)으로 전기영동을 수행하였다. Polyacrylamide gel은 크기 20 × 13 (W × H cm), 두께 1 mm로 작성하여 PCR 시료는 2× loading dye와 혼합하여 40 μl 의 시료를 loading하였다.
panicea의 해면 공생세균의 계통학적 다양성을 알아 보았다. 해면 시료로부터 추출한 genomic DNA를 주형으로 16S rRNA gene의 V3영역을 증폭하여 180 bp의 예상된 크기의 PCR 산물을 얻었다. H.
해면을 1 cm3 크기로 잘라 멸균된 인공해수로 3회 세척 후 인공해수 3 ml을 넣어 균질화 한 다음 10-1부터 10 -4까지 희석 하여 변형된 Zobell 배지(Peptone 5 g, Yeast extract 1 g, FePO 4 4H 2 O 0.01 g, NaCl 23.6 g, MgSO4 7H 2 O 5.94 g, MgCl26H2 O 4.53 g, CaCl2 1.3 g, KCl 0.64 g, agar 15 g, DW 1 L, pH 7.2)와 Marine agar 배지(Difco)에 100 μl씩 도말 하였다.
해면을 1 cm3 크기로 잘라 멸균된 인공해수로 세척 후 -70°C 에서 24시간 예비동결 한 다음 동결건조기에서 -50°C, 0.033 M bar기압으로 24시간 건조하였다.

대상 데이터

1). ARDRA type은 각각 HaeIII를 이용한 경우 20개, MspI의 경우 19개의 type이 관찰 되었으며, 두 효소를 이용하여 총 22개의 서로 다른 ARDRA type이 구분 되었다(Table 1).
PCR 산물의 ARDRA 분석을 위해 2종의 제한효소 MspI (Thermo Scientific)과 HaeIII (Thermo Scientific)를 사용하였다. 증폭된 산물에 각각의 제한 효소를 첨가하여 37°C에서 5분간 반응시켰다.
전기 영동 후 EtBr로 염색하여 Gel Logic 200을 이용, 자외선 조사로 확인하였다. 증폭된 DNA의 크기를 확인하기 위한 marker로는 100 bp ladder (Intron)를 사용하였다.
증폭에는 27f (5′-AGA GTT TGA TCC TGG CTC AG-3′)와 1492r (5′-TAC GGY TAC CTT GTT ACG AC-3′) primer 쌍을 사용하였다.
채집한 해면은 4°C에서 운반하여 12시간 이내에 실험실로 옮긴 후 멸균된 인공해수로 3회 세척 후 실험에 사용하였다.
해면 H. panicea의 공생세균의 다양성을 조사하기 위해 2011년 8월에 제주도 서귀포시 안덕면 사계리 용머리해안 조간대에서 해면을 채집하였다. 채집한 해면은 4°C에서 운반하여 12시간 이내에 실험실로 옮긴 후 멸균된 인공해수로 3회 세척 후 실험에 사용하였다.

이론/모형

반응물은 3% agarose gel을 사용하여 100 V, 30분간 1× TAE buffer에서 전기영동 한 후 EtBr로 염색한 다음 Gel Logic 200을 이용하여 각 균주의 밴드유형을 확인하였다. ARDRA type의 패턴분석을 위해 FPQuest (Bio-Rad) software를 이용하였다. 분석 후 16S rRNA gene-ARDRA 타입에 따라 각각의 타입 별로 1–2개의 균주들을 선별하였다.
DGGE는 Bio-Rad Dcode system (Bio-Rad)을 이용하여 수행하였다. 증폭된 PCR 산물은 bis acrylamide (Bio-Rad)를 포함한 10% polyacrylamide를 이용하여 30%에서 70%의 농도 구배 조성(7 M urea, 40% formamide)으로 전기영동을 수행하였다.
gov)에 등록된 염기서열을 대상으로 Blast search를 수행하였다. 각 염기서열의 alignment는 CLUSTAL W (Thompson et al., 1994)를 이용하여 정렬하였고 MEGA (Molecular Evolutionary Genetics Analysis) software version 4.0을 이용하여(Tamura et al., 2007) neighbor-joining 방법(Saitou and Nei, 1987)에 의해 진화거리를 계산하고 계통수를 추론하였다. 1,000회 반복 bootstrap 분석에 의해 계통 수를 확인하였다.

