[논문]백산차 추출물의 항산화 및 항염증 활성

김세기

doi:10.11002/kjfp.2017.24.7.1025

백산차 추출물의 항산화 및 항염증 활성
Antioxidant and anti-inflammatory activities of extracts from Ledum palustre L. 원문보기

한국식품저장유통학회지 = Korean journal of food preservation, v.24 no.7, 2017년, pp.1025 - 1033

초록
AI-Helper

본 연구에서는 백산차추출물의 항산화 활성을 알아보기 위해 추출방법을 달리한 4가지 추출물인 열수추출물(LPW), 고온가압추출물(LPA), 초음파추출물(LPU), 70% 에탄올 추출물추출(LPE)과 LPE에 대한 4가지 용매 층 분획물인 n-hexane 층(LPE/H), ethyl acetate 층(LPE/E), n-butanol 층(LPE/B), water 층(LPE/W) 분획물의 DPPH와 ABTS 라디칼 소거 활성을 측정하였다. 또한 백산차 추출물의 항염활성을 알아보기 위해 LPS로 자극된 Raw 264.7 대식세포에서 LPE와 LPE/H, LPE/E, LPE/B, LPE/W의 NO, $PGE_2$, TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, IL-6의 생성 저해 활성을 측정하였다. 그 결과, DPPH와 ABTS 라디칼 소거 활성에서 LPE가 $1,000{\mu}g/mL$의 농도에서 각각 82.3%와 99.8%의 소거 활성을 나타내었으며, LPE/E의 경우 $1,000{\mu}g/mL$의 농도에서 각각 91.8%와 99.6%의 높은 소거 활성을 나타내었다. 항염 활성 확인을 위하여 먼저 MTT assay를 수행하였으며 $25{\mu}g/mL$ 농도에서 LPE와 LPE/E 모두 90% 이상의 세포 생존율이 확인되었다. NO와 $PGE_2$의 생성 저해 활성을 분석한 결과, LPE와 LPE/E에서 높은 NO와 $PGE_2$ 저해 활성을 확인 하였다. LPE는 $25{\mu}g/mL$의 농도에서 각각 50%와 70%의 저해 활성을 나타내었고 LPE/E는 같은 농도에서 각각 57%와 73%의 저해 활성을 나타내었다. 마지막으로 TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, IL-6의 생성 저해 활성을 측정한 결과 LPE 및 LPE/E의 농도의존적인 저해 활성을 확인 하였으며 LPE가 $25{\mu}g/mL$의 농도에서 각각 24%, 47%, 40%의 저해 활성을 나타내었다. 특히 LPE/E는 같은 농도에서 각각 51%, 57%, 62%의 높은 저해활성을 보였다. 이러한 결과들로부터 $1,000{\mu}g/mL$ 농도의 LPE 및 LPE/E는 비타민C와 유사한 DPPH 및 ABTS 라디칼 소거능을 가지며 비교적 낮은 농도인, $25{\mu}g/mL$ 농도에서도 높은 항염증 활성을 가지고 있는 것으로 결론을 내릴 수 있다. 따라서 추후 항노화, 항균, 미백 활성 등에 대한 더 많은 연구 진행이 이루어진다면 백산차추출물은 염증성 질환의 예방 및 치료와 기능성 식품, 화장품 분야 등에서 효과적인 소재로 활용될 수 있을 것으로 사료된다.

Abstract ▼ AI-Helper

In this study, Ledum palustre L. was extracted by 4 different methods (LPW, hot water extraction; LPA, autoclave extraction; LPU, ultrasonification extraction; LPE, 70% ethanol extraction) and LPE was fractionated by using polarity difference of each solvent and used as 4 samples (LPE/H, the n-hexane layer; LPE/E, the EtOAc layer; LPE/B, the n-BuOH layer; LPE/W, the $H_2O$ layer). Antioxidant activities of Ledum palustre L. extracts were measured by DPPH and ABTS. As a result, the DPPH and ABTS radical scavenging showed high activities with LPE (82.3%, 99.8%) and LPE/E (91.8%, 99.6%) at the concentration of $1,000{\mu}g/mL$. The anti-inflammatory activities of LPE and LPE/E were measured by the inhibitory activity against NO, $PGE_2$, TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$ and IL-6 production on LPS-stimulated Raw 264.7 macrophages. As a result of MTT assay, cell viabilities of LPE and LPE/E were more than 90% at $25{\mu}g/mL$. NO and $PGE_2$ productions were inhibited by LPE (NO: 50%, $PGE_2$: 70%) and LPE/E (NO: 57%, $PGE_2$: 73%) at the concentration of $25{\mu}g/mL$. The inhibition activities against TNF-${\alpha}$, IL-$1{\beta}$, IL-6 production were 24%, 47% and 40% at the concentration of $25{\mu}g/mL$ of LPE. In particular, LPE/E showed 51%, 57% and 62% inhibition activities at the same concentration, respectively. From the above results, it can be concluded that $1,000{\mu}g/mL$ of LPE and LPE/E have the high antioxidant activities similar with Vitamin C, and $25{\mu}g/mL$, the low concetration of LPE and LPE/E have excellent anti-inflammatory activities. Therefore, if more research about anti-aging, whitening and antimicrobial activity of Ledum palustre L. extracts is carried out in the future, it will be possible to use them as effective materials for the prevention and treatment of inflammatory diseases and in the areas of functional foods and cosmetics.

