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식육 중 항생제 flumequine의 분석
Analysis of Flumeqnine in Meats 원문보기

한국식품과학회지 = Korean journal of food science and technology, v.41 no.1 = no.203, 2009년, pp.7 - 10  

국주희 (광주지방식품의약품안전청) ,  고용석 (광주지방식품의약품안전청) ,  김용훈 (서울지방식품의약품안전청) ,  윤창용 (국립독성과학원) ,  선남규 (대전지방식품의약품안전청) ,  김은정 (광주지방식품의약품안전청) ,  서지우 (광주지방식품의약품안전청) ,  박지원 (광주지방식품의약품안전청) ,  강길진 (식품의약품안전청 영양기능식품국)

초록
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플루메퀸의 분석은 시료를 ethyl acetate로 추출 농축한 후 이 농축액에 acetonitrile과 n-hexane을 가하여 분리하고, 분리된 acetonitrile층을 농축하였다. 이를 이동상에 녹여 여과한 후 $C_{18}$ 컬럼을 이용한 HPLC-FLD로 분석하였다. 분석법표준물질 0.1-1.0mg/kg의 농도범위에서 직선성($r^2$=0.9979)을 나타냈으며, 검출한계는 0.005 mg/kg, 정량한계는 0.017 mg/kg이었다. 또한 회수율은 쇠고기에서 90.8-96.7%, 돼지고기에서 96.4-96.6%, 닭고기에서 94.0-101.1%이었으며, 상대표준편차(RSD)는 쇠고기, 돼지고기, 닭고기에서 각각 5.3-8.6%, 3.0-6.8%, 3.1-4.1%이었다. 확립된 분석방법으로 유통 중인 식육(쇠고기, 돼지고기, 닭고기) 150건을 전국 지역(서울, 부산, 대구, 대전, 광주)별로 수거하여 플루메퀸의 잔류 실태를 조사한 결과, 쇠고기 1건(0.080 mg/kg), 돼지고기 1건 (0.048 mg/kg)에서 검출되었으며, 조사한 식육 150건의 플루메퀸 잔류량은 모두 잔류허용기준 이하의 수준이었다.

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An analytical method for the determination of flumequine in meats was developed and validated using high-performance liquid chromatography with fluorescence detection. The samples were mixed with sodium sulfate and extracted with ethyl acetate. After clean-up, the residues were dissolved in mobile p...

주제어

AI 본문요약
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* AI 자동 식별 결과로 적합하지 않은 문장이 있을 수 있으니, 이용에 유의하시기 바랍니다.

제안 방법

  • 따라서 식육중 플루메퀸 분석에 대한 선형성, 회수율, 검출한계, 정량한계 등 유효성 평가를 통한 시험법을 확립하고, 시중에 유통되는 식육(쇠고기, 돼지고기, 닭고기) 150건에 대한 플루메퀸의 잔류 실태를 조사하였다.
  • 분리된 acetonitrile층을 35℃에서 감압농축으로 건조시키고, 이동상 2 mL를 가하여 녹여 0.2 µm membrane filter로 여과한 후 시험용액으로 사용하였으며, 검체당 3회 반복실험하였다.
  • 분석방법에 따른 회수율 측정을 위하여 플루메퀸이 함유되어있지 않은 쇠고기, 돼지고기, 닭고기에 각 표준용액을 0.1, 0.2, 0.4 mg/kg이 되도록 첨가하여 본 실험방법에 따라 6회 반복 실험하여 구하였다.
  • 식육 중 플루메퀸 잔류량을 모니터링하기 위하여 상기의 최적화한 분석방법을 식육에 적용하여 플루메퀸 잔류량을 조사하였다. 시중에 유통되는 식육 150건을 전국 5개 지역별로 수거하여 잔류량을 조사한 결과, 쇠고기 1건, 돼지고기 1건에서 각각 0.
  • 얻어진 크로마토그램의 signal과 noise 비율(S/N ratio) 3에 해당하는 피크 면적으로부터 계산된 플루메퀸의 농도를 기기적인 검출한계로 하였으며, 또한 signal과 noise 비율 10배에 해당하는 농도를 정량한계로 하였다.
  • 플루메퀸의 분석은 시료를 ethyl acetate로 추출 농축한 후 이 농축액에 acetonitrile과 n-hexane을 가하여 분리하고, 분리된 acetonitrile층을 농축하였다. 이를 이동상에 녹여 여과한 후 C18 컬럼을 이용한 HPLC-FLD로 분석하였다. 분석법은 표준물질 0.
  • 플루메퀸 표준품 100 mg을 정밀히 달아 100 mL 용량플라스크에 취하고 acetonitrile 10 mL를 가하여 잘 녹인 다음 acetonitrile로 표시선까지 채워 잘 혼합한 용액을 표준원액으로 사용하였으며, 표준원액을 이동상으로 희석하여 각 농도(0.1, 0.2, 0.4, 0.6, 0.8, 1.0 mg/kg)의 표준용액을 조제하였다.
  • 플루메퀸의 분석은 시료를 ethyl acetate로 추출 농축한 후 이 농축액에 acetonitrile과 n-hexane을 가하여 분리하고, 분리된 acetonitrile층을 농축하였다. 이를 이동상에 녹여 여과한 후 C18 컬럼을 이용한 HPLC-FLD로 분석하였다.