성능/효과

염기서열이 분석된 22개의 ARDRA type은 15개의 세균 종을 나타내었으며(Table 1), 이 결과를 근거로 처음 ARDRA 분석에 쓰여진 120균주들을 분석하고 이들의 분석 결과에 근거하여 다양성의 차이를 분석하였다. 16S rRNA gene의 ARDRA 분석에 의해 H. panicea 해면의 공생세균은 Alphaproteobacteria(67.5%), Gammaproteobacteria (15.0%), Bacteroidetes (7.5%), Firmicutes (10.0%) 등 3문(phylum) 4강(class)에 속하는 것으로 나타났다(Fig. 3). 본 연구에서는 Alphaproteobacteria가 가장 우점하고 이어 Gammaproteobacteria가 우점하였으나 주황해변해면(Hymeniacidon sinapium)의 경우 Alphaproteobacteria, 16.
DGGE banding pattern으로부터 세균군집의 다양성을 분석하기 위해 DGGE band에서 DNA를 추출하여 341f와 518r을 이용하여 재 증폭하여 염기서열을 분석한 결과, 14개의 band에 대한 염기서열을 확인할 수 있었으며(Table 2), DGGE band로부터 결정된 서열들은 모두 알려진 서열들과 100%의 상동성을 나타냈다. DGGE band로부터 밝혀진 대부분의 서열들은 배양되지 않은 세균(uncultured bacteria)들과 높은 상동성을 나타내었다.
DGGE band로부터 밝혀진 대부분의 서열들은 배양되지 않은 세균(uncultured bacteria)들과 높은 상동성을 나타내었다. DGGE band에서 DH7-1, DH7-2와 DH7-14는 Uncultured Cyanobacterium (KT880412, KT880368)과 100%의 상동성을 보였으며, DH7-3은 Uncultured alpha proteobacterium (AB054179)과 100% 상동성을 나타내었다. DH7-4, DH7-7, DH7-9, DH7-10, DH7-11과 DH7-12는 Uncultured Chloroflexi bacterium (KF286135, KF597121, KF286193, KF 286175, JN596673)과 100%의 상동성을 보였으며, DH7-5는 Endozoicomonas euniceicola (NR109684)와 100% 상동성을 나타내었다.
DGGE 밴드의 염기서열 분석에 근거하여 계통수를 작성한 결과, H. panicea의 주요 공생세균 그룹은 Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Actinobacteria, Acidobacteria, Bacteroidetes, Chloroflexi 그리고 Cyanobacteria로 6문 7강으로 나타났다(Fig. 4). DGGE를 이용한 H.
DGGE band에서 DH7-1, DH7-2와 DH7-14는 Uncultured Cyanobacterium (KT880412, KT880368)과 100%의 상동성을 보였으며, DH7-3은 Uncultured alpha proteobacterium (AB054179)과 100% 상동성을 나타내었다. DH7-4, DH7-7, DH7-9, DH7-10, DH7-11과 DH7-12는 Uncultured Chloroflexi bacterium (KF286135, KF597121, KF286193, KF 286175, JN596673)과 100%의 상동성을 보였으며, DH7-5는 Endozoicomonas euniceicola (NR109684)와 100% 상동성을 나타내었다. DH7-6은 Uncultured Bacteroidetes bacterium (JN038256)과 DH7-8은 Uncultured Acidobacteria bacterium (JN210661)과 각각 100% 상동성을 보였으며, DH7-13은 Uncultured actinobacterium (KT880382)과 100%의 상동성을 나타내었다.
DH7-4, DH7-7, DH7-9, DH7-10, DH7-11과 DH7-12는 Uncultured Chloroflexi bacterium (KF286135, KF597121, KF286193, KF 286175, JN596673)과 100%의 상동성을 보였으며, DH7-5는 Endozoicomonas euniceicola (NR109684)와 100% 상동성을 나타내었다. DH7-6은 Uncultured Bacteroidetes bacterium (JN038256)과 DH7-8은 Uncultured Acidobacteria bacterium (JN210661)과 각각 100% 상동성을 보였으며, DH7-13은 Uncultured actinobacterium (KT880382)과 100%의 상동성을 나타내었다.
해면 시료로부터 추출한 genomic DNA를 주형으로 16S rRNA gene의 V3영역을 증폭하여 180 bp의 예상된 크기의 PCR 산물을 얻었다. H. panicea의 DGGE band pattern 분석결과, 총 14개 이상의 band를 확인할 수 있었으며 이 패턴은 2회의 실험을 통해 동일한 패턴을 얻어 재현성을 확인할 수 있었다(Fig. 2). 이 해면 종의 DGGE band가 나타내는 세균 다양성을 파악하기 위하여 16S rRNA gene의 부분 염기서열을 분석하였다.
bacteria, Bacteroidetes, Chloroflexi, Cyanobacteria 그리고 Firmicutes 총 7문 8강으로 나타났다. 두 가지 실험 방법을 적용한 경우, Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Bacteroidetes가 공통 세균 그룹으로 나타났다.
bacteria, Bacteroidetes, Chloroflexi, Cyanobacteria 그리고 Firmicutes 총 7문 8강으로 나타났다. 두 가지 실험 방법을 적용한 경우, Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Bacteroidetes가 공통 세균 그룹으로 나타났다. Firmicutes는 ARDRA 방법에 의해서만 발견되었으며 Actinobacteria, Acidobacteria, Bacteroidetes, Chloroflexi 그리고 Cyanobacteria는 비배양 DGGE에 의해서만 발견되었다.
본 연구 결과 H. panicea 해면의 가장 우점하는 공생세균 문은 Proteobacteria (82.5%)였으며, 지금까지 보고된 대부분의 해면에서 나타나는 주요 공생세균 문은 Proteobacteria (Webster et al., 2004)로 알려져 있는 바, 이는 여과 섭식하는 해면의 특성상 공생(sponge-associated)세균 군집이 일반적으로 해양의표영세균 중 가장 우점하는 그룹인 Proteobacteria와 일정한 상관관계가 있음을 시사한다.
3). 본 연구에서는 Alphaproteobacteria가 가장 우점하고 이어 Gammaproteobacteria가 우점하였으나 주황해변해면(Hymeniacidon sinapium)의 경우 Alphaproteobacteria, 16.3%, Gammaproteobacteria, 67.4%를 나타내어 해면 종에 따라 공생세균 군집의 차이가 있음을 알 수 있었다 (Jeong and Park, 2012b). 한편 동일한 해면 속에 속하는 Halichondria okadai의 454 pyrosequencing 이용한 세균군집구조 분석 결과에서는 Alphaproteobacteria 74.
, 2012). 분석 방법에 따라 검출되는 해면공생세균의 다양성은 차이를 나타내었으며 배양법인 경우 배양조건에 따른 제약(Li et al., 2007; Sipkema et al., 2011)과 비배양인 경우 DNA 추출 효율 및 DGGE band의 전기영동에 따른 분리 등이 결과에 영향을 미치는 것으로 생각된다. 최근의 대량염기서열분석방법인 pyrosequencing에 의하면 보다 다양한 군집구조 분석이 가능할 것이다.
panicea에서 분리된 세균들에 대해 각 ARDRA type 별로 1–2개의 분리 균주를 선별하여 부분 염기서열을 분석하였다. 염기서열이 분석된 총 40개의 분리 균주는 모두 기존에 보고된 세균 종과 96% 이상의 유사도를 나타내었다(Table 1). 염기서열이 분석된 22개의 ARDRA type은 15개의 세균 종을 나타내었으며(Table 1), 이 결과를 근거로 처음 ARDRA 분석에 쓰여진 120균주들을 분석하고 이들의 분석 결과에 근거하여 다양성의 차이를 분석하였다.