주제어

AI 본문요약
AI-Helper

* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

문제 정의

일반적으로 NO의 형성은 박테리아를 죽이거나 종양을 제거시키는 중요한 역할을 하지만 병리학적인 원인에 의한 과도한 NO의형성은 염증을 유발시키게 되며, 조직의 손상, 유전자 변이 및 신경 손상 등을 유발한다(29). 백산차 추출물이 이러한 NO의 생성 저해 활성이 있는 지를 알아보기 위해 본 연구에서는 우선 백산차 4가지 추출방법에 따른 추출물에 대하여 Raw264.7 세포에서 LPS 자극에 의해 생성되는 NO 생성량에 대한 영향을 측정하였다. 4가지 추출물이 모두 농도 의존적으로 세포 내에서의 NO 생성량을 감소 시켰지만 그 중LPE은 25 μg/mL의 농도에서 50% 의 저해 활성을 나타내어,잣 에탄올 추출물이 동일한 농도에서 46% 의 저해 활성을 나타낸 것(3)보다 우수한 활성을 나타내었다.
이에 본 연구에서 아직까지 명확하게 연구되지 않은 백산차 추출물 및 용매 분획물에 대해 DPH와 ABTS 측정을 통해 항산화 활성을 검증하고, LPS로 유도된 대식세포에서 생성되는 NO, PGE₂ 및 pro-inflammatory cytokine에 대한 저해 활성 측정을 통해 항염증 활성을 검증하여 예로부터 전통차로서 우리 민족이 즐겨 마셔 오던 백두산 백산차의 항산화 및 항염증 기능성 소재로서의 활용 가능성을 평가하였다.

가설 설정

1)Al values are mean±SD (n=3).