대상 데이터

  • 2006년 6-7월중 시중에 유통되는 식육(쇠고기 양지, 돼지고기 등심, 닭고기)의 근육을 서울(S1-S10), 부산(B1-B10), 대구(D1-D10), 광주(G1-G10), 대전(J1-J10) 지역 각각 10곳에서 냉장상태로 채취하여 시료를 균질화한 다음 분석 전까지 −20℃로 냉동보관하면서 실험에 사용하였다.
  • 표준용액의 조제 및 시료의 추출용매(ethyl acetate, acetonitrile, n-hexane)는 Merck사(Darmstadt, Germany)의 HPLC급을 사용하였고, sodium sulfate는 Merck사의 특급시약을 사용하였다. HPLC, 형광검출기(fluorescence detector)는 Nanospace SI-2(Shiseido Fine Chemicals, Yokohama, Japan)를 사용하였으며, 분석조건을 Table 1에 나타내었다.
  • 플루메퀸 표준품은 Sigma Chemicals(St. Louis, MO, USA) 제품을 사용하였다. 표준용액의 조제 및 시료의 추출용매(ethyl acetate, acetonitrile, n-hexane)는 Merck사(Darmstadt, Germany)의 HPLC급을 사용하였고, sodium sulfate는 Merck사의 특급시약을 사용하였다.

이론/모형

  • 1 mg/kg 이상의 범위에서 회수율 허용범위는 80-110%이며, 상대표준편차 허용범위는 15%미만이다(17). 따라서 본 시험법은 CODEX 규정에 부합하였다.
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질의응답

핵심어 질문 논문에서 추출한 답변
동물용 의약품의 사용 목적은? 오늘날 축산 기술은 그 생산성을 극대화하는 방향으로 발전하고 있으며 가축질병의 치료 및 예방, 성장촉진, 사료효율 증가를 목적으로 항생물질, 합성항균제, 호르몬제 등 동물용 의약품의 사용이 크게 증가하고 있다. 이들 동물용 의약품의 사용방법은 취급규격이나 안전사용기준 등의 법령으로 엄격하게 규제되고 있지만 축산 및 양식농가에서의 안전휴약기간과 잔류허용기준에 대한 인식부족으로 잔류될 가능성이 높아, 최종 유통단계에서의 관리는 필수적이다.
동물용 의약품의 최종 유통단계에서의 관리가 필수적인 이유는? 오늘날 축산 기술은 그 생산성을 극대화하는 방향으로 발전하고 있으며 가축질병의 치료 및 예방, 성장촉진, 사료효율 증가를 목적으로 항생물질, 합성항균제, 호르몬제 등 동물용 의약품의 사용이 크게 증가하고 있다. 이들 동물용 의약품의 사용방법은 취급규격이나 안전사용기준 등의 법령으로 엄격하게 규제되고 있지만 축산 및 양식농가에서의 안전휴약기간과 잔류허용기준에 대한 인식부족으로 잔류될 가능성이 높아, 최종 유통단계에서의 관리는 필수적이다.
동물용의약품의 안전관리를 위해 우리나라 식품공전에서 규제하고 있는 것은? 현재 우리나라 식품공전에서는 식육, 어류갑각류, 알 등에서 항생물질, 합성항균제, 성장호르몬제 등 101종의 동물용의약품에 대한 잔류허용기준(Maximum residue limit, MRL)을 설정하여 규제하고 있다(1,2).
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참고문헌 (17)