후속연구

, 2010b). 많은 해양 천연물들이 해면공생세균에 의해 생산되므로 이들의 활용과 해양환경에서의 공생세균의 생태학적 이해를 위해서는 다양한 해면 종에 대한 분자적 방법과 아울러 배양의존적 방법에 의해 공생세균 다양성에 관한 연구가 지속되어야 할 것으로 사료된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	해면 Halichondria panicea는 어떤 색상을 띄는가?	, 1998) 우리나라에 서는 제주도 해안에서 흔히 발견된다. 이 해면은 주로 조간대와 조하대에서 얇게 혹은 20 cm가 넘는 두꺼운 덩어리로 성장 하며 밝은 노랑색이나 연녹색 혹은 회녹색을 띄며, 여러 가지 생리활성 물질을 생산하는 것으로 알려져 있다. 특히 해면과 공생하는 세균들에 의해 생산되는 것으로 보고된 것에는 aryl carotenoid, γ-pyrones, mayamycin, glycospingolipids, 신경활 성물질 등이 있어(Nagle et al.
	해면 Halichondria panicea는 우리나라 어느 지역에서 흔히 발견되는가?	해면 Halichondria panicea는 전세계의 해양에 분포하고 (Barthel and Wolfrath, 1989; Althoff et al., 1998) 우리나라에 서는 제주도 해안에서 흔히 발견된다. 이 해면은 주로 조간대와 조하대에서 얇게 혹은 20 cm가 넘는 두꺼운 덩어리로 성장 하며 밝은 노랑색이나 연녹색 혹은 회녹색을 띄며, 여러 가지 생리활성 물질을 생산하는 것으로 알려져 있다.
	해면 부피에서 미생물들이 차지하는 비율은 어느 정도인가?	, 2007) 그에 공생하는 세균은 신약 개발을 위한 잠재적인 소재로서 대량생산 및 생명공학적 기술을 적용하기에 용이하다. 해면은 각종 미생물 군집의 서식지로 알려져 있으며, 이 미생물들은 해면 부피의 40% 이상을 차지하기도 한다 (Hentschel et al., 2006).

참고문헌 (23)

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상세보기
Althoff, K., Schutt, C., Steffen, R., Batel, R., and Mueller, W.E. 1998. Evidence for a symbiosis between bacteria of the genus Rhodobacter and the marine sponge Halichondria panicea: harbor also for putatively toxic bacteria?. Mar. Biol. 130, 529-536.

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Barthel, D. and Wolfrath, B. 1989. Tissue sloughing in the sponge Halichondria panicea: a fouling organism prevents being fouled. Ocecologia 78, 357-360.

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저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

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