제안 방법

1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl(DPH) 라디칼 소거 활성은 Blois(25)의 방법을 응용하여 DPH에 대한 전자공여효과로 측정하였다. 0.
2,2-azinobis-(3-ethylbenzo-thiazoline-6-sulphonate)(ABTS) 라디칼 소거활성은 Re 등(26)의 방법을 응용하여 측정하였다. 7 mM의 ABTS 용액에 potasium persulfate를 2.
24시간 뒤 serum fre DMEM으로 교체 한 후 LPS(1 μg/mL)를 처리하였다.
24시간 후 serum fre DMEM 배지로 교환한 후 LPS 1 μg/mL로 처리 한 뒤 1시간 동안 전처리를 하고 난 다음 백산차 추출물 및 분획물을 농도별로 처리하여 24시간동안 배양하였다.
이후 얻어진 추출물 중 실험을 통하여 가장 효능이 우수한 70% 에탄올 추출물을 이용하여 용매 분획을 하였다. 70% 에탄올 추출물 8g을 10 mL의 증류수로 현탁시킨 후에 n-hexane 1 L씩 3회(LPE/H), ethyl acetate 1 L씩 3회(LPE/E), 그리고 n-butanol 1 L씩 3회(LPE/B)로 순차적으로 분획하였으며,LPE/H, LPE/E, LPE/E와 물 층(LPE/W)은 모두 농축하여 각각의 분획물을 확보 한 후 동결 건조하고 -70℃에서 냉동 보관하면서 실험에 사용하였다.
8이 되도록 에탄올로 조정한 다음, 용액 10 μL와 시료 50 μL를혼합하고 실온에서 15분간 반응 시킨 다음 microplate reader기를 이용하여 734 nm에서 흡광도를 측정하였다. ABTS라디칼 소거 활성률은 시료 무첨가구에 대한 시료 첨가구의 흡광도비로 산출하였다.
, Män edorf, Switzerland)를 이용하여 517 nm에서 흡광도를 측정하였다. DPH 라디칼 소거 활성률은 시료 무첨가구에 대한 시료 첨가구의 흡광도비로 산출하였다.
, Gongju, Korea)에 분쇄된 시료 10 g에 9배의 증류수를 넣은 후 121℃에서 3시간 동안 2회 반복 추출하였으며(LPA), 70% 에탄올추출(70% ethanol extraction)은 시료 10 g에 20배의 70% 에탄올 2 L을 넣고 24시간 동안 2회 침지 추출하였다(LPE). 각각의 추출물은 여과지(Whatman No.2, Maidstone, England)로 여과한 후 회전진공농축기(WB200, Heidolph, Schwabach, Germany)로 농축하였다. 농축액은 동결건조(FD SFESM12, Samwon, Busan,Korea)하여 분말을 제조하였으며, 제조한 추출분말은 -70 에 저장하여 실험에 사용하였다.
추출방법은 백산차의 열수추출은 분쇄된 시료 10 g에 9배의 증류수를 끊인 후 시료를 가하고 3시간 2회 반복 추출하였고(LPW), 초음파추출(ultrasonifcation extraction)은 시료 10 g에 9배의 증류수를 넣은 유리병을 초음파 수조(NXPC-4020P, KODO, Hwaseong, Korea) 바닥에 닿지 않도록 하여 40 kHz로 3시간 2회 반복 추출하였다(LPU). 고온가압추출(autoclave extraction)은 autoclave(JSAC-10,JS Research Inc., Gongju, Korea)에 분쇄된 시료 10 g에 9배의 증류수를 넣은 후 121℃에서 3시간 동안 2회 반복 추출하였으며(LPA), 70% 에탄올추출(70% ethanol extraction)은 시료 10 g에 20배의 70% 에탄올 2 L을 넣고 24시간 동안 2회 침지 추출하였다(LPE). 각각의 추출물은 여과지(Whatman No.
따라서 NO, PGE2, TNF-aIL-1β와 IL-6 생성 저해 활성은 25 μg/mL이하의 농도에서 진행하였다.
세포에 1 μg/mL 의 LPS를 처리 한 뒤 1시간 후에 백산차 추출물 및 분획물을 농도별로 처리하여 24시간 배양하였다. 배양 후 얻어진 상층액의 pro-inflammatory cytokine 함량을 측정하였으며, 정량은 ELISA kit를 이용하여 정량하였으며, standard에 대한 표준곡선 R² 값은 0.9 이상이었다.
24시간 후 serum fre DMEM 배지로 교환한 후 LPS 1 μg/mL로 처리 한 뒤 1시간 동안 전처리를 하고 난 다음 백산차 추출물 및 분획물을 농도별로 처리하여 24시간동안 배양하였다. 배양이 끝 난 세포의 상층액을 취하여 PGE2 생성량을 측정하였다. PGE₂ 측정은 mouse enzyme-linked immnunosorbentasay(ELISA) kit(R&D system Inc.
그 중 체내에서 염증의 발생과정에서 과량의 PGE₂는 cycloxygenase-2(COX-2) 등의 작용에 의해 발현되게 되며,PGE₂는 잘 알려진 염증 유발 인자로서 면역세포를 염증부위로의 이동에 관여하는 것으로 알려져 있다(19,3). 본 실험에서 PGE₂의 생성 저해 활성은 NO 생성 저해 활성실험에서 가장 우수한 결과를 나타낸 LPE와 LPE 용매 분획물에 대해서만 측정하였다. Raw264.
본 실험에서 Raw264.7 세포에 대한 백산차 추출물 및 용매분획물의 유효농도를 결정하기 위한 세포생존율 측정은 MT asay로 진행하였다. 배양된 Raw264.
본 연구에서는 Raw264.7 세포에서의 LPS 자극에 의한 염증 조절 인자인TNF-α, IL-1β, IL-6 과발현에 LPE와 그 용매 분획물이 미치는 영향을 측정하였다.
reactive oxygen species(ROS)는 체내 방어기전에 의해 대부분 제거되지만 제거되지 못할 경우 생체분자들과 신속하게 반응하여 단백질의 변성이나 생체막의 지질 과산화, DNA 손상 등을 일으키며, 세포 내로확산되거나 혈류를 통해 이동된 지질 과산화물은 새로운 radical 반응을 촉진시켜 각종 질환의 원인으로 작용 하였다(28). 본 연구에서는 추출방법을 달리한 4가지 추출물과 가장 효과가 우수한 70% 에탄올 추출물에 대한 4가지 용매 분획물의 DPH 라디칼 소거 활성을 측정하였다. 추출방법에 따른 4가지 추출물의 DPH radical 소거 활성은 Table 1과 같이 나타났다.
세포배양액 내의 TNF-α, IL-1β, IL-6 생성량은 mouse enzyme-linked immnunosorbent asay(ELISA) kit를 이용하여 측정하였다.
이에 따라, 용매분획은 LPE 8 g을 취하여 분획물 제조 방법에 따라 분획하고 동결 건조하였으며 얻어진 각각의 분획물 시료의 무게는 LPE/W > LPE/B > LPE/E > LPE/H 순으로 2.62 g, 1.86 g, 1.23 g, 0.06 g이었고 회수율은 32.75%,23.25%, 15.37%, 0,75%이었다.
농축액은 동결건조(FD SFESM12, Samwon, Busan,Korea)하여 분말을 제조하였으며, 제조한 추출분말은 -70 에 저장하여 실험에 사용하였다. 이후 얻어진 추출물 중 실험을 통하여 가장 효능이 우수한 70% 에탄올 추출물을 이용하여 용매 분획을 하였다. 70% 에탄올 추출물 8g을 10 mL의 증류수로 현탁시킨 후에 n-hexane 1 L씩 3회(LPE/H), ethyl acetate 1 L씩 3회(LPE/E), 그리고 n-butanol 1 L씩 3회(LPE/B)로 순차적으로 분획하였으며,LPE/H, LPE/E, LPE/E와 물 층(LPE/W)은 모두 농축하여 각각의 분획물을 확보 한 후 동결 건조하고 -70℃에서 냉동 보관하면서 실험에 사용하였다.
, KG, Staufen, Germany)를 이용 40 mesh 이하로 분쇄한 후 -20℃에서 보관하면서 실험에 사용하였다. 추출방법은 백산차의 열수추출은 분쇄된 시료 10 g에 9배의 증류수를 끊인 후 시료를 가하고 3시간 2회 반복 추출하였고(LPW), 초음파추출(ultrasonifcation extraction)은 시료 10 g에 9배의 증류수를 넣은 유리병을 초음파 수조(NXPC-4020P, KODO, Hwaseong, Korea) 바닥에 닿지 않도록 하여 40 kHz로 3시간 2회 반복 추출하였다(LPU). 고온가압추출(autoclave extraction)은 autoclave(JSAC-10,JS Research Inc.