  1. KFDA. MRLs for veterinary drugs in foods. Korea Food & Drug Administration, Seoul, Korea. pp. 9-31 (2007) 

  2. KFDA. Korea food code. Korea Food & Drug Administration, Seoul, Korea (2008) 

  3. Pecorelli I, Galarini R, Bibi R, Floridi A, Casciarri E, Floridi A. Simultaneous determination of 13 quinolones from feeds using accelerated solvent extraction and liquid chromatography. Anal. Chim. Acta 483:81-89 (2003) 

  4. Ramos M, Aranda A, Garcia E, Reuvers T, Hooghuis H. Simple and sensitive determination of five quinolones in food by liquid chromatography with fluorescence detection. J. Chromatogr. B 789: 373-381 (2003) 

  5. Roudaut B, Yorke JC. High-performance liquid chromatographic method with fluorescence detection for the screening and quantification quantification of oxolinic acid, flumequine, and sarafloxacin in fish. J. Chromatogr. B 780: 481-485 (2002) 

  6. Hassouan MK, Ballesteros O, Taoufiki J, Vilchez JL, Cabrera-Aguilera M, Navalon A. Multiresidue determination of quinolone antibacterials in eggs of laying hens by liquid chromatography with fluoresccence detection. J. Chromatogr. B 852: 625-630 (2007) 

  7. Clare H, Sin DWM, Tang HPO, Chung LPK, Siu SMP. Determination and on-line clean-up of (fluoro)quinolones in cattle milk using column-switching liquid chromatography fluorescence detection. J. Chromatogr. A 1061: 123-131 (2004) 

  8. Pilorz K, Choma I. Isocratic reversed-phase high-performance liquid chromatographic separation of tetracyclines and flumequine controlled by a chaotropic effect. J. Chromatogr. A 1031: 303-305 (2004) 

  9. Karbiwnyk CM, Carr LE, Turnipseed SB, Andersen WC, MillerKE. Determination of quinolone residues in shrimp using liquid chromatography with fluorescence detection and residue confirmation by mass spectrometry. Anal. Chim. Acta 596: 257-263 (2007) 

  10. Delmas JM, Chapel AM, Sanders P. Determination of flumequine and 7-hydroxyflumequine in plasma of sheep by high-performance liquid chromatography. J. Chromatogr. B 712: 263-268 (1998) 

  11. Touraki M, Ladoukakis M, Prokopiou C. High-performance liquid chromatographic determination of oxolinic acid and flumequine in the live fish feed Artemia. J. Chromatogr. B 751: 247-256 (2001) 

  12. Clemente M, Hermo MP, Barron D, Barbosa J. Confirmatory and quantitative analysis using experimental design for the extraction and liquid chromatography-UV, liquid chromatography-mass spectrometry and liquid chromatography-mass spectry/mass spectrometry determination of quinolones in turkey muscle. J. Chromatogr. A 1135: 170-178 (2006) 

  13. Hoof NV, Wasch KD, Okerman L, Reybroeck W, Poelmans S, Noppe H, Brabander HD. Validation of a liquid chromatographytandem mass spectrometric method for the quantification of eight quinolones in cattle muscle, milk, and aquacultured products. Anal Chim. Acta. 529: 265-272 (2005) 

  14. Vyncht GV, Janosi A, Bordin G, Toussaint B, Maghuin-Rogister G, Pauw ED, Rodriguez AR. Multiresidue determination of (fluoro)quinolone antibiotics in swine kidney using liquid chromatography-tandem mass spectrometry. J. Chromatogr. A 952: 121-129 (2002) 

  15. Johnston L, Mackay L, Croft M. Determination of quinolones and fluoroquinolones in fish tissue and seafood by high-performance liquid chromatography with electrospray ionisation tandem mass spectrometric detection. J. Chromatogr. A 982: 97-109 (2002) 

  16. Toussaint B, Bordin G, Rodriguez AR. Validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry method for the simultaneous quantification of 11 (fluoro)quinolone antibiotics in swine kidney. J. Chromatogr. A 976: 195-206 (2002) 

  17. CODEX guidelines for the establishment of a regulatory program for control of veterinary drug residues in foods (CAC/GL16). Available from:http://www.codexalimentarius.net/download/standards/47/CXG_016e.pdf. Accessed Jul. 20, 2008 

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