대상 데이터

NO 발현을 측정하기 위하여 Raw264.7 세포를 48-welplate에 5×104 cels/wel로 접종하고 24시간 CO2 incubator에서 배양하였다.
2, Maidstone, England)로 여과한 후 회전진공농축기(WB200, Heidolph, Schwabach, Germany)로 농축하였다. 농축액은 동결건조(FD SFESM12, Samwon, Busan,Korea)하여 분말을 제조하였으며, 제조한 추출분말은 -70 에 저장하여 실험에 사용하였다. 이후 얻어진 추출물 중 실험을 통하여 가장 효능이 우수한 70% 에탄올 추출물을 이용하여 용매 분획을 하였다.
마우스 대식세포주인 Raw264.7 세포는 american type culture colection(ATCC, Rockvile, MD, USA)에서 구입하였으며, 세포배양을 위해 10% fetal bovine serum(FBS)와1% penicilin-streptomycin을 포함하는 dulbeco’s modifed eagle medium(DMEM)(Invitrogen Carlsbad, CA, USA)배지를 사용하였다.
백산차는 ㈜파이로젠(대구 달성군 소재)으로부터 5월에 건조된 것을 구입하여 본 실험에 사용하였으며 분쇄기(IKAⓇ Werke GmbH & Co., KG, Staufen, Germany)를 이용 40 mesh 이하로 분쇄한 후 -20℃에서 보관하면서 실험에 사용하였다.

데이터처리

2)a-eMeans with difernt superscript mal leters within sample groups are signifcantly difernt by Duncan’s multiple range test (p<0.5).
2)a-eMeans with difernt superscript mal leters within the sample groups are signifcantly difernt by Duncan’s multiple range test (p<0.5).
모든 실험은 3회 이상 반복하여 실시하였으며 평균치와 표준편차로 나타내었으며, 유의성 검증은 SPS statistics 20(IBM, Armonk, NY, USA) software package program을 이용하여 Duncan‘s multiple range test와 t-test를 실시하였다.

성능/효과

4가지 추출물이 모두 농도 의존적으로 세포 내에서의 NO 생성량을 감소 시켰지만 그 중LPE은 25 μg/mL의 농도에서 50% 의 저해 활성을 나타내어,잣 에탄올 추출물이 동일한 농도에서 46% 의 저해 활성을 나타낸 것(3)보다 우수한 활성을 나타내었다.
ABTS라디칼 소거 활성에서도 백산차의 추출방법을 달리한 4가지 추출물에 대한 활성을 먼저 측정하였으며, 그 결과는 Table 3에서 나타낸 것처럼 1,00 μg/mL 농도에서 LPE L', '>L')">>LPU > LPW > LPA순으로 측정되었으며, LPE의 경우 가장 높은 농도인 1,00 μg/mL의 농도에서 9.8%의 높은 ABTS라디칼 소거 활성을 나타내었다.
DPH 라디칼 소거 활성은 1,00 μg/mL 농도에서 LPE > LPU > LPA > LPW 순으로 측정 되었으며,가장 우수한 활성을 나타낸 LPE로부터 용매 분획물의DPH 라디칼 소거 활성을 측정한 결과 1,00 μg/mL의 농도에서 LPE/E이 91.8%의 활성을 나타내었고 RC50값은 43.5μg/mL으로 측정되어, vitamin C의 라디칼 소거 활성과 유사한 활성을 나타냄을 확인 할 수 있었다(Table 2).
LPE의 용매 분획물에 대한 활성을 측정한 결과, LPE/E에서 가장 높은 생성 저해 활성이 확인 되었으며(Fig. 2) 25 μg/mL의 농도에서 57%의 저해 활성을 나타내어 풀솜대 에틸아세테이트 분획물의 10 μg/mL 농도에서 50% 이하의 저해 활성(34)을 나타낸 것보다 우수한 활성을 보였다.
Raw264.7 세포에서의 과량의 염증 유발 인자인 PGE2의 생성량 저해에 LPE와 그 용매 분획물들이 미치는 효과를 측정한 결과 LPE의 경우 25μg/mL에서 70%의 저해 활성을 나타내었으며, LPE/E의 경우도 농도 의존적으로 높은 저해 활성을 나타내었다.
75 μg/mL의 농도에서 측정되었으며, 10, 50, 10 μg/mL의 농도에서 농도 의존적으로 생성량을 저해하는 것(35)보다 더 우수한 활성임을 보여주고 있다. 따라서 백산차 에탄올 추출물과 백산차 에틸아세테이트 분획물이 PGE₂의 생성을 강하게 저해함으로써 유의성 있는 항염증 효과를 보이는 것을 확인할 수 있었다.
백산차 추출물 및 분획물의 항염효과가 LPS로 유도된 염증관련 물질의 생성을 감소시킨 것에서 기인하는지, 추출물의 세포 독성으로 인한 cel population의 저하에서 기인하는지를 고려하기 위한 실험한 결과, 백산차 4가지 추출물 및 4가지 분획물 모두 25 μg/mL의 농도 이하에서 90% 이상의 높은 생존율을 나타내었다.
백산차를 건조하고 분쇄한 시료 각각 10 g에 대하여 추출물 제조 방법에 따라 추출하여 동결 건조한 뒤 측정한 시료의 무게는 LPA > LPW > LPE > LPU 순으로 1.62g, 10.38 g, 8.65 g, 5.82 g 이 얻어졌으며 수율은 1.62%,10.38%, 8.65%, 5.82%이었다.
상황버섯 에틸아세테이트 용매 분획물이 10 μg/mL 농도에서 IL-6 생성량을 75% 저해 시킨 결과(41)와 비교 시 LPE/E의 우수한 염증성 cytokine의 생성저해 활성을 확인 할 수 있었다.
우수한 라디칼 소거 활성을 지닌 백산차 추출물은 LPE와LPE의 분획물인 LPE/E임을 알 수 있었으며 이들의 활성은 10-10 μg/mL 농도 사이에서도 vitamin C의 활성과 유사할 만큼 우수한 결과이다.
위와 같이 얻어진 4가지 시료에 대하여 DPH 및 ABTS 라디칼 소거 활성을 측정하고 비교한 결과 LPE(70% 에탄올 추출물을 동결 건조한 시료)가 DPH 라디칼에 대하여 RC50=197.2 μg/mL와 1,00 μ g/mL 농도에서 82.3% 소거 활성을 나타내었고 ABTS 라디칼에 대하여 RC50=143.5 μg/mL와 1,00 μg/mL 농도에서 9.8% 소거 활성을 나타내어 두 가지 라디칼 소거 활성 모두에서 가장 뛰어난 결과를 나타내었다(Table 1, Table 3).
이러한 결과는 인진호 추출물의 1,00 μg/mL 농도에서 65.6%의DPH 라디칼 소거 활성을 나타내는 결과(29)보다 우수한 활성을 나타내었으며, 높은 활성을 보인 제주 당근 꽃 추출물의 에틸아세테이트 분획물의 51.97 μg/mL의 RC50값과 비슷함을 확인 할 수 있었다.
이러한 결과를 토대로 가장 우수한 라디칼 소거 활성을 지닌 백산차 추출물은 LPE와LPE의 분획물인 LPE/E임을 알 수 있었으며 이들의 활성은 10-10 μg/mL 농도 사이에서도 vitamin C의 활성과 유사할 만큼 우수한 결과이다.
추출물 중 가장 높은 활성을 나타낸 LPE의 용매 분획물에 대하여ABTS 라디칼 소거 활성을 측정한 결과, 1,00 μg/mL 농도에서 LPE/E > LPE/B > LPE/H > LPE/W 순서로 측정되었으며 LPE/E 역시 1,00 μg/mL의 농도에서 9.6%의 높은 소거 활성이 확인되어 초석잠 부탄올 분획물의 1,00 μg/mL의 농도에서 98%의 높은 소거 활성(32)과 비교 시 유사한 활성을 확인할 수 있었다(Table 4).
측정 결과, LPE과 LPE/E는 TNF-α,IL-1β, IL-6 사이토카인을 농도 의존적으로 저해하였다.
특히 12.5, 25 μg/mL의 농도에서 각각 40%, 73%의 높은 저해 효과를 나타내었다(Fig. 3).
특히 LPE/E는 25 μg/mL의 농도에서 TNF-α와 IL-1β 생성량을 각각 51%, 57% 저해시켰으며, IL-6의 경우 같은 농도에서 62%의 저해 활성을 나타내었다(Fig. 4).

후속연구

이러한 결과로부터 본 연구에서의 백산차 추출물 및 그 용매 분획물에 대한 항산화 및 항염증 연구결과는 항염증관련 기능성 소재 개발에 중요한 기초 자료가 될 수 있으며 향후 염증관련 질환이나 증상의 연구에서도 유의미한 결과를 나타낼 수 있을 것으로 기대된다. 또한 항노화, 항균, 미백 활성 등에 대한 추가적인 연구 진행이 이루어진다면 백산차추출물은 기능성 식품,화장품 분야 등에서도 효과적인 소재로 활용될 수 있을 것으로 사료된다.
상황버섯 에틸아세테이트 용매 분획물이 10 μg/mL 농도에서 IL-6 생성량을 75% 저해 시킨 결과(41)와 비교 시 LPE/E의 우수한 염증성 cytokine의 생성저해 활성을 확인 할 수 있었다. 이러한 결과로부터 본 연구에서의 백산차 추출물 및 그 용매 분획물에 대한 항산화 및 항염증 연구결과는 항염증관련 기능성 소재 개발에 중요한 기초 자료가 될 수 있으며 향후 염증관련 질환이나 증상의 연구에서도 유의미한 결과를 나타낼 수 있을 것으로 기대된다. 또한 항노화, 항균, 미백 활성 등에 대한 추가적인 연구 진행이 이루어진다면 백산차추출물은 기능성 식품,화장품 분야 등에서도 효과적인 소재로 활용될 수 있을 것으로 사료된다.

질의응답

핵심어	질문	논문에서 추출한 답변
	활성산소의 성질은?	따라서 이에 대한 연구 개발이 활발해졌으며, 항산화와 항염효과 등의 활성성분 발견을 위한 근거 중심적 연구가 활발하게 진행되고 있다(2-4). 활성산소는 대부분 불안정하여 전자를 잃거나 얻어서 보다 안정된 상태로 가려는 성질이 있으며 이들의 높은 반응성은 생체내에서 산화적손상을 일으킨다(5). 생체의 산화반응 과정 중에 생성되는 활성산소들은 체내의 superoxide dismutase, catalase,glutathione peroxidase와 같은 항산화효소에 의해 제거되지만, reactive oxygen species(ROS)는 지질과산화, 단백질산화, 단백질 분해효소의 활성화, DNA산화와 같은 손상을야기한다(6).
	DNA산화의 결과로 나타나는 질환은 무엇인가?	생체의 산화반응 과정 중에 생성되는 활성산소들은 체내의 superoxide dismutase, catalase,glutathione peroxidase와 같은 항산화효소에 의해 제거되지만, reactive oxygen species(ROS)는 지질과산화, 단백질산화, 단백질 분해효소의 활성화, DNA산화와 같은 손상을야기한다(6). 이러한 손상의 결과로 고혈압, 당뇨병, 아토피성 피부염, 류마티스 관절염과 같은 염증성 질환이 발생하게 된다(7-9). 이와 같은 과량의 ROS로 인한 산화적 스트레스가 항산화물질에 의해 감소되는 것이 알려지면서 항산화 물질을 개발하기 위한 연구들이 지속적으로 이루어지고 있으며, 합성 항산화제의 부작용이 증가함에 따라 천연물 유래의 항산화제에 관한 연구가 더욱 활발히 진행되고 있다(10).
	생체의 산화반응 과정으로 인해 생성되는 활성산소를 제거하는 효소는 무엇인가?	활성산소는 대부분 불안정하여 전자를 잃거나 얻어서 보다 안정된 상태로 가려는 성질이 있으며 이들의 높은 반응성은 생체내에서 산화적손상을 일으킨다(5). 생체의 산화반응 과정 중에 생성되는 활성산소들은 체내의 superoxide dismutase, catalase,glutathione peroxidase와 같은 항산화효소에 의해 제거되지만, reactive oxygen species(ROS)는 지질과산화, 단백질산화, 단백질 분해효소의 활성화, DNA산화와 같은 손상을야기한다(6). 이러한 손상의 결과로 고혈압, 당뇨병, 아토피성 피부염, 류마티스 관절염과 같은 염증성 질환이 발생하게 된다(7-9).

참고문헌 (41)

Azuma K, Nakayama M, Koshioka M, Ippoushi K, Yamaguchi Y, Kohata K, Yamauchi Y, Ito H, Higashio H (1999) Phenolic antioxidants from the leaves of Corchorus olitorius L. J Agric Food chem, 47, 3963-3966

상세보기
Kawashima S (1969) The possible role of lipoperoxide in aging. Nagoya J Med Sci, 32, 303-326
Decker EA, Crum AD, Calvert JT (1992) Differences in the antioxidant mechanism of carnosine in the presence of copper and iron. J Agric Food Chem, 40, 756-759

상세보기
Jeong SI, Kim HS, Jeon IH, Kang HJ, Mok JY, Cheon CJ, Yu HH, Jang SI (2014) Antioxidant and anti-inflammatory effects of ethanol extracts from Perilla frutescens. Korean J Food Sci Technol, 46, 87-93

원문보기 상세보기
Aniya Y, Naito A (1993) Oxidative stress-induced activation of microsomal glutathione S-transferase in isolated rat liver. Biochem Pharmacol, 45, 37-42

상세보기
Halliwell B, Gutteridge JMC (1990) Role of free radicals and catalytic metal ions in human disease: an overview. Methods Enzymol, 186, 1-85
Khalid OA (2009) Oxidant/Antioxidant status in obese adolescent females with Acne Vulgaris. Indian J Dermatol, 54, 36-40

상세보기
Kwon MJ, Kim BH, Lee YS, Kim TY (2012) Role of superoxide dismutase 3 in skin inflammation. J Dermatol Sci, 67, 81-87

상세보기
Ozer A, Ergul BK, Sezai S (2005) Oxidative Stress in Patients With Acne Vulgaris. Mediators Inflamm, 14, 380-384
Kim SG, Byun HD, Kim SC, Yang KW, Kim JH, Han JH (2015) Antioxidative and Anti-inflammatory Activities of Carrot flower. Korean Soc Biotechnol Bioeng J, 30, 77-81
Jeong SJ, Lee JH, Song HN, Seong NS, Lee SE, Baeg NI (2004) Screening for antioxidant activity of plant medicinal extracts. J Korean Soc Appl Biol Chem, 47, 135-140
Kang IH, Cha JH, Han JH, Lee SW, Kim HJ, Kwon SH, Han IH, Hwang BS, Whang WK (2005) Isolation of anti-oxidant from domestic crataegus pinnatifida bunge leaves. Kor J Pharmacogn, 36, 121-128
Huang MT, Ho CT, Lee CY (1992) Phenolic compounds in food and their effects on health II: Antioxidants and cancer prevention. American Chemical Society (ACS), Washington DC, USA, p 54-71
Hogquist KA, Baldwin TA, Jameson SC (2005) Central tolence: learning self-control in the thymus. Nat Rev Immunol, 5, 772-782

상세보기
Baek S, Choi JH, Ko SH, Lee YJ, Cha DS, Park EY, Kang YG, Jeon H (2009) Antioxidant and antiinflammatory effect of Nardostachys Chinensis in IFN- ${\gamma}$ /LPS-stimulated peritoneal macrophage. Kor J Ori Med Physiol Pathol, 23, 853-859
Ryu JH, Ahn HN, Kim JY, Kim YK (2003) Inhibitory activity of plant extracts on nitric oxide synthesis in LPS-activated macrophage. Phytother Res, 17, 485-489

상세보기
Yayeh T, Jung KH, Jeong HY, Park JH, Song YB, Kwak YS, Kang HS, Cho JY, Oh JW, Kim SK, Rhee MH (2012) Korean red ginseng saponin fraction down regulates pro-inflammatory mediators in LPS stimulated RAW264.7 cells and protects mice against endotoxic shock. J Ginseng Res, 36, 263-269

원문보기 상세보기
Oh SH, Choi SY, Lee NR, Lee JN, Kim DS, Lee SH, Park SM (2014) Cell migration and anti-inflammatory effect of red ginseng extracts fermented with laetiporus sulphureus. J Soc Cosmet Sci Korea, 40, 297-305
Willeaume V, Kryus V, Mijatovic T, Huez G (1996) Turmor necrosis factor-alpha production induced by viruses and by lipopolysaccharides in macrophages : similarities and differences. J Inflammation, 46, 1-12
Narimanov AA (1992) The reproductive capacity of male mice protected against the superlethal action of gamma radiation by the administration of a mixture of Archangelica officinalis and Ledum palustre extracts. Radiobiologiia, 32, 271-275
Narimanov AA, Miakisheva SN, Kuznetsova SM (1991) The radioprotective effect of extracts of Archangelica officinalis Hoffm. and Ledum palustre L. on mice. radiobiologiia, 31, 391-393
Jaeson TGT, Palsson K, Borg-kalson AK (2005) Evaluation of extracts and oils of tick-repellent plants from Sweden. Med Vet Entomol, 19, 345-352

상세보기
Kuusik A, Harak M, Hiiesaar K, Metspalu L, Tartes U (1995) Studies on insect growth regulating and toxic effects of Ledum palustre extracts on Tenebrio molitor pupae (Coleoptera, Tenebrionidae) using calorimetric recordings. Thermochimica Acta, 251, 247-253

상세보기
Palsson K, Jaenson TGT (1999) Plant products used as mosquito repellents in Guinea Bissau, West Afica. Acta Tropica, 72, 39-52

상세보기
Blois MS (1958) Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature, 181, 1199-1200

상세보기
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C (1999) Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biol Med, 26, 1231-1237

상세보기
Kim OK (2005) Antidiabetic and antioxidative effects of Corni fructus in streptozotocin-induced diabetic rats. J Korean Oil Chemists' Soc, 22, 157-167
Kim HK, Kim YE, Do JR, Lee YC, Lee BY (1995) Antioxidative activity and hysiological activity of some Korean medicinal plants. J Food Sci Technol, 27, 80-85
Kim JS, Kim KL (2015) Anti-oxidative and antiinflammatory effects of Artemisiae Capillaris extract. Kor J Aesthet Cosmetol, 13, 805-812
Arnao MB (2000) Some methodological problems in the determination of antioxidant activity using chromogen radicals: a practical case. Trends Food Sci Technol, 11, 419-421

상세보기
Kwon YR, Youn KS (2017) Antioxidant and physiological activities of Hijikia fusiforme by extraction methods. Korean J Food Preserv, 24, 631-637

원문보기 상세보기
Kang JR, Kang MJ, Shin JH, Park JH, Kim DI, Chung SY, Shin JH (2017) Antioxidant and antidiabetic activities of various solvent extracts from Stachys sieboldii Miq. Korean J Food Preserv, 24, 615-622

원문보기 상세보기
Cho YJ (2017) Inhibitory effect of Koreinsis chinensis leaves extract on proinflammatory responses in lipopolysaccharide-induced Raw 264.7 cells. J Appl Biol Chem, 60, 191-198
Nam JH, Seo JT, Kim YH, Kim KD, Yoo DL, Lee JN, Hong SY, Kim SJ, Sohn HB, Kim HS, Kim BS, Lee KT, Park HJ (2014) Inhibitory effects of extracts from Smilacina japonica on lipopolysaccharide induced nitric oxide and prostaglandin $E_{2}$ production in RAW 264.7 macrophages. J Plant Biotechnol, 41, 201-205

원문보기 상세보기
Nam JH, Kim HS, Kim BJ, Yu HS, Chang DC, Jin YI, Yoo DL, Choi JK, Park HJ, Lee SB, Lee KT, Park SJ (2017) In vitro anti-inflammatory activity of extracts from Potentilla supina in murine macrophage RAW 264.7 cells. J Plant Biotechnol, 44, 76-81

원문보기 상세보기
Seo SJ, Choi HG, Chung HJ, Hong CK (2002) Time course of expression of mRNA of inducible nitric oxide synthase and generation of nitric oxide by ultraviolet B in keratinocyte cell lines. Br J Dermatol, 147, 655-662

상세보기
Moncada S, Palmer RMJ, Higgs EA (1991) Nitric oxide: Physiology, pathophysiology, and pharmacology. Pharmacol Rev, 43, 109-142

상세보기
Van SJ (1990) Interleukin-6 : An overview. Annu Rev Immunol, 8, 253-278

상세보기
Delgado AV, McManus AT, Chambers JP (2003) Production of tumor necrosis factor- ${\alpha}$ , interleukin 1- ${\beta}$ , interleukin 2, and interleukin 6 by rat leukocyte subpopulations after exposure to substance P Neuropeptides, 37, 355-361

상세보기
Maes M (2008) The cytokine hypothesis of depression: Inflammation, oxidative & nitrosative stress (IO&NS) and leaky gut as new targets for adjunctive treatments in depression. Neuroendocrinol Lett, 29, 287-291

상세보기
Taddesse Y, Oh WJ, Park SC, Kim TH, Cho JY, Park HJ, Lee IK, Kim SK, Hong SB, Yun BS, Rhee MH (2011) Phellinus baumii ethyl acetate extract inhibits lipopolysaccharide-induced iNOS, COX-2, and proinflammatory cytokine expression in RAW264.7 cells. J Nat Med, 66, 49-54

저자의 다른 논문 :

표제어: PCR

동의어: Packet Collision Rate

용어 설명 출처 목록 (6)

용어 설명: PCR은 세균 특이성이 있는 primer를 이용하여 적은 수의 세균이 있을지라도 쉽게 검출할 수 있는 유용한 방법이며, 이를 이용하여 구강 내 치면세균막이나 타액에서 직접 세균을 검출할 수 있게 되었다[8].

내보내기 구분	파일저장 인쇄 메일전송
구성항목	기본정보 상세정보 관리번호, 논문명, 저널/프로시딩명, 저자 , 발행년, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, 발행기관 관리번호, 논문명, 대등논문명, 저자 , 저널/프로시딩명, 발행기관, 발행년, 발행언어, 권, 호, 시작페이지, 끝페이지, ISBN, ISSN, 주제분야, 키워드, 초록(한글), 초록(영문), 저자(소속기관)
저장형식	Text(ASCII format) Excel format RefWorks Direct Export RIS format (for Reference Manager, ProCite, EndNote), Scholar's Aids, Mendeley
메일정보	받는사람 (필수) @ 보내는사람 (선택) @ 제목 내용 KISTI 검색결과 이메일 서비스
안내	총 건의 자료가 검색되었습니다. 다운받으실 자료의 인덱스를 입력하세요. (1-10,000) 검색결과의 순서대로 최대 10,000건 까지 다운로드가 가능합니다. 데이타가 많을 경우 속도가 느려질 수 있습니다.(최대 2~3분 소요) 다운로드 파일은 UTF-8 형태로 저장됩니다. 파일의 내용이 제대로 보이지 않을실 때는 웹브라우저 상단의 보기 -> 인코딩 -> 자동선택 여부를 확인하십시오. ~ Text(ASCII format) Excel format

연합